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一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法與流程

文檔序號:11510452閱讀:451來源:國知局

本發(fā)明屬于原代細胞培養(yǎng)技術領域,特別涉及一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法。



背景技術:

細胞培養(yǎng)是生物學和醫(yī)學研究最常用的手段之一,可分為原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)兩種。原代培養(yǎng)也稱初代培養(yǎng),是直接從生物體獲取組織或器官的一部分,經(jīng)機械法或各種酶類(常用胰蛋白酶)和鰲合劑(常用edta)處理,使之分散成單個細胞,加入適量培養(yǎng)基,置于合適的培養(yǎng)容器中,在無菌、適當溫度和一定條件下,使之生存、生長和繁殖的過程。

嚴格地說,原代培養(yǎng)是指從體內(nèi)取出組織接種培養(yǎng)到第一次傳代階段;但實際上,通常把第一代至第十代以內(nèi)的培養(yǎng)細胞統(tǒng)稱為原代細胞培養(yǎng)。原代培養(yǎng)過程一般持續(xù)1~4周,在此期細胞呈活躍的移動,可見細胞分裂,但不旺盛。原代培養(yǎng)細胞與體內(nèi)原組織在形態(tài)結構和功能活動上相似程度很高。由于培養(yǎng)的細胞剛剛從活體組織分離出來,故更接近于生物體內(nèi)的生活狀態(tài)。這一方法可為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段。同時也為以后進行傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件。

現(xiàn)有的原代培養(yǎng)方法,多是通過在培養(yǎng)基中添加血清來為細胞提供營養(yǎng)。但是血清成本較高,如果培養(yǎng)過程中一直使用含有同一濃度血清的培養(yǎng)基,會導致成本花費過高、無法進行大規(guī)模培養(yǎng);如果降低血清的使用濃度,又可能導致養(yǎng)分供應不足、影響細胞增殖。



技術實現(xiàn)要素:

為了解決上述技術問題,本發(fā)明提供了一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法。

本發(fā)明具體技術方案如下:

本發(fā)明提供了一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括如下步驟:

s1:原代腫瘤細胞的分離:采集腫瘤組織,清洗干凈,去除壞死組織和結締組織,并切割成組織碎塊;

s2:第一培養(yǎng)階段:將所述組織碎塊接種于細胞培養(yǎng)瓶中,加入1~5ml的含低濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,培養(yǎng)2~3周;

s3:第二培養(yǎng)階段:更換含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%;

s4:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

本方法將培養(yǎng)過程分為兩個階段,通過逐漸提高培養(yǎng)基中胎牛血清的濃度,以使原代細胞的適應性逐漸增強、活力逐漸提高,細胞增值較快、得率較高,同時有效控制了成本。

進一步地,所述步驟s1的具體方法如下:

采集腫瘤組織,在無菌狀態(tài)下轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,用5~10ml質(zhì)量分數(shù)為0.9%的氯化鈉水溶液沖洗,重復2~3次,去除血漬,并切除壞死組織和結締組織,剪成1mm3的組織碎塊。

組織塊培養(yǎng)法是細胞原代培養(yǎng)的重要方法,具有步驟少、細胞損傷小的優(yōu)點,并且不需要頻繁更換培養(yǎng)基,操作簡便。

進一步地,所述步驟s2包括如下步驟:

s2.1:將組織碎塊接種于t25培養(yǎng)瓶中,加入1~5ml含50mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將組織塊均勻鋪于培養(yǎng)瓶底部,置于37℃的co2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);

s2.2:每隔3~4天進行一次全量換液,棄去舊培養(yǎng)基,同時添加等量的新鮮培養(yǎng)基,置于co2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng);

s2.3:培養(yǎng)7~10天后,輕輕搖晃培養(yǎng)瓶,使組織塊脫落;將舊培養(yǎng)基與脫落的組織塊一并轉(zhuǎn)移并使用100μm的濾膜過濾,收集濾液,在1500~2000rpm/min條件下離心5min,收集沉淀,加入新的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1~2周。

進一步地,所述步驟s3的具體方法如下:

第一培養(yǎng)階段培養(yǎng)2~3周后,棄去舊培養(yǎng)基,換用含有100mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,每3~4天進行一次全量換液,培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%時為止。

進一步地,所述步驟s4包括如下步驟:

s4.1:當細胞總量達到1*107時,棄去舊培養(yǎng)基,用磷酸鹽緩沖液清洗2~3次,棄去洗滌液;

s4.2:向洗滌后的培養(yǎng)瓶中加入1~5ml的0.125~0.25%胰蛋白酶-edta消化液,輕輕搖動使消化液浸潤培養(yǎng)瓶底面,于超凈工作臺中靜置1min后,取出培養(yǎng)瓶輕輕拍打,并置于倒置顯微鏡下觀察,待細胞變圓、大部分細胞脫落時為止;

s4.3:向培養(yǎng)瓶中加入3~5ml所述含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將培養(yǎng)瓶中細胞和組織塊的懸液轉(zhuǎn)移,用5~10ml所述磷酸鹽緩沖液將粘附在培養(yǎng)瓶中的細胞洗脫,并將洗脫的殘余細胞與所述懸液混合,在1500~2000rpm/min的條件下離心5min;

s4.4:離心后棄去上清,添加5~10ml所述磷酸鹽緩沖液重懸細胞,輕輕吹打混勻,在1500~2000rpm/min的條件下將重懸后的細胞懸液離心5min,并棄去上清;

s4.5:向收集到的細胞中加入1~2ml凍存液,轉(zhuǎn)移至凍存管中,放入程序降溫盒,置于-80℃冰箱冷凍,次日將凍存管轉(zhuǎn)移至液氮中保存。

進一步地,其特征在于,所述rpmi-1640培養(yǎng)基還添加有如下成分:100~150mg/l的丙酮酸鈉以及1~2mg/l的柑濃素。

丙酮酸是糖酵解的中間產(chǎn)物,可以自由進出細胞,可以為細胞代謝活動所需的能量和碳源,還有助于降低熒光物質(zhì)引發(fā)的光毒作用;而丙酮酸鈉是最常見的丙酮酸鹽,用丙酮酸鈉代替丙酮酸添加進培養(yǎng)基中,可以提高穩(wěn)定性、降低成本。

柑濃素是從柑橘皮中提取的一種天然混合物,具有極強的抗菌的作用,能抑制細菌等的生長增殖,并且無毒副作用、不會對細胞的生長造成影響,也不會使病原微生物產(chǎn)生抗藥性。

進一步地,所述rpmi-1640培養(yǎng)基中還添加有如下成分:4~6mg/l的y-27632以及2~4mg/l的灰黃霉素。

y-27632是rho相關的卷曲蛋白激酶抑制劑,可以抑制細胞的成脂分化?;尹S霉素能有效抑制真菌的有絲分裂,在臨床上常用于治療頭癬、手足癬、體股癬等真菌感染引發(fā)的疾病,將其添加到培養(yǎng)基中,可以有效防止真菌污染。

進一步地,所述凍存液包括如下成分:體積份數(shù)比為5~7:2~4:1的胎牛血清、植物源重組人血清白蛋白以及二甲基亞砜。

目前常規(guī)凍存液主要使用胎牛血清和二甲基亞砜兩種成分,細胞珍貴程度越高、對營養(yǎng)的要求就越高,胎牛血清的用量也越高;植物源重組人血清白蛋白基于植物生產(chǎn)制造,能夠提供與血清相當?shù)臓I養(yǎng)成分,可以部分替代胎牛血清,從而降低胎牛血清的用量、降低了成本。

進一步地,所述步驟s4.2的時長不超過5min。

消化時間過長,胰蛋白酶可能會對細胞產(chǎn)生傷害,造成細胞得率降低、活力下降,對后續(xù)使用產(chǎn)生影響。

本發(fā)明的有益效果如下:本發(fā)明提供了一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,將培養(yǎng)過程分為兩個階段,并分別使用含有不同濃度的胎牛血清的培養(yǎng)基進行培養(yǎng),通過逐漸提高培養(yǎng)基中胎牛血清的濃度,以使原代細胞的適應性逐漸增強、活力逐漸提高,細胞增殖較快、得率較高,同時遺傳穩(wěn)定性良好;在培養(yǎng)基中添加丙酮酸鈉、柑濃素、y-27632以及灰黃霉素,可以防止細菌和真菌感染,并能促進細胞增殖、抑制細胞分化;在凍存液中添加植物源重組人血清白蛋白,可以部分代替胎牛血清,降低胎牛血清的用量,從而在保證效力不變的情況下降低成本。

具體實施方式

主要試劑及培養(yǎng)基的配制

a.rpmi-1640培養(yǎng)基:具體成分如下:

b.磷酸鹽緩沖液:

稱取8gnacl、0.2gkcl、1.44gna2hpo4和0.24gkh2po4,溶于800ml蒸餾水中,用hcl調(diào)節(jié)溶液的ph值至7.4,最后加蒸餾水定容至1l即可。在15lbf/in2(1034×105pa)高壓下蒸氣滅菌(至少20分鐘),保存于室溫或4℃冰箱中。

c.胰蛋白酶-edta消化液:

稱取0.125~0.25g胰蛋白酶粉末加入100mlpbs溶液中,加入0.02gedta,置于4℃冰浴中低速攪拌0.5h,調(diào)節(jié)ph至7.4,過濾分裝、置于-20℃保存。

下面結合以下實施例對本發(fā)明作進一步詳細說明。需要說明的是,以下實施例中所述的rpmi-1640培養(yǎng)基采用上述a中所述配方,“還添加”是指在a中所述的rpmi-1640培養(yǎng)基的基礎上進行添加。以下實施例中所述的rpmi-1640培養(yǎng)基和磷酸鹽緩沖液均采用上述配方。

實施例1

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括如下步驟:

s1:原代腫瘤細胞的分離:采集腫瘤組織,清洗干凈,去除壞死組織和結締組織,并切割成組織碎塊;

s2:第一培養(yǎng)階段:將所述組織碎塊接種于細胞培養(yǎng)瓶中,加入1ml的含低濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,培養(yǎng)2周;

s3:第二培養(yǎng)階段:更換含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%;

s4:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

需要說明的是,本實施例中所述的低濃度胎牛血清的范圍為40~60mg/l,所述的高濃度胎牛血清的范圍為80~120mg/l。

實施例2

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括如下步驟:

s1:原代腫瘤細胞的分離:采集腫瘤組織,清洗干凈,去除壞死組織和結締組織,并切割成組織碎塊;

s2:第一培養(yǎng)階段:將所述組織碎塊接種于細胞培養(yǎng)瓶中,加入5ml的含低濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,培養(yǎng)3周;

s3:第二培養(yǎng)階段:更換含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%;

s4:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

實施例3

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例1所述各步驟,其中步驟s1的具體方法如下:

采集腫瘤組織,在無菌狀態(tài)下轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,用5ml質(zhì)量分數(shù)為0.9%的氯化鈉水溶液沖洗,重復3次,去除血漬,并切除壞死組織和結締組織,剪成1mm3的組織碎塊。

實施例4

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例2所述各步驟,其中步驟s1的具體方法如下:

采集腫瘤組織,在無菌狀態(tài)下轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,用10ml質(zhì)量分數(shù)為0.9%的氯化鈉水溶液沖洗,重復2次,去除血漬,并切除壞死組織和結締組織,剪成1mm3的組織碎塊。

實施例5

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例3所述各步驟,其中步驟s2的具體方法如下:

s2.1:將組織碎塊接種于t25培養(yǎng)瓶中,加入1ml含50mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將組織塊均勻鋪于培養(yǎng)瓶底部,置于37℃的co2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);

s2.2:每隔3~4天進行一次全量換液,棄去舊培養(yǎng)基,同時添加等量的新鮮培養(yǎng)基,置于co2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng);

s2.3:培養(yǎng)7~10天后,輕輕搖晃培養(yǎng)瓶,使組織塊脫落;將舊培養(yǎng)基與脫落的組織塊一并轉(zhuǎn)移并使用100μm的濾膜過濾,收集濾液,在1500rpm/min條件下離心5min,收集沉淀,加入新的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1~2周。

實施例6

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例4所述各步驟,其中步驟s2的具體方法如下:

s2.1:將組織碎塊接種于t25培養(yǎng)瓶中,加入5ml含50mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將組織塊均勻鋪于培養(yǎng)瓶底部,置于37℃的co2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);

s2.2:每隔3~4天進行一次全量換液,棄去舊培養(yǎng)基,同時添加等量的新鮮培養(yǎng)基,置于co2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng);

s2.3:培養(yǎng)7~10天后,輕輕搖晃培養(yǎng)瓶,使組織塊脫落;將舊培養(yǎng)基與脫落的組織塊一并轉(zhuǎn)移并使用100μm的濾膜過濾,收集濾液,在2000rpm/min條件下離心5min,收集沉淀,加入新的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1~2周。

s3:第二培養(yǎng)階段:更換含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%;

s4:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

實施例7

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例5所述各步驟,其中步驟s3的具體方法如下:

s3:第一培養(yǎng)階段培養(yǎng)2~3周后,棄去舊培養(yǎng)基,換用含有100mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,每3~4天進行一次全量換液,培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%時為止。

實施例8

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例6所述各步驟,其中步驟s3的具體方法如下:

s3:第一培養(yǎng)階段培養(yǎng)2~3周后,棄去舊培養(yǎng)基,換用含有100mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,每3~4天進行一次全量換液,培養(yǎng)至細胞融合度達到70~80%時為止。

實施例9

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例7所述各步驟,其中步驟s4的具體方法如下:

s4.1:當細胞總量達到1*107時,棄去舊培養(yǎng)基,用磷酸鹽緩沖液清洗2次,棄去洗滌液;

s4.2:向洗滌后的培養(yǎng)瓶中加入5ml的0.125%胰蛋白酶-edta消化液,輕輕搖動使消化液浸潤培養(yǎng)瓶底面,于超凈工作臺中靜置1min后,取出培養(yǎng)瓶輕輕拍打,并置于倒置顯微鏡下觀察,待細胞變圓、大部分細胞脫落時為止;

s4.3:向培養(yǎng)瓶中加入3ml所述含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將培養(yǎng)瓶中細胞和組織塊的懸液轉(zhuǎn)移,用5ml所述磷酸鹽緩沖液將粘附在培養(yǎng)瓶中的細胞洗脫,并將洗脫的殘余細胞與所述懸液混合,在1500rpm/min的條件下離心5min;

s4.4:離心后棄去上清,添加5ml所述磷酸鹽緩沖液重懸細胞,輕輕吹打混勻,在1500rpm/min的條件下將重懸后的細胞懸液離心5min,并棄去上清;

s4.5:向收集到的細胞中加入1ml凍存液,轉(zhuǎn)移至凍存管中,放入程序降溫盒,置于-80℃冰箱冷凍,次日將凍存管轉(zhuǎn)移至液氮中保存。

實施例10

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例8所述各步驟,其中步驟s4的具體方法如下:

s4.1:當細胞總量達到1*107時,棄去舊培養(yǎng)基,用磷酸鹽緩沖液清洗3次,棄去洗滌液;

s4.2:向洗滌后的培養(yǎng)瓶中加入1ml的0.25%胰蛋白酶-edta消化液,輕輕搖動使消化液浸潤培養(yǎng)瓶底面,于超凈工作臺中靜置1min后,取出培養(yǎng)瓶輕輕拍打,并置于倒置顯微鏡下觀察,待細胞變圓、大部分細胞脫落時為止,全過程不超過5min;

s4.3:向培養(yǎng)瓶中加入5ml所述含有高濃度胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,將培養(yǎng)瓶中細胞和組織塊的懸液轉(zhuǎn)移,用10ml所述磷酸鹽緩沖液將粘附在培養(yǎng)瓶中的細胞洗脫,并將洗脫的殘余細胞與所述懸液混合,在2000rpm/min的條件下離心5min;

s4.4:離心后棄去上清,添加10ml所述磷酸鹽緩沖液重懸細胞,輕輕吹打混勻,在2000rpm/min的條件下將重懸后的細胞懸液離心5min,并棄去上清;

s4.5:向收集到的細胞中加入2ml凍存液,轉(zhuǎn)移至凍存管中,放入程序降溫盒,置于-80℃冰箱冷凍,次日將凍存管轉(zhuǎn)移至液氮中保存。

實施例11

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例9所述各步驟,其中rpmi-1640培養(yǎng)基中還添加有如下成分:150mg/l的丙酮酸鈉以及2mg/l的柑濃素。

實施例12

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例10所述各步驟,其中rpmi-1640培養(yǎng)基中還添加有如下成分:100mg/l的丙酮酸鈉、1mg/l的柑濃素、6mg/l的y-27632以及4mg/l的灰黃霉素。

實施例13

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例9所述各步驟,其中rpmi-1640培養(yǎng)基中還添加有如下成分:150mg/l的丙酮酸鈉、1mg/l的柑濃素、4mg/l的y-27632以及2mg/l的灰黃霉素。

實施例14

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例9所述各步驟,其中凍存液包括如下成分:體積份數(shù)比為5:4:1的胎牛血清、植物源重組人血清白蛋白以及二甲基亞砜。

實施例15

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括實施例10所述各步驟,其中凍存液包括如下成分:體積份數(shù)比為7:2:1的胎牛血清、植物源重組人血清白蛋白以及二甲基亞砜。

對照例1

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括如下步驟:

s1:原代腫瘤細胞的分離:采集腫瘤組織,清洗干凈,去除壞死組織和結締組織,并切割成組織碎塊;

s2:培養(yǎng)階段:將所述組織碎塊接種于細胞培養(yǎng)瓶中,加入1ml的含50mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,每3~4天進行一次全量換液,培養(yǎng)3~4周,至細胞融合度達到70~80%;

s3:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

對照例2

一種人原代腫瘤細胞的分離制備方法,包括如下步驟:

s1:原代腫瘤細胞的分離:采集腫瘤組織,清洗干凈,去除壞死組織和結締組織,并切割成組織碎塊;

s2:培養(yǎng)階段:將所述組織碎塊接種于細胞培養(yǎng)瓶中,加入1ml的含100mg/l胎牛血清的rpmi-1640培養(yǎng)基,每3~4天進行一次全量換液,培養(yǎng)3~4周,至細胞融合度達到70~80%;

s3:細胞收獲及凍存:將得到的細胞進行消化收獲,向收獲的細胞中加入凍存液,并進行凍存。

實驗例1

原代細胞增殖效率對比實驗

分別以實施例1、2、7、8、9、10、11、12、13的方法為實驗組1~9,對照例1、2的方法為對照組1~2,對同一腫瘤組織的細胞進行原代培養(yǎng),并比較各組細胞數(shù)量達到1*107時所需的時間,以及培養(yǎng)4周時各組的細胞活力。結果如表1所示。

表1各組細胞培養(yǎng)時間比較

由表1可知,實驗組各組的培養(yǎng)時間均顯著少于對照組,并且細胞活力也顯著高于對照組,說明本發(fā)明提供的培養(yǎng)方法可以有效縮短培養(yǎng)周期、提高細胞得率特別是活細胞的得率。其中,實驗組5~7的培養(yǎng)時間最短、細胞活力最高,表明本發(fā)明中對培養(yǎng)基的改進可以顯著提高細胞的增殖速率和活性。

實驗例2

細胞表面免疫表型遺傳實驗

分別以實施例1、2、11、12、13的方法為實驗組1~5,以常規(guī)的組織塊培養(yǎng)法和酶法作為對照組1~2,對腫瘤細胞進行培養(yǎng),并對獲得的細胞的表面抗原進行流式檢測,同時以母細胞作為陽性對照。結果如表2所示。

表2各組細胞表面抗原流式檢測結果

由表2可知,實驗組及對照組各組與陽性對照相比,細胞表面免疫表型種類均相同,并且各細胞表面抗原比例沒有顯著差異。由此可知經(jīng)過原代培養(yǎng)的細胞與原腫瘤組織細胞具有相同的表面抗原,說明體外原代培養(yǎng)的腫瘤細胞很好地再現(xiàn)了體內(nèi)腫瘤細胞的遺傳表型,遺傳穩(wěn)定性良好。

實驗例3

凍存液保存效果實驗

分別以實施例14~15提供的凍存液作為實驗組1~2,以常規(guī)凍存液1(90%胎牛血清+10%dmso)以及常規(guī)凍存液2(95%完全培養(yǎng)液+5%二甲基亞砜)作為對照組1~2,對經(jīng)過實施例13提供的方法進行原代培養(yǎng)得到的同一批細胞分別進行凍存,分別于7d、14d、28d測定各組的細胞活力并進行比較。結果如表3所示。

表3各組細胞活力變化情況對比

由表3可知,實驗組各組的細胞活力變化趨勢與對照組1相近,28d內(nèi)降低幅度很小,而對照組2在凍存期間細胞活力出現(xiàn)顯著降低。在使用中,通常認為血清含量越高、凍存液營養(yǎng)越豐富,對于維持細胞活力的效果越好。實驗組各組中均使用植物源人血清白蛋白來部分代替胎牛血清,仍然具有良好的凍存效果,同時還可以減少血清的用量、降低操作成本。

以上所述實施例僅表達了本發(fā)明的幾種實施方式,其描述較為具體和詳細,但并不能因此而理解為對本發(fā)明專利范圍的限制。應當指出的是,對于本領域的普通技術人員來說,在不脫離本發(fā)明構思的前提下,還可以做出若干變形和改進,這些都屬于本發(fā)明的保護范圍。因此,本發(fā)明專利的保護范圍應以所附權利要求為準。

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