專利名稱：：氧化硅-魚精蛋白-pss雜化微膠囊及制備方法
技術(shù)領(lǐng)域：
：本發(fā)明涉及一種氧化硅一魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉(PSS)雜化微膠囊及制備方法，屬于高分子_無機雜化微膠囊的技術(shù)。
背景技術(shù)：
：高分子微膠囊是一種常用的固定化酶載體。常用的高分子材料包括聚賴氨酸、聚苯乙烯磺酸(PSS)等聚電解質(zhì)。利用高分子微膠囊包埋酶具有條件溫和、生物相容性好、有利于維持酶的結(jié)構(gòu)完整性、進而提高酶的活性維持率的優(yōu)點，特別是利用層層組裝法制備高分子微膠囊可以對微膠囊的尺寸和囊壁厚度進行調(diào)控。F=A厶口fcfc、V+"Ai1々AAi古八7-'無口7V;SS"^RFItir/1,駄a!/a^力^nAA,、jnHK曰業(yè)田CT"培,+rt、'/F1rtjrfe/z;feti農(nóng)!fZ;巾!i貨口'J兩'刀"-J城rtX裁tt間疋'Ki鵬巡幣1于13:口'JIHJ魁疋dPT-f〃l、倶、yH恤/夂，PH)發(fā)生變化時，囊壁會變得疏松，因而造成酶分子的泄漏。解決酶泄漏的方法包括對微膠囊囊壁進行交聯(lián)(熱交聯(lián)、紫外光照交聯(lián)或化學試劑交聯(lián)等)，使凝膠載體結(jié)構(gòu)變得更加致密；增加囊壁層數(shù)；或是在微膠囊外表面構(gòu)造無機殼層，制備有機一無機雜化微膠囊。氧化硅是有機一無機雜化材料中常見的無機組分，用于制備雜化微膠囊可以提高囊壁的穩(wěn)定性，降低酶的泄漏率，提高酶對溫度、pH變化的耐受性，同時提高儲存和循環(huán)使用穩(wěn)定性。仿生硅化為氧化硅材料的制備提供了一條新途徑。自然界中的硅藻利用水中溶解的微量硅可形成堅硬的硅質(zhì)細胞壁。研究表明，這類硅藻植物都是通過在有機質(zhì)參與下的生物硅化作用來構(gòu)建細胞壁的，即由一定的有機模板通過靜電吸引作用促進和調(diào)控氧化硅的沉積。仿生硅化過程避免了酸堿催化劑的使用，所用原料均具有很好的生物相容性，適用范圍廣。
發(fā)明內(nèi)容本發(fā)明的目的在于提供一種氧化硅一魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉(PSS)雜化微膠囊及制備方法，該微膠囊內(nèi)固定著過氧化氫酶，對酶泄漏率低，抗高溫和耐酸堿環(huán)境能力強，儲存穩(wěn)定性好，其制備方法過程簡單。本發(fā)明是通過以下技術(shù)方案加以實現(xiàn)的，一種氧化硅一魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊，該微膠囊內(nèi)固定著過氧化氫酶，它由表面層和表面層內(nèi)的囊壁層構(gòu)成，其特征在于表面層為氧化硅層，囊壁層為由內(nèi)至外依次由魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層交替構(gòu)成，其中魚精蛋白層層位為奇數(shù)，聚苯乙烯磺酸鈉層層位為偶數(shù)，外表層氧化硅層與囊壁層的魚精蛋白層相結(jié)合。上述的氧化硅一魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊的制備方法，其特征在于包括以卜.過程:(1)將過氧化氫酶溶解于0.2-0.4mol/L的氯化鈣溶液中，過氧化氫酶濃度為2-5mg/mL。按體積比1:1向上述溶液中加入0.2-0.4raol/L的碳酸鈉溶液，以轉(zhuǎn)速1000-1200r/min攪拌30-60s，靜置10-15min，所得的碳酸鈣沉淀用去離子水洗滌，得到含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。(2)將魚精蛋白溶解于0.1-0.5mol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到2-5mg/mL的魚精蛋白溶液。(3)將聚苯乙烯磺酸鈉(PSS)溶解于O.1-0.5mol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到3-5mg/mL的聚苯乙烯磺酸鈉溶液。(4)將硅酸鈉溶解于去離子水中，用鹽酸調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到30-50mmol/L的硅酸鈉溶液。,c:、4^A:Tf為/U^船iVi比敏亡TF師ikA莊縣古3fefrfcr森牲疋rS^、、'杰iVi乂+to宜:lt^fr一LU水1、u乂，乂。Ai平V!Hj^^兩口'JW敗n柳Tl/m里兀雙imTram口nT/lXW'JK4M、毛乂I:55X"Mj,y丄50—100，將步驟(1)制得的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒加入步驟(2)制得的魚精蛋白溶液中，浸泡10-20min，離心分離，用去離子水洗滌，得到組裝了第1層魚精蛋白層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。(6)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與聚苯乙烯磺酸鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:50-100,將步驟(5)組裝了第1層魚精蛋白層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，分散于步驟(3)制得的聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，浸泡10-20min，離心分離，用去離子水洗滌，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層的雙層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。(7)將步驟(6)所制得的組裝雙層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，按照歩驟(5)的過程進行，分散于魚精蛋白溶液中，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層，第3層為魚精蛋白層的3層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。(8)將步驟(7)所制得的組裝3層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，按照歩驟(6)的過程進行，分散于聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層，第3層為魚精蛋白層，第4層為聚苯乙烯磺酸鈉層的4層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，如此重復歩驟(5)和步驟(6)，得到組裝了以魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的多層囊壁層的過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，其中囊壁層的最外層為魚精蛋白層。(9)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與硅酸鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:200-500，將歩驟(8)制得的組裝了多層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒分散于歩驟(4)制得的硅酸鈉溶液中，浸泡30-45min，離心分離，用去離子水洗滌，得到外表層為氧化硅層，囊壁層為魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化顆粒。(10)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與乙二胺四乙酸二鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:200-1:500，將步驟(9)制得的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化顆粒浸入濃度為O.1-0.2mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液中，浸泡1-2h，離心分離，得到囊內(nèi)固定著過氧化氫酶的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊。本發(fā)明提出的制備方法的優(yōu)點在于制備條件溫和，制備工藝簡單易行，所得雜化載體對酶具有很好的固定能力，固定化過氧化氫酶的泄漏率低，對高溫和酸堿耐受性能強，儲存穩(wěn)定性好。圖i為實施例一制備的氧化硅-魚精蛋白-pss雜化微膠囊和對比例一制備的魚精蛋白-pss微膠囊固定的過氧化氫酶在不同pH值下相對酶活力曲線圖。圖中▲表示本發(fā)明微膠囊曲線圖，一S—表示對比例微膠囊曲線圖。圖2為實施例一制備的氧化硅-魚精蛋白-pss雜化微膠囊和對比例一制備的魚精蛋白-pss微膠囊固定的過氧化氫酶在不同溫度下相對酶活力曲線圖。圖中一A—表示本發(fā)明微膠囊曲線圖，一參一表示對比例微膠囊曲線圖。圖3為本發(fā)明實施例二制備的氧化硅-魚精蛋白-pss雜化微膠囊的掃描電子顯微鏡照片，囊壁層由內(nèi)至外第1，3，5層為魚精蛋白層，2，4層為聚苯乙烯磺酸鈉層，外表層為氧化硅層。圖4為比例二制備的微膠囊的掃描電子顯微鏡照片，其中囊壁層由內(nèi)至外第l，3，5層為魚精蛋白層，2，4，6層為聚苯乙烯磺酸鈉層，無氧化硅外表層。具體實施方式實施例一將魚精蛋白溶解于0.lmol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為7.0，5mg/mL的魚精蛋白溶液；將聚苯乙烯磺酸鈉溶解于0.lmol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為7.0，得到5mg/mL的聚苯乙烯磺酸鈉溶液；將硅酸鈉溶解于去離子水中，用鹽酸調(diào)節(jié)其pH值為7.0，得到30mmol/L的硅酸鈉溶液。準確稱取60mg過氧化氫酶溶解于12mL0.2mol/L氯化鈣溶液中，得到5mg/mL過氧化氫酶溶液，向上述混合液中加入12mL0.2mol/L的碳酸鈉溶液，以轉(zhuǎn)速1000r/min攪拌30s，靜置10min，所得碳酸鈣沉淀用去離子水洗滌，得到含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。將含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒分散于24mL濃度為5mg/mL的魚精蛋白溶液中，浸泡10min，離心分離，用去離子水洗滌2次，得到組裝了一層魚精蛋白層的碳酸鈣顆粒；將組裝了一個魚精蛋白層的碳酸鈣顆粒分散于24mL濃度為5mg/mL的聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，浸泡10min，離心分離，用去離子水洗滌2次，得到組裝了內(nèi)層為魚精蛋白層、外層為聚苯乙烯磺酸鈉層的雙層囊壁層的碳酸鈣顆粒。重復上述以魚精蛋白溶液和聚苯乙烯磺酸鈉溶液交替浸泡的過程，可得到組裝了以魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的2-6個雙層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。將以上不同層數(shù)的顆粒分別分散于24mL濃度為5mg/mL的魚精蛋白溶液中，浸泡10min，離心分離，用去離子水洗滌2次后分散于120mL濃度為30mmol/LpH7.0的硅酸鈉溶液中，浸泡45min，離心分離，用去離子水洗滌2次，得到最外層為氧化硅，內(nèi)部為魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化顆粒。將氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒浸泡于120mL濃度0.lmol/L的乙二胺四乙酸二鈉溶液中，浸泡lh，離心分離，得到中空的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊。測定微膠囊固定化過氧化氫酶的泄漏率將固定化過氧化氫酶的微膠囊分別浸泡于PH3.0-pHll.O磷酸鹽緩沖溶液中15h，分別控制浸泡溫度為25-70°C。采用考馬斯亮蘭法(Bradford法)檢測溶液中過氧化氫酶的含量，得到固定化過氧化氫酶的泄漏率。測定微膠囊固定化過氧化氫酶的相對酶活力將30%過氧化氫溶液用0.05mol/L不同pH值的磷酸鹽緩沖溶液稀釋，得到濃度為0.01mol/L的過氧化氫溶液。向過氧化氫溶液中加入固定化過氧化氫酶的微膠囊，在37'C下進行過氧化氫分解反應(yīng)，用紫外一可見分光光度計確定過氧化氫的消耗量，并以最適pH條件下測得的固定化過氧化氫酶的酶活力為基準，計算得到固定化過氧化氫酶的相對酶活力。將30%過氧化氫溶液用0.05mol/LpH7.0的磷酸鹽緩沖溶液稀釋，得到濃度為0.01mol/L的過氧化氫溶液。向過氧化氫溶液中加入固定化過氧化氫酶的微膠囊，在不同溫度下進行過氧化氫分解反應(yīng)，用紫外一可見分光光度計確定過氧化氫的消耗量，并以最適溫度條件下測得的固定化過氧化氫酶的酶活力為基準，計算得到固定化過氧化氫酶的相對酶活力。測定微膠囊固定化過氧化氫酶的儲存穩(wěn)定性將30%過氧化氫溶液用0.05mol/LpH7.0磷酸鹽緩沖溶液稀釋，得到濃度為0.01mol/L的過氧化氫溶液。向過氧化氫溶液中加入固定化過氧化氫酶微膠囊，在37'C下進行過氧化氫分解反應(yīng)，用紫外一可見分光光度計確定過氧化氫的消耗量，得到固定化過氧化氫酶的初始酶活力。將固定化過氧化氫酶微膠囊分別存放l天、3天、6天、10天、15天、21天后，重復上述反應(yīng)過程，得到固定化過氧化氫酶酶的酶活力，以初始酶活力為基準，計算得到相對酶活力。對比例一將魚精蛋白溶解于0.lmol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為7.0，5mg/mL的魚精蛋白溶液；將聚苯乙烯磺酸鈉溶解于0.lmol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為7.0，得到5mg/mL的PSS溶液。準確稱取60mg氧化氫酶溶解于12mL0.2mol/L氯化鈣溶液中，得到5mg/mL過氧化氫酶溶液，向上述混合液中迅速傾倒入12mL0.2mol/L的碳酸鈉溶液，劇烈攪拌30s，靜置10min，所得碳酸鈣沉淀用去離子水洗滌，得到含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。將含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒分散于24mL濃度為5mg/mL的魚精蛋白溶液中，浸泡lOmin，離心分離，用去離子水洗滌2次，得到組裝了一層魚精蛋白層的碳酸鈣顆粒；將組裝了一層魚精蛋白層的碳酸鈣顆粒分散于24mL濃度為5mg/mL的聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，浸泡10min，離心分離，用去離子水洗滌2次，得到組裝了內(nèi)層為魚精蛋白層、外層為聚苯乙烯磺酸鈉層的雙層囊壁層的碳酸鈣顆粒。重復上述以魚精蛋白溶液和聚苯乙烯磺酸鈉溶液交替浸泡的過程，可得到組裝了以魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的2-6個雙層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒。將以上顆粒溶解于120mL濃度0.1mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液中，得到2至6個雙層的中空魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉高分子微膠囊。按照實施例一中的方法測定魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉高分子微膠囊固定化過氧化氫酶的泄漏率、不同溫度和pH值下的相對酶活力以及儲存穩(wěn)定性。實施例二本實施例與實施例一過程相同，只是改變其中的將過氧化氫酶用量變?yōu)?4mg,相應(yīng)的過氧化氫瞎?jié)舛茸優(yōu)?mg/mL。將氯化鈣和碳酸鈉的濃度均變?yōu)?.4mol/L，將攪拌速度變?yōu)?200r/min，將攪拌時間變?yōu)?0s，將靜置時間變?yōu)?5min。將魚精蛋白溶液濃度變?yōu)?mg/mL，聚苯乙烯磺酸鈉溶液濃度變?yōu)?mg/mL，在魚精蛋白和聚苯乙烯磺酸鈉溶液中的浸泡時間均變?yōu)?5min。硅酸鈉溶液pH值變?yōu)?.5和濃度變?yōu)?0mmol/L，所用硅酸鈉溶液體積變?yōu)?8mL，在硅酸鈉溶液中的浸泡時間變?yōu)?0min。乙二胺四乙酸二鈉溶液的濃度變?yōu)?.2mol/L,浸泡時間變?yōu)?h。對比例二本實施例與實施例一過程相同，只是改變其中的將過氧化氫酶用量變?yōu)?4mg,相應(yīng)的過氧化氫酶濃度變?yōu)?mg/mL。將氯化鈣和碳酸鈉的濃度均變?yōu)?.4mol/L，將攪拌速度變?yōu)?200r/min，將攪拌時間變?yōu)?0s，將靜置時間變?yōu)?5rain。將魚精蛋白溶液濃度變力2mg/mL，聚苯乙烯磺酸鈉溶液濃度變?yōu)?mg/mL，在魚精蛋白和聚苯乙烯磺酸鈉中的浸泡時間均變?yōu)?5min。乙二胺四乙酸二鈉溶液的濃度變?yōu)?.2mol/L，浸泡時間變?yōu)?h。表1所示為實施例一和對比例一測定的不同層數(shù)氧化硅一魚精蛋白-PSS雜化微膠囊與魚精蛋白-PSS高分子微膠囊固定化過氧化氫酶的泄漏率對比結(jié)果。表l<table>tableseeoriginaldocumentpage9</column></row><table>表2所示為實施例一和對比例一測定的氧化硅一魚精蛋白-PSS雜化微膠囊與魚精蛋白-PSS高分子微膠囊固定化過氧化氫酶在不同pH值下的泄漏率對比結(jié)果。表2<table>tableseeoriginaldocumentpage9</column></row><table>表3所示為實施例一和對比例一測定的氧化硅一魚精蛋白-PSS雜化微膠囊與魚精蛋白-PSS高分子微膠囊固定化過氧化氫酶在不同溫度下的泄漏率對比結(jié)果。<table>tableseeoriginaldocumentpage9</column></row><table>表4所示為實施例一和對比例一測定的氧化硅一魚精蛋白-PSS雜化微膠囊與魚精蛋白-PSS高分子微膠囊固定化過氧化氫酶儲存21天過程中酶活力的對比結(jié)果。表4<table>tableseeoriginaldocumentpage9</column></row><table>權(quán)利要求1.一種氧化硅—魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊，該微膠囊內(nèi)固定著過氧化氫酶，它由表面層和表面層內(nèi)的囊壁層構(gòu)成，其特征在于，表面層為氧化硅層，囊壁層為由內(nèi)至外依次由魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層交替構(gòu)成，其中魚精蛋白層層位為奇數(shù)，聚苯乙烯磺酸鈉層層位為偶數(shù)，外表層氧化硅層與囊壁層的魚精蛋白層相結(jié)合。2.—種權(quán)利要求1所述的氧化硅一魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊的制備方法，其特征在于包括以下過程(1)將過氧化氫酶溶解于0.2-0.4mol/L的氯化鈣溶液中，過氧化氫酶濃度為2-5mg/mL，按體積比1:1向上述溶液中加入0.2-0.4mol/L的碳酸鈉溶液，以轉(zhuǎn)速1000-1200r/min攪拌30-60s，靜置10-15min，所得的碳酸鈣沉淀用去離子水洗滌，得到含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒；(2)將魚精蛋白溶解于0.1-0.5mol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到2-5mg/mL的魚精蛋白溶液；(3)將聚苯乙烯磺酸鈉溶解于0.1-0.5mol/L的氯化鈉溶液中，用鹽酸或氫氧化鈉調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到3-5mg/mL的聚苯乙烯磺酸鈉溶液；(4)將硅酸鈉溶解于去離子水中，用鹽酸調(diào)節(jié)其pH值為6.5-7.0，配制得到30-50mmol/L的硅酸鈉溶液；(5)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與魚精蛋白溶液的體積毫升數(shù)之比為1:50—100，將步驟(1)制得的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒加入步驟(2)制得的魚精蛋白溶液中，浸泡10-20min，離心分離，用去離子水洗滌，得到組裝了第1層魚精蛋白層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒；(6)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與聚苯乙烯磺酸鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:50-100，將步驟(5)組裝了第1層魚精蛋白層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，分散于步驟(3)制得的聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，浸泡10-20min，離心分離，用去離子水洗滌，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層的雙層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒；(7)將步驟(6)所制得的組裝雙層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，按照步驟(5)的過程進行，分散于魚精蛋白溶液中，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層，第3層為魚精蛋白層的3層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒；(8)將歩驟(7)所制得的組裝3層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，按照歩驟(6)的過程進行，分散于聚苯乙烯磺酸鈉溶液中，得到組裝了第l層為魚精蛋白層，第2層為聚苯乙烯磺酸鈉層，第3層為魚精蛋白層，第4層為聚苯乙烯磺酸鈉層的4層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，如此重復步驟(5)和歩驟(6)，得到組裝了以魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的多層囊壁層的過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒，其中囊壁層的最外層為魚精蛋白層；(9)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與硅酸鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:200-500，將步驟(8)制得的組裝了多層囊壁層的含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒分散于步驟(4)制得的硅酸鈉溶液中，浸泡30-45min，離心分離，用去離子水洗滌，得到外表層為氧化硅層，囊壁層為魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層相互間隔的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化顆粒；(10)按含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒質(zhì)量克數(shù)與乙二胺四乙酸二鈉溶液的體積毫升數(shù)之比為1:200-1:500，將歩驟(9)制得的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化顆粒浸入濃度為O.l-0.2mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液中，浸泡1-2h，離心分離，得到囊內(nèi)固定著過氧化氫酶的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊。全文摘要本發(fā)明公開了一種氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠囊及制備方法。該微膠囊由表面的氧化硅層和囊壁層構(gòu)成，其中囊壁層為由內(nèi)至外依次由魚精蛋白層與聚苯乙烯磺酸鈉層相間排列組成。其制備方法包括魚精蛋白溶液、聚苯乙烯磺酸鈉溶液、硅酸鈉溶液的配制，含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒的制備，在含過氧化氫酶的碳酸鈣顆粒表面組裝魚精蛋白層和聚苯乙烯磺酸鈉層，在囊壁表面形成氧化硅層，碳酸鈣顆粒溶解后得到囊內(nèi)固定著過氧化氫酶的氧化硅-魚精蛋白-聚苯乙烯磺酸鈉雜化微膠。本發(fā)明的優(yōu)點在于，工藝過程簡單，制得的微膠囊對過氧化氫酶的泄漏率低，抗高溫和耐酸堿環(huán)境能力強，儲存穩(wěn)定性好。文檔編號B01J13/02GK101429503SQ20081015373公開日2009年5月13日申請日期2008年12月4日優(yōu)先權(quán)日2008年12月4日發(fā)明者洪吳,姜忠義,健李申請人:天津大學