本發(fā)明屬于重組蛋白的制備方法技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種人源程序性死亡因子配體hpd-l2蛋白的制備方法。
背景技術(shù):
pd-l2作為b7家族的第5個(gè)成員,曾被命名為b7-dc或btdc,是程序性死亡因子1(programmeddeath-1,pd-1)的主要配體之一。b7家族是僅可以從抗原遞呈細(xì)胞apc單向傳遞信號(hào)至t細(xì)胞的共刺激分子。在t淋巴細(xì)胞增殖過程中,pd-l2信號(hào)通路充當(dāng)免疫反應(yīng)負(fù)性反饋調(diào)節(jié)信號(hào),在免疫調(diào)節(jié)方面起十分重要的作用。pd-l2與t細(xì)胞表面的pd-1受體結(jié)合后通過pd-1-pd-l2信號(hào)通路調(diào)控t細(xì)胞增殖及細(xì)胞因子分泌,負(fù)性調(diào)節(jié)t細(xì)胞活化并促進(jìn)t細(xì)胞凋亡,從而抑制腫瘤細(xì)胞的免疫逃逸。該信號(hào)通路作為重要的細(xì)胞周期檢查點(diǎn),發(fā)揮著特異性的抗原依賴性負(fù)性調(diào)控作用,是藥物干涉機(jī)制以及抗腫瘤免疫治療的靶分子之一,具有潛在的臨床應(yīng)用價(jià)值。hpd-l2蛋白可作為抗原提供抗體結(jié)合的表位,該蛋白的制備是后續(xù)hpd-l2單克隆抗體制備的前提條件,也為單克隆抗體的制備奠定基礎(chǔ)。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
為了解決上述問題,本發(fā)明提供一種人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白的制備方法。
為此采用如下的技術(shù)方案:
一種人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白,氨基酸序列和核苷酸序列如seqidno.1-2所示。
所述的蛋白質(zhì)為如下1)-2)所示的蛋白質(zhì):
1)氨基酸序列和核苷酸序列分別如seqidno.1-2所示組成的蛋白質(zhì);
2)將seqidno.1-2所示的氨基酸序列和/或核苷酸序列進(jìn)行一個(gè)和或幾個(gè)
氨基酸/核苷酸序列的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的由1)衍生的蛋白質(zhì);
一種人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白的制備方法,采用如下步驟:
1)以人源程序性死亡因子配體pd-l2的全長編碼基因(序列號(hào)為nm025239.3)為模板,利用pcr技術(shù)獲得hpd-l2整個(gè)胞外段基因,利用ndei與xhoi限制性內(nèi)切酶同時(shí)雙酶切pcr產(chǎn)物與載體pet-22b,利用t4dna連接酶進(jìn)行連接,獲得連接產(chǎn)物;
2)制備dh5α感受態(tài)細(xì)胞,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至dh5α感受態(tài)細(xì)胞,挑取陽性克隆,送至公司進(jìn)行基因測(cè)序,測(cè)序成功,獲得pet-22b-hpd-l2重組質(zhì)粒;
3)制備rossetatm(de3)的感受態(tài)細(xì)胞,將步驟2)獲得的pet-22b-hpd-l2重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至rossetatm(de3)感受態(tài)細(xì)胞中,獲得重組菌的單菌落;
4)挑取單菌落,于10ml含有50μg/ml卡那霉素和35μg/ml氯霉素的lb培養(yǎng)基,在37℃條件下過夜培養(yǎng)接種液,接種液按照1:100的體積比接入1l含有50μg/ml卡那霉素和35μg/ml氯霉素的lb培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至od600nm值為0.6-0.8之間,然后加入終濃度為0.8mm的iptg于22℃誘導(dǎo)8h,收集菌體;
5)將上述菌體重懸于裂解緩沖液pbs中,超聲破碎,離心,收集上清;
6)將步驟5)獲得的上清,利用ni-nta柱親和層析法純化;
7)將步驟6)中收集的目的蛋白洗脫液裝進(jìn)透析袋中,利用pbs緩沖液進(jìn)行蛋白透析;
8)將步驟7)中透析后的hpd-l2蛋白液置于濃縮管中濃縮,獲得高濃度的hpd-l2蛋白;
9)利用western-blot技術(shù)檢測(cè)獲得的hpd-l2蛋白;
10)利用圓二色譜技術(shù)(cd)測(cè)定步驟8)中獲得hpd-l2蛋白,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:該重組蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)折疊較好,以β折疊為主。
所述hpd-l2的基因片段長度為600bp,編碼200個(gè)氨基酸。
所述步驟2)中連接產(chǎn)物和dh5α感受態(tài)細(xì)胞的體積比為1:3;所述步驟3)中重組質(zhì)粒和rossetatm(de3)感受態(tài)細(xì)胞體積比為1:60。
所述步驟5)中裂解緩沖液pbs中含有:122mmnacl,2.7mmkcl,10mmna2hpo4,2mmkh2po4,ph7.4。
本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)在于:采用原核細(xì)胞rossetatm(de3)宿主菌誘導(dǎo)表達(dá)蛋白,能夠穩(wěn)定高效的獲得人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白,且獲得的蛋白具有純度高,產(chǎn)量高,均一性好等特點(diǎn)。本發(fā)明所采用的人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白的制備方法具有流程簡(jiǎn)便、周期短、成本低等優(yōu)點(diǎn)。
附圖說明
圖1:瓊脂糖凝膠電泳鑒定hpd-l2蛋白胞外結(jié)構(gòu)域基因的pcr結(jié)果。泳道
1:pd-l2,pcr擴(kuò)增產(chǎn)物。
圖2:15%聚丙烯酰胺凝膠電泳(sds-page)鑒定hpd-l2重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果圖。泳道1:誘導(dǎo)前破碎的全菌總蛋白;泳道2:誘導(dǎo)8h后破碎的全菌總蛋白;泳道3:誘導(dǎo)8h破碎離心后的沉淀;泳道4:誘導(dǎo)8h破碎離心后的上清。
圖3:hpd-l2重組蛋白純化后的sds-page圖。泳道1:hpd-l2包涵體溶解液;泳道2:過柱流穿液;泳道3-6分別為洗雜和洗脫液,咪唑濃度依次為:10mm、20mm、30mm、50mm、250mm。
圖4:?jiǎn)慰箼z測(cè)hpd-l2蛋白的wb結(jié)果圖。
圖5:cd測(cè)定hpd-l2蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)折疊,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:該蛋白在192nm呈現(xiàn)正峰,在218nm處有一個(gè)明顯的負(fù)峰,說明hpd-l2蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)折疊較好,且主要以β折疊為主的構(gòu)象存在。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)本發(fā)明的具體實(shí)施方式進(jìn)行詳細(xì)的描述,但應(yīng)當(dāng)理解本發(fā)明的保護(hù)范圍并不受具體實(shí)施方式的限制。
除非另有其他明確表示,否則在整個(gè)說明書和權(quán)利要求書中,術(shù)語“包括”或其變換如“包含”或“包括有”等等將被理解為包括所陳述的元件或組成部分,而并非排除其他元件或其他組成部分。
下述實(shí)施例中所使用的實(shí)驗(yàn)方法如無特殊說明,均為常規(guī)方法。
下述實(shí)施例中所使用的材料、試劑等,如無特殊說明,均可從商業(yè)途徑獲得。
實(shí)施例1
具體采用如下步驟:
1)hpd-l2基因的獲取和分子克隆以及重組質(zhì)粒pet-22b-hpd-l2的構(gòu)建:本發(fā)明涉及hpd-l2蛋白的胞外結(jié)構(gòu)域的蛋白制備,其堿基數(shù)約為560bp,蛋白分子量約為22kda。利用引物設(shè)計(jì)軟件primerpremier5.0設(shè)計(jì)hpd-l2蛋白的胞外結(jié)構(gòu)域的上游引物:5’ggactgccatatgttcacagtgacagtcc3’(酶切位點(diǎn),ndei)和下游引物:5’aatctcgaggtcaatgctggccaaag3’(酶切位點(diǎn),xhoi)。取人工合成的hpd-l2全長基因(序列號(hào)為nm025239.3)1.5μl,上述引物正反引物各1μl,加入15μl2×dntp,2μl的pcrdna聚合酶,最后加入4.5μlddh2o,混勻,進(jìn)行pcr擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)。
pcr擴(kuò)增條件為95℃預(yù)變性4min,95℃變性30s,65℃退火30s,72℃延伸60s,共循環(huán)35次。使用1%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定pcr實(shí)驗(yàn)結(jié)果(如附圖1所示),切取片段大小為560bp左右的片段,利用sanprep柱式dna膠回收試劑盒純化pcr產(chǎn)物。按照takara公司的標(biāo)準(zhǔn)雙酶切體系,取16μl上述純化的pcr產(chǎn)物,1μl限制性內(nèi)切酶ndei,1μl限制性內(nèi)切酶xhoi,2μl10×bufferh,混勻,于22℃靜置3-4h,然后加入2μl10×loadingbuffer終止反應(yīng)。按照同樣的方法對(duì)pet-22b載體進(jìn)行雙酶切。利用pcr清潔試劑盒對(duì)雙酶切產(chǎn)物進(jìn)行純化。對(duì)于純化后的產(chǎn)物進(jìn)行連接,步驟為:雙酶切后的pcr產(chǎn)物8μl,雙酶切后的載體pet-22b8μl,t4dna連接酶(takara)2μl,t4dna連接酶buffer(takara)2μl,混勻,于16℃反應(yīng)16h。
2)取-80℃保存的空的dh5α大腸桿菌于lb固體培養(yǎng)基上進(jìn)行劃線,放于22℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12~16h。從平板上挑取單菌落接種于50ml的lb液體培養(yǎng)基中,22℃、200rpm振蕩培養(yǎng)2h左右,直至對(duì)數(shù)生長期(od600nm為0.6左右);用滅菌的50ml離心管收集菌液,冰上放置15min(低溫使菌體一直處于對(duì)數(shù)生長期,菌體能保持最大的活力),4℃、4000rpm離心10min;棄掉上清,收集菌體,加入0.4倍體積的buffertfbi(ph5.8,300mm乙酸鉀,100mm氯化鉀,10mm氯化鈣,50mm四水氯化錳,15%甘油),吹勻重懸菌體后冰上放置20min,4℃、4000rpm離心10min;棄掉上清收集菌體,用移液槍吸取加入0.04倍體積的buffertfbii(ph1.5,10mmmops,75mmcacl2,10mmkcl,15%甘油),吹勻重懸菌體后冰上放置20min,分裝在滅菌的1.5ml離心管,每管60μl。按照同樣的方法制備rossetatm(de3)感受態(tài)細(xì)胞。取20μl酶連產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至60μldh5α超級(jí)感受態(tài)細(xì)胞中,輕輕吹打混勻,冰上放置30min,42℃水浴鍋中熱激90s,熱擊后迅速拿出放入冰盒中冰浴2min,加入800μl含有50μg/ml卡那霉素抗性的lb培養(yǎng)基,于22℃、200rpm的搖床上培養(yǎng)45min左右,4℃,4000rpm離心2min,無菌條件下取出600μl上清,剩余液體吹勻,涂布于含有50μg/ml卡那霉素抗性的瓊脂糖平板上,培養(yǎng)過夜,挑取單菌落,于5ml含有50μg/ml卡那霉素抗性的lb培養(yǎng)基中,過夜培養(yǎng),利用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證。對(duì)于雙酶切驗(yàn)證的陽性結(jié)果的重組菌,送至測(cè)序公司進(jìn)行進(jìn)一步的質(zhì)粒測(cè)序。
3)取測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pet-22b-hpd-l2,轉(zhuǎn)化至rossetatm(de3)感受態(tài)細(xì)胞中。挑取單克隆,接種于10ml含有50μg/ml卡那霉素的lb培養(yǎng)基中,過夜培養(yǎng)接種液,接種液按照1:100的體積比例接種到1l含有50μg/ml卡那霉素的lb培養(yǎng)基中,于37℃震蕩培養(yǎng)2.5-3h至od600nm值為0.6-0.8之間,加入終濃度為0.8mm的iptg,于22℃,200rpm條件下繼續(xù)振蕩培養(yǎng)8h。4℃、8000g離心5min收集菌體。使用pbs緩沖液洗滌菌體兩次,然后利用50ml的pbs重懸菌體,超聲破碎,破碎條件為:超聲破碎儀的變幅桿插入液面三分之一處,功率10%,工作2s,停3s,破碎持續(xù)45min。破碎結(jié)束后取樣作為破碎的全菌,剩下的菌體4℃下12000g離心10min,收集上清,棄去沉淀,并把上清與沉淀取樣后保存在4℃冰箱。
4)sds-page檢測(cè)hpd-l2蛋白的表達(dá)情況:將步驟3)中破碎的全菌,上清和沉淀以及誘導(dǎo)前的樣品進(jìn)行處理,上樣。在電泳過程中采用恒壓100v進(jìn)行蛋白樣品的濃縮和恒壓120v進(jìn)行蛋白樣品的分離。電泳完畢后取下凝膠置于染色液中,在60℃下染色(考染法染色)1h左右,放入脫色液中進(jìn)行脫色,將脫色完的凝膠進(jìn)行拍照(如附圖2所示)。
5)ni-nta柱親和層析純化hpd-l2蛋白:
a)取5mlni-nta填料置于玻璃柱中,自然沉降30min;
b)利用30ml的ddh2o清洗柱子,然后用30ml平衡液(ph8.5,100mmtris-hcl,300mmnacl)平衡柱子,流速3s每滴;
c)將待過柱的hpd-l2蛋白樣品13000g,4℃離心15min,收集上清,0.45μm的濾膜進(jìn)行過濾,待上樣;
d)將過濾后的蛋白上樣,2-3s每滴的流速,冰上收集流穿樣品;
e)用不同咪唑濃度的緩沖液洗雜和洗脫hpd-l2蛋白,3s每滴的流速。
6)將步驟5)純化獲得的hpd-l2重組蛋白裝進(jìn)預(yù)處理好的透析袋,置于pbs緩沖液中透析3次。
7)取步驟6)透析袋中的蛋白溶液,置于濃縮管濃縮,獲得高濃度(10mg/ml)的hpd-l2蛋白。
實(shí)施例2
利用western-blot技術(shù)檢測(cè)hpd-l2蛋白,具體操作步驟如下:
1)對(duì)純化后獲得的hpd-l2蛋白樣品,利用15%的sds-page進(jìn)行分離,電泳結(jié)束后取下膠,與pvdf膜做成“三明治”形狀,用濕轉(zhuǎn)法進(jìn)行轉(zhuǎn)膜;
2)電轉(zhuǎn)完畢,取下pvdf膜,加入5%bsa-tbst(蛋白面朝下),于22?c搖床搖蕩(65rpm)封閉1h,以消除非特異性背景;
3)封閉結(jié)束后用tbst洗掉5%bsa-tbst,加入購買的pd-l2抗體作為一抗,于脫色搖床搖蕩孵育(60rpm)1h或者4?c孵育過夜(12-16h),使一抗與hpd-l2蛋白特異性結(jié)合;
4)回收一抗,用tbst在搖床中洗3次(60rpm),每次5min;
5)加入二抗,于脫色搖床孵育(60rpm)1h,使二抗與一抗充分結(jié)合;
6)回收二抗,用tbst在搖床中洗3次(60rpm),每次5min;
7)用ecl顯色試劑盒(200μl試劑a/張+200μl試劑b/張)孵育3min。去掉反應(yīng)液,轉(zhuǎn)移至保鮮膜上,壓片顯影定影。定影后自然干燥,佳能相機(jī)拍照,記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果(如附圖4)。
實(shí)施例3
利用圓二色譜技術(shù)測(cè)定hpd-l2蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)折疊情況,具體操作步驟如下:
1)將獲得的高純度的hpd-l2蛋白稀釋至緩沖液ph7.6,20mmtris-hcl
中,終濃度為:0.5mg/ml,12000g離心10min,取上清待用。
2)打開圓二色譜儀(cd),室溫靜置30min。
3)將步驟1)準(zhǔn)備好的hpd-l2蛋白樣品放入石英比色皿中,進(jìn)行測(cè)定,
記錄譜圖,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:獲得的hpd-l2蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)折疊較好,且以β折疊為主(如圖5)。
sequencelisting
<110>福州大學(xué)
<120>一種人源程序性死亡因子配體pd-l2蛋白的制備方法
<130>4
<160>4
<170>patentinversion3.3
<210>1
<211>201
<212>prt
<213>hpd-l2氨基酸序列
<400>1
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<210>2
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<400>2
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