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一種表達呼吸道合胞病毒F蛋白的重組載體及方法與流程

文檔序號:11838016閱讀:570來源:國知局
一種表達呼吸道合胞病毒F蛋白的重組載體及方法與流程

本發(fā)明屬于生物技術和生物醫(yī)藥領域,具體涉及一種表達RSV F蛋白重組載體及F蛋白制備方法。



背景技術:

人呼吸道合胞病毒(RSV)是副粘病毒科、肺炎病毒亞科、肺病毒屬的病原性病毒。RSV的基因組是編碼11個蛋白的負鏈RNA分子。RNA基因組與病毒N蛋白緊密關聯(lián)形成包裹在病毒包膜內的核衣殼。根據G糖蛋白的抗原性的不同,已有A和B兩個亞型。RSV主要感染鼻腔以及肺部大、小氣道的上皮細胞,也可能感染肺泡巨噬細胞和肺部其他類型的細胞。機體在對抗RSV感染中起主要作用的是細胞免疫,其中細胞毒性T淋巴細胞(CTL)是清除受病毒感染細胞的關鍵因素。CD4+T細胞和CD8+T細胞在清除上、下呼吸道內的病毒過程中均能發(fā)揮有效的作用。在RSV外膜具有G、F、SH等跨膜糖蛋白,共同參與病毒外膜與宿主細胞膜的融合以及細胞培養(yǎng)過程中合胞體的形成,其中G、F為兩個重要的膜蛋白成分。G蛋白不僅與病毒和細胞的黏附有關,而且RSV病毒的A、B兩亞型的主要差異也存在于G蛋白中,并且G蛋白在亞型間及亞型內變異極大,是RSV逃逸機體免疫攻擊的重要手段。F蛋白與病毒進入細胞并形成特征性的合胞體有關,還具有促使RSV在感染細胞間傳播及溶血的作用。

F和G蛋白是激發(fā)機體產生保護性抗體最主要的病毒抗原。但G蛋白具有較高的亞型特異性及變異性,故不宜制成疫苗,與之相比F蛋白的抗原性比較穩(wěn)定,較少變異,并且F蛋白是誘導機體產生免疫保護的主要蛋白,它誘導產生的抗體能保護機體免受RSV A、B兩亞型病毒的侵襲,而G蛋白抗體僅對同亞型病毒提供保護,所以F蛋白更有研究價值。

雖然已研制過多種形式的RSV疫苗,如福爾馬林滅活疫苗(FI-RSV)、亞單位疫苗和減毒疫苗、冷適應株疫苗、病毒載體疫苗、DNA疫苗等,但至今尚無可用于預防RSV感染的疫苗問世。同時,由于FI-RSV失敗的陰影及RSV疫苗研制中面臨的動物模型局限、免疫接種人群免疫系統(tǒng)發(fā)育不成熟、母傳抗體干擾和存在兩種不同抗原亞型等諸多復雜問題,使學術界及產業(yè)界一度等對成功研制出有效的RSV疫苗產生了懷疑和悲觀情緒。不過,隨著阿斯利康醫(yī)學免疫公司和美國生物制藥Novavx公司疫苗候選物的研發(fā),特別是Novavx公司的F蛋白納米粒子基因工程呼吸道合胞病毒疫苗已完成Ⅰ、Ⅱ期臨床實驗,證明肌肉注射該疫苗的耐受性良好,具有較好的免疫原性,因此研究F蛋白基因工程疫苗具有廣闊的前景。

RSV F蛋白由mRNA翻譯為約574個左右氨基酸的蛋白,稱為F0。F0的翻譯后加工包括通過內質網中的信號肽酶移除N端信號肽。轉運高爾基體內的細胞蛋白酶(特別是弗林蛋白酶(furin))還在兩個位置(約109/110和約136/137)切割F0。該切割導致短干擾序列移除并產生兩種仍彼此相關的亞基,稱為F1(約50kDa,C端約為殘基137-574)和F2(約20kDa,N端,約為殘基1-109)。F1在N端含疏水性融合肽以及2個兩性七肽重復區(qū)(HRA和HRB)。HRA靠近所述融合肽,HRB靠近所述跨膜結構域。3個F1-F2異源二聚體在病毒粒子中組裝為F1-F2同源三聚體。由于RSV F蛋白加工、構造和重折疊的復雜性,比較難以獲得純化的、均質的免疫原性制備物。

RSV F0 在形成具有免疫原性的抗原物之前需要弗林蛋白酶的酶切,在昆蟲細胞表達系統(tǒng)中弗林蛋白酶表達量不足或者活性不高,導致F0不能完全被切割為F2和F1,影響F1-F2同源三聚體的形成,嚴重限制了F蛋白的表達效率。

此外,F(xiàn)蛋白的純化也是極為重要的,現(xiàn)有技術缺乏高效的F蛋白純化方法。



技術實現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的在于提供一種高效表達RSV F蛋白的重組載體及方法,該表達載體表達的F蛋白在不需要弗林蛋白酶存在的情況下高效剪切為F2和F1。

本發(fā)明所采取的技術方案是:

一種表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體,由骨架載體和插入其中的呼吸道合胞病毒F蛋白表達框構成,呼吸道合胞病毒F蛋白表達框位于載體啟動子下游,包括F2蛋白基因序列、F1蛋白基因序列,F(xiàn)2和F1之間由2A序列連接;2A序列為編碼含D-X-E-X-N-P-G-P氨基酸序列的核酸序列。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體中,呼吸道合胞病毒F蛋白表達框的序列根據宿主細胞的偏好性進行密碼子優(yōu)化。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體的宿主細胞為Spodoptera frugiperda草地夜蛾細胞Sf9。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體的骨架載體選自pFastBacTM-1和pFastBacTM-dual。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體的F1蛋白基因序列如SEQ ID NO:1所示。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體的F2蛋白基因序列如SEQ ID NO:2所示。

優(yōu)選的,上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體的2A序列如SEQ ID NO:3所示。

一種表達呼吸道合胞病毒F蛋白的方法,包括如下步驟:

1)使用上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體轉化大腸桿菌DH10 multiBac感受態(tài)細胞,培養(yǎng)后提取重組大腸桿菌DH10 multiBac的質粒,獲得重組桿狀病毒載體;

2)使用重組桿狀病毒載體轉染Sf9細胞,培養(yǎng)后得到包含編碼F蛋白基因的重組桿狀病毒;

3)使用包含編碼F蛋白基因的重組桿狀病毒感染宿主細胞,培養(yǎng)至產生足夠的F蛋白;

4)收集宿主細胞并使用裂解液裂解細胞,裂解液的組成為25 mM Tris-Cl (pH 8.0)、50 mM NaCl, 0.1 % NP9;

5)去除細胞碎片,得到的清液分別經過強陰離子柱EMD TMAE、外源凝集素親和介質GST-Sepharose 4B和強陽離子EMD SO3純化,得到純化的呼吸道合胞病毒F蛋白。

本發(fā)明的有益效果是:

本發(fā)明的重組載體,同時表達多個基因,表達的蛋白可以高效自剪切為F2和F1,進而形成F1-F2同源三聚體。

本發(fā)明方法可以高效制備得到純化的F蛋白,得到的純化F蛋白可以作為抗原使用,可以誘導高水平的抗體免疫反應。

附圖說明

圖1是Bac- F2-2A-F1免疫熒光和Western blot分析圖;

圖2是Bac- F2-2A-F1 F蛋白SDS-PAGE和Western blot分析圖;

圖3是F蛋白免疫小鼠血清中和RSV A2中和抗體分析;

圖4是不同優(yōu)化序列的蛋白表達情況;

圖5是不同培養(yǎng)基對蛋白表達情況的影響。

具體實施方式

下面結合具體實驗,進一步說明本發(fā)明的技術方案。

1主要材料

病毒:RSV long RSV A2;

細胞:昆蟲細胞Sf9。

1.2 主要試劑

PremerStar DNA聚合酶(大連寶生物);

Bac重組桿狀質粒提取試劑盒(Omiga生物);

卡那霉素、慶大霉素、四環(huán)素、X-gal、IPTG(北京鼎國);

LB培養(yǎng)基(Sigma);

Grace's培養(yǎng)基、FBS(Gibco);

Cellfectinll脂質體(Sigma);

Palivizumab單抗;

HRP羊抗人二抗(Invitrogen);

Donkey Anti-human Alexa Fluor 488(Invitrogen)。

表達呼吸道合胞病毒F蛋白載體的構建

根據宿主細胞Spodoptera frugiperda草地夜蛾(Sf9)細胞系的偏愛性進行密碼子蟲源優(yōu)化,得到優(yōu)化后的RSV F1蛋白和F2蛋白的基因序列,分別如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示;

設計引物,將F1蛋白和F2蛋白的基因序列通過2A序列(SEQ ID NO:3)(對應的核酸序列為:SEQ ID NO:4)連接,置于pFastBac 1質粒的Ppolh啟動子下,獲得穿梭載體pFastBacTM1-F2-2A-F1,即表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體。

類似的,可以使用其他骨架載體構建得到表達呼吸道合胞病毒F蛋白的載體。

呼吸道合胞病毒F蛋白的表達純化

1)將構建得到的穿梭載體pFastBacTM1-F2-2A-F1通過Invitrogen的Bac-to-Bac 系統(tǒng),轉化大腸桿菌DH10 multiBac,培養(yǎng)后,篩選提取陽性重組大腸桿菌DH10 multiBac的質粒,獲得重組桿狀病毒載體;

2)將上一步獲得的重組桿狀病毒載體轉染Sf9細胞獲得相應的第一代重組桿狀病毒,即重組呼吸道合胞桿狀病毒,分別命名為Bac- F2-2A-F1-V1,以MOI=0.1對各病毒進行連續(xù)擴增,獲得的第三代病毒Bac- F2-2A-F1-V3;

3)將Bac- F2-2A-F1-V3以MOI=1感染Sf9懸浮細胞,樣品表達2L,培養(yǎng)4天待細胞完全病變后收獲細胞沉淀;

4)將收獲的細胞以10ml/mg加入裂解液25mM phosphate buffer,pH 8.0;50mM NaCl;0.1% NP9;在冰上均勻攪拌2h,然后將裂解產物使用JA-14轉子(Beckman)高速離心收集上清,再將上清液經分別經強陰離子柱EMD TMAE,外源凝集素親和介質GST-Sepharose 4B和強陽離子EMD SO3純化即可獲得呼吸道合胞病毒F蛋白。

重組桿狀病毒蛋白表達Western blot分析

按照Invitrogen說明書,將上述制得的Bac- F2-2A-F1-V3重組桿狀病毒以MOI=1感染Sf9懸浮細胞,以SF900-Ⅱ為懸浮培養(yǎng)基,培養(yǎng)4天,收集細胞和上清,取細胞和上清樣品進行10%的SDS-PAGE電泳,轉印PVDF膜,5%的脫脂奶粉封閉過夜,PBST漂洗5次,以1:4000稀釋一抗Palivizumab,室溫孵育2h,PBST稀釋5次,HRP標記的二抗羊抗人室溫孵育1.5h,PBST漂洗5次,利用超敏發(fā)光液(A液25ml、B液25ml)進行壓片顯色。檢測結果如圖1(B)所示, 檢測到的目的蛋白為F0和F1蛋白(Palivizumab中和位點集中在F1上,F(xiàn)2檢測不到)。

F蛋白經SDS-PAGE和Western blot分析,檢測結果如圖2所示, SDS-PAGE和Western blot分析,結果表明,F(xiàn)蛋白純度能達到90%以上。

呼吸道合胞病毒F蛋白疫苗效力分析

疫苗的制備和免疫程序

稀釋制備的呼吸道合胞病毒F蛋白,并分別加入1/10體積的AL(OH)3佐劑(1000mg/ml)混合,使得蛋白濃度為10μg/ml,利用以上純化的F蛋白對六周齡的BALB/c母鼠分別在0, 28天免疫兩次,每次每只分別免疫20μg、5μg、1μg,。同時設置同樣處理的未感染病毒的Sf9細胞作為陰性對照,每組免疫10小鼠。5周后小鼠眼球采血,收集血清,-80℃分裝保存。

免疫小鼠血清中和抗體滴度

取各組小鼠血清樣品,56℃滅活30min,用無血清的RPMI-1640培養(yǎng)基成倍比稀釋。

F-20μg、F-5μg和F-1μg免疫小鼠血清中和RSV A2株,將RSV A2用1640培養(yǎng)基稀釋到100 PFU/100μl。稀釋后的病毒液、樣品各取100μl,混合均勻,在37℃細胞培養(yǎng)箱放置2小時。吸去Hep-2細胞培養(yǎng)上清,取200μl混合液加入到6孔板Hep-2細胞中,加入陰性對照,放入37℃繼續(xù)培養(yǎng)2h。每孔加入4 ml 1%的甲基纖維素,放置于CO2培養(yǎng)箱中5天,去培養(yǎng)基,結晶紫染色,統(tǒng)計出斑情況,能使空斑數(shù)減少50%的血清稀釋度判定為血清的中和抗體滴度,計算各個樣品的中和抗體滴度。

實驗結果如圖3所示,本發(fā)明制備的F蛋白1μg、5μg和20μg免疫小鼠血清中和RSV A2都可以誘導1:256左右的中和效價,免疫劑量達到1μg以后,中和效價沒有明顯變化,說明當免疫劑量達到1ug時,中和效價達到最高;上述結果說明,本發(fā)明制備的呼吸道合胞病毒F蛋白誘導產生的抗體分別對RSV A2有較強的中和作用,因此本發(fā)明制備的呼吸道合胞病毒F蛋白可作為預防呼吸道合胞病毒感染相關疾病的疫苗。

密碼子優(yōu)化對F蛋白表達量的影響

按照上述表達呼吸道合胞病毒F蛋白載體的構建、呼吸道合胞病毒F蛋白的表達純化的操作,使用現(xiàn)有通用方法優(yōu)化得到的密碼子序列F1’( SEQ ID NO:5)替換SEQ ID NO:1所示的RSV F1蛋白,F(xiàn)2’(SEQ ID NO:6)替換SEQ ID NO:2所示的F2蛋白的基因序列,2A’替換SEQ ID NO:4所示的2A序列,檢測其表達情況。檢測結果如圖4所示,圖中,1為常規(guī)方法優(yōu)化后的密碼子序列的表達結果,2為本發(fā)明方法優(yōu)化后的表達結果,從圖中可以看出,本發(fā)明方法優(yōu)化的密碼子序列具有更高的表達活性,表達出來的F蛋白是常規(guī)方法優(yōu)化序列的近3倍。

SF900-Ⅱ培養(yǎng)基添加不同成分對F蛋白表達量的影響

按上述呼吸道合胞病毒F蛋白的表達純化的方法,分別在SF900-Ⅱ培養(yǎng)基添加不同的成分,其中,組(1)添加SF900-Ⅱ培養(yǎng)基質量的0.3%聚醚F-68,并添加終濃度為5g/L葡萄糖;組(2)添加SF900-Ⅱ培養(yǎng)基質量的0.3%聚醚F-68;組(3)為對照組,為SF900-Ⅱ培養(yǎng)基。實驗結果如圖5所示。從較長可以看出,組(1)的F蛋白表達量顯著高于其他兩組,說明其可以有效促進F蛋白的表達。

<110> 廣東華南聯(lián)合疫苗開發(fā)院有限公司

<120> 一種表達呼吸道合胞病毒F蛋白的重組載體及方法

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<160> 7

<170> PatentIn version 3.5

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<212> DNA

<213> 呼吸道合胞病毒

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aactacattg ataagcagct gctccccatc gttaacaaac aaagctgctc catttctaac 240

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ttctcggtga acgctggagt taccactccc gtctccacat acatgctgac gaactcagag 360

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ctggcttacg ttgtgcagtt gccactgtac ggtgtcatcg acaccccgtg ctggaaactc 540

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<212> DNA

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<212> DNA

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