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一種豬圓環(huán)病毒2型雙拷貝感染性克隆在間接ELISA檢測(cè)方法中的應(yīng)用與流程

文檔序號(hào):12056441閱讀:來源:國(guó)知局

技術(shù)特征:

1.一種豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)雙拷貝感染性克隆在間接ELISA檢測(cè)方法中的應(yīng)用,該P(yáng)CV2雙拷貝感染性克隆經(jīng)細(xì)胞轉(zhuǎn)染、傳代后再經(jīng)濃縮純化作為固相抗原載體用于間接酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)(ELISA)檢測(cè)方法中的應(yīng)用,用于PCV2相關(guān)疾病的診斷和治療。該豬圓環(huán)病毒2型雙拷貝感染性克隆的拯救方法包括以下四個(gè)步驟:

步驟一:雙拷貝感染性克隆pEGFP-N1-BD的構(gòu)建:

(1)PCV2 DNA的提取

a、從臨床PMWS癥狀豬群中分離得到PCV2毒株,進(jìn)行基因比對(duì)和序列分析,取含PCV2-GD毒株的細(xì)胞培養(yǎng)物200μL,加入20μLProteinase K溶液,混勻;

b、加入200μL緩沖液GB,充分顛倒混勻,70℃放置10分鐘,待溶液變清亮簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠,加入200μL無水乙醇,充分震蕩混勻15秒,簡(jiǎn)短離心去除管壁蓋內(nèi)壁的水珠;

c、將上一步所得溶液加入到試劑盒配的吸附柱CB3中,12000rpm離心30秒,倒掉廢液,將吸附柱放回收集管中,向吸附柱CB3中加入500μL緩沖液GD(使用前加入適量無水乙醇),12000rpm離心30秒,倒掉廢液,將吸附柱放回收集管中;

d、向吸附柱CB3中加入600μL緩沖液PW(使用前加入適量無水乙醇),12000rpm離心30秒,倒掉廢液,將吸附柱放回收集管中,該步驟重復(fù)兩次,然后將吸附柱CB3放回收集管中,12000rpm離心2分鐘,倒掉廢液,將吸附柱CB3置于室溫放置數(shù)分鐘,徹底晾干吸附柱中殘余的漂洗液,將吸附柱CB3轉(zhuǎn)入干凈的離心管中,向吸附膜中間部位懸空滴加60μL洗脫液TE,室溫放置2-5分鐘,12000rpm離心2分鐘,收集病毒基因組DNA,-20℃保存?zhèn)溆茫?/p>

(2)設(shè)計(jì)引物和選擇酶切位點(diǎn)

第一對(duì)引物:GDF1:cg ctcgag gctggctgaacttttg,GDR1 cga ccgcgg aaatttctgacaaacg,上游引物GDF1下劃線部分是Xho I酶切位點(diǎn),下游引物GDR1下劃線部分是Sac II酶切位點(diǎn);

第二對(duì)引物:GDF2:cat ccgcgg gctggctgaacca,GDR2 ca ggatccaaatttctgacaaacgttacaggg,上游引物GDF2下劃線部分是Sac II酶切位點(diǎn),下游引物GDR2下劃線部分是BamH I酶切位點(diǎn);

(3)全基因擴(kuò)增

以上述DNA為模板,利用設(shè)計(jì)的2對(duì)PCR引物GDF1/GDR1,GDF2/GDR2分別擴(kuò)增兩個(gè)拷貝的PCV2全基因組片段(即片段B、D);擴(kuò)增條件為:95℃預(yù)變性4min,94℃變性1min,54℃退火1min30s,72℃延伸3min,30個(gè)循環(huán),72℃延伸10min;PCR反應(yīng)體系如下:高保真酶Primer STAR 1μL,10×Buffer 5μL,dNTP Mix 8μL,PCV2 DNA 1μL,GDF1/GDF2 2.5μL,GDR1/GDR2 2.5μL,dd H2O 30μL,總共計(jì)50μL;

PCR結(jié)束后取5μL PCR產(chǎn)物在10g/L的瓊脂糖凝膠上電泳檢測(cè);

(4)雙拷貝全基因感染性分子克隆的構(gòu)建

將純化后的B片段與pEGFP-N1質(zhì)粒用Xho I酶、Sac II酶進(jìn)行同步雙酶切,切膠回收后再將二者按一定比例相連,連接采用10μL體系:B片段4μL,雙酶切的載體pEGFP-N1 1μL,連接酶Ligation High(含Buffer)5μL,隨后轉(zhuǎn)化到DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂卡那抗性板,篩選并提取陽性重組質(zhì)粒pEGFP-N1-B,再用Sac II酶、BamH I酶將D片段和重組質(zhì)粒pEGFP-N1-B進(jìn)行同步雙酶切,切膠回收后再將二者高效連接酶Ligation High按一定比例相連:D片段4μL,雙酶切的載體pEGFP-N1-B 1μL,連接酶Ligation High(含Buffer)5μL,轉(zhuǎn)化到DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂卡那抗性板,篩選并提取質(zhì)粒pEGFP-N1-BD,經(jīng)菌液PCR、 雙酶切鑒定以及序列測(cè)定,最終成功構(gòu)建雙拷貝重組質(zhì)粒pEGFP-N1-BD;

(5)重組質(zhì)粒雙酶切鑒定

pEGFP-N1-BD的雙酶切體系如下:BamHI 2μL,XhoI 2μLBuffer(10×K)2μL,dd H2O 9μL,pEGFP-N1-BD 15μL,共計(jì)30μL;將上述組分充分混勻,置于37℃水浴鍋內(nèi),酶切過夜,用1%瓊脂糖凝膠對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測(cè);

(6)測(cè)序鑒定

將酶切鑒定后的質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序;

(7)陽性重組質(zhì)粒大量提取

將已構(gòu)建好的雙拷貝重組質(zhì)粒pEGFP-N1-BD提取后測(cè)定濃度和純度,于-20℃保存?zhèn)溆茫唧w提取步驟如下:

a、平衡柱子:向吸附柱CP6中加入2.5ml平衡液BL,8000rpm離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中,取100ml過夜培養(yǎng)的已鑒定為陽性的菌液加入離心管,室溫8000rpm離心3分鐘收集細(xì)菌,盡量吸除上清,用干凈的吸水紙吸去管壁上的水滴;

b、向留有菌體沉淀的離心管中加入8ml溶液P1(已加入適量RNaseA),漩渦震蕩以徹底懸浮細(xì)菌細(xì)胞沉淀,向離心管中加入8ml溶液P2,立即溫和地上下翻轉(zhuǎn)混勻,室溫放置5分鐘,向離心管中加入8ml溶液P4,立即溫和地上下翻轉(zhuǎn)混勻,待溶液出現(xiàn)白色分散絮狀沉淀后室溫放置10分鐘左右,8000rpm離心10分鐘,使白色沉淀離至管底,將全部溶液小心倒入過濾器CS1中,慢慢推動(dòng)推柄,濾液收集在干凈的50ml干凈的離心管中;

c、向?yàn)V液中加入0.3倍濾液體積的異丙醇,上下顛倒混勻后轉(zhuǎn)移到吸附柱CP6中,室溫8000rpm離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CP6重新放回收集管中,向吸附柱中加入10ml漂洗液PW(已提前加入適量無水乙醇), 8000rpm離心2分鐘,該步驟重復(fù)2次,向吸附柱中加入3ml無水乙醇,室溫8000rpm離心2分鐘,倒掉廢液;

d、將吸附柱重新放回收集管中,8000rpm離心5分鐘,除去吸附柱中的殘留漂洗液,吸附柱CP6置于一個(gè)干凈的50ml收集管中,向吸附膜的中間部位滴加2ml洗脫液TB,室溫放置5分鐘,然后室溫8000rpm離心2分鐘,將50ml離心管中的洗脫液全部轉(zhuǎn)移到一個(gè)干凈的1.5ml離心管中,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

步驟二:PCV2感染性克隆在ST細(xì)胞上的轉(zhuǎn)染、傳代以及體外感染性鑒定

(1)重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染ST細(xì)胞

復(fù)蘇并傳代培養(yǎng)ST細(xì)胞,選用進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的無PCV1污染的ST細(xì)胞用胰酶按常規(guī)方法消化,以1×106個(gè)細(xì)胞/mL接種6孔板,每孔2mL,37℃5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞鋪滿約90%時(shí),通過脂質(zhì)體Lipofectamine 2000介導(dǎo)轉(zhuǎn)染無PCV1污染的ST細(xì)胞,具體轉(zhuǎn)染步驟如下:

每孔吸取150μL OPTI-MEM與10μL脂質(zhì)體Lipofectamine2000充分混勻后,再吸取150μLOPTI-MEM+3ug雙拷貝重組質(zhì)粒+3μL reagent plus;將上述兩種溶液混合,室溫下放置5min;與此同時(shí),將6孔板中的細(xì)胞用無血清MEM輕輕洗滌兩遍后,每孔加入2ml無血清培養(yǎng)基,隨后將質(zhì)粒/脂質(zhì)體復(fù)合物逐滴加入孔中,搖動(dòng)培養(yǎng)板,輕輕混勻,在37℃、5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5小時(shí),同時(shí)設(shè)平行轉(zhuǎn)染空載體pEGFP-N1作為陰性對(duì)照,6小時(shí)后,更換含10%血清的MEM,在37℃、5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),期間每隔12小時(shí)置于熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染是否成功,培養(yǎng)72小時(shí)后凍融收獲細(xì)胞培養(yǎng)物,按照普通病毒培養(yǎng)的方法對(duì)其進(jìn)行盲傳;

(2)在ST細(xì)胞上的傳代

構(gòu)建好的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染ST細(xì)胞72小時(shí)后,將病毒液反復(fù)凍融3次,離心 取上清,將正常ST細(xì)胞按1∶4比例傳代后,用T25細(xì)胞培養(yǎng)瓶進(jìn)行培養(yǎng),每瓶9ml細(xì)胞懸液,再吸取1ml轉(zhuǎn)染后培養(yǎng)72h收獲的細(xì)胞培養(yǎng)物上清輕輕搖晃均勻,置于37℃、5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),24h后棄掉細(xì)胞瓶中液體,用滅菌的PBS輕輕洗滌細(xì)胞表面2遍,換用2%胎牛血清的MEM營(yíng)養(yǎng)液10ml,繼續(xù)培養(yǎng)48h后病毒液反復(fù)凍融3次,離心取上清,將按此方法繼續(xù)盲傳;

(3)在ST細(xì)胞上的感染性鑒定

借助間接免疫熒光的方法對(duì)病毒在ST細(xì)胞上能否穩(wěn)定增殖進(jìn)行檢測(cè),具體操作步驟如下:將收獲的病毒液按10%的比例同步接種于消化好的ST細(xì)胞懸液,再接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,100μL/孔,24h后棄掉板內(nèi)液體,37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)48小時(shí),甩棄板內(nèi)液體,用PBS洗滌三遍,倒扣拍干孔內(nèi)液體后再進(jìn)行下面步驟:

a、固定:每孔加入100μL無水乙醇,先在室溫放置15min,再4℃放置1h,棄掉孔內(nèi)無水乙醇,拍干;

b、孵育一抗:用抗體稀釋液將抗PCV2 Cap蛋白鼠源單抗PCV2-A按1∶1000的比例稀釋,充分混勻后每孔加入100μL,37℃孵育1h。棄掉一抗,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干;

c、孵育二抗:用抗體稀釋液將FITC標(biāo)記的羊抗鼠IgG按1∶500的比例稀釋,充分混勻后每孔加入100μL,包裹上錫箔紙避光,37℃避光孵育1h。棄掉二抗,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干;

d、染核:將DAPI(4′,6-二脒基-2-苯基吲哚)用滅菌水稀釋到1ug/μL,充分混勻后每孔加入100μL,室溫下作用5分鐘后棄之,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干;

e、封片:每孔加入碳緩甘油100μL,倒置熒光顯微鏡下觀察。

步驟三:拯救毒株各代次盲傳病毒液PCR檢測(cè)

收獲每一代病毒液保存于-20℃冰箱,抽取部分代次病毒液提取DNA進(jìn)行PCR檢測(cè)。

步驟四:拯救毒株毒價(jià)的初步測(cè)定

抽取盲傳收獲的病毒液部分代次F5,F(xiàn)10,F(xiàn)15,F(xiàn)20,F(xiàn)25,F(xiàn)40,F(xiàn)60做間接免疫熒光實(shí)驗(yàn),計(jì)算陽性細(xì)胞孔數(shù),用Reed-Muench法計(jì)算半數(shù)細(xì)胞培養(yǎng)感染量進(jìn)行檢測(cè):

a、將長(zhǎng)成單層的ST細(xì)胞用0.25%的胰酶消化,分裝到96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,用維持液將待測(cè)病毒液以10倍倍比稀釋后同步接種ST細(xì)胞,每個(gè)稀釋度接種8孔細(xì)胞,每孔100μL,并留兩列ST細(xì)胞做空白對(duì)照,37℃5%CO2中培養(yǎng)24h;

b、棄去96孔細(xì)胞培養(yǎng)板內(nèi)的液體,用MEM細(xì)胞培養(yǎng)液輕輕洗滌細(xì)胞表面2次,加足維持液繼續(xù)培養(yǎng)48h,每孔加入100μL無水乙醇,先在室溫放置15min,再4℃放置1h,棄掉孔內(nèi)無水乙醇,拍干;

c、用抗體稀釋液將抗PCV2 Cap蛋白鼠源單抗PCV2-A按1∶1000的比例稀釋,充分混勻后每孔加入100μL,37℃孵育1h;棄掉一抗,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干,用抗體稀釋液將FITC標(biāo)記的羊抗鼠IgG按1∶500的比例稀釋,充分混勻后每孔加入100μL,包裹上錫箔紙避光,37℃避光孵育1h;棄掉二抗,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干;

d、將DAPI(4′,6-二脒基-2-苯基吲哚)用滅菌水稀釋到1ug/μL,充分混勻后每孔加入100μL,室溫下作用5分鐘后棄之,PBS震蕩洗滌3次,每次5分鐘,拍干;

e、每孔加入碳緩甘油100μL,倒置熒光顯微鏡下觀察,以出現(xiàn)綠色熒光者為陽性,表示病毒在此孔得到擴(kuò)增;記錄每列中出現(xiàn)綠色熒光的孔數(shù),按Reed-Muench法計(jì)算病毒的半數(shù)感染量(TCID50)。

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