專利名稱：耐高溫hsp70分子伴侶基因及其編碼的多肽和制備方法
技術(shù)領(lǐng)域：
本發(fā)明涉及突變或遺傳工程，尤其涉及一種耐高溫HSP70分子伴侶基因序列及編碼的多肽和制備方法。
背景技術(shù)：
HSP70廣泛分布于細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、線粒體和葉綠體等細(xì)胞的各個(gè)部分，它作為分子伴侶參與所有細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)的從頭合成和定位、蛋白質(zhì)的成熟和錯(cuò)誤折疊蛋白質(zhì)的降解及調(diào)節(jié)過程，因而能夠嚴(yán)重的影響生長(zhǎng)在正常條件和脅迫條件下生存的細(xì)胞功能和代謝過程。
HSP70之所以具有多種生物學(xué)功能，主要是由于它能夠以依賴于ATP的方式結(jié)合和釋放非天然構(gòu)象多肽的疏水片斷，并能通過遮蔽這些片斷而穩(wěn)定蛋白質(zhì)的松弛構(gòu)象和阻止聚集。但是HSP70不能獨(dú)自起作用，其功能依賴于其分子伴侶的協(xié)調(diào)作用。研究表明HSP70分子伴侶能夠提高HSP70的ATP酶活性和促進(jìn)其與底物的結(jié)合。如E.coli DnaK有兩個(gè)分子伴侶DnaJ和GrpE，DnaJ是41ku的熱休克蛋白(HSP40)，能為DnaK提供蛋白質(zhì)底物，并促進(jìn)其ATP酶活性；GrpE是22ku的熱休克蛋白HSP22，它能夠通過ADP和ATP的交換啟動(dòng)多肽的釋放，所以，GrpE又叫核苷酸交換因子。
HSP70分子伴侶作用的周期性是從DnaK的研究中獲得的，實(shí)際上真核生物細(xì)胞系HSP70的作用機(jī)理也是如此，但是GrpE類似物在真核生物細(xì)胞質(zhì)、細(xì)胞核和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中卻未找到，也許是沒有必要，因?yàn)椴溉轭悇?dòng)物HSC70本身具有一個(gè)核苷酸交換活性，另外真核生物HSP70的ATP酶反應(yīng)周期的限制性步驟不是ADP的解離，而是ATP水解本身。在真核系統(tǒng)中，ADP的解離對(duì)HSP70的ATP酶反應(yīng)周期甚至有負(fù)調(diào)節(jié)作用，如40ku蛋白Hip(p48)能專一性的與哺乳動(dòng)物HSP70的ATP酶功能域結(jié)合，減緩ADP的解離，從而穩(wěn)定HSP70與蛋白間的相互關(guān)系，此外，釀酒酵母YDJ1(DnaJ-like)促進(jìn)SSA1(細(xì)胞質(zhì)HSP70)ATP酶活性的能力遠(yuǎn)大于DnaJ對(duì)DnaK的作用，更重要的是YDJ1也能加速SSA1中ATP和ADP的釋放，這樣YDJ1在ATP酶水解周期中可能具有雙重的調(diào)節(jié)功能即同時(shí)具有水解DnaJ和GrpE的活性。
盡管HSP70分子伴侶系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)和功能方面的研究取得了很大進(jìn)展，但是分子伴侶提供蛋白質(zhì)底物的機(jī)理，特別是對(duì)真核生物而言還不清楚；另外ATP與HSP70 ATP酶功能域的結(jié)合和水解引起底物結(jié)合功能域構(gòu)象發(fā)生變化的機(jī)理仍然不知道。搞清楚這些問題，對(duì)于闡明蛋白質(zhì)的折疊、定位及跨膜運(yùn)輸機(jī)理有重要意義。
騰沖嗜熱厭氧菌(Thermoanaerobacter tangcongensis)，是生活在我國云南省騰沖縣的熱泉中的一種微生物，是一種嗜熱的真細(xì)菌(eubacteria)，最適生長(zhǎng)溫度為75攝氏度，厭氧生長(zhǎng)，革蘭氏染色反應(yīng)呈陽性。它由中國科學(xué)院微生物所首先發(fā)現(xiàn)并進(jìn)行了分類學(xué)上的分析。菌種保存在中國微生物保存中心MB4T(Chinese collection of microorganisms AS1.2430T＝JCM 11007T)。該嗜熱厭氧菌是我國特有的一個(gè)物種，其體內(nèi)所具有的耐高溫HSP70分子伴侶也具有自己特有的結(jié)構(gòu)。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的之一是提供一種分離的，編碼具有耐高溫HSP70分子伴侶蛋白活性的多肽的核苷酸序列。
本發(fā)明的目的之二是提供一種分離的，具有耐高溫HSP70分子伴侶蛋白活性多肽。
本發(fā)明的目的還提供了嗜熱厭氧菌的HSP70分子伴侶重組載體、含有重組載體的宿主細(xì)胞，以及生產(chǎn)蛋白的方法。
本發(fā)明一方面提供一種能編碼具有耐高溫HSP70分子伴侶蛋白活性的多肽的核苷酸序列。所說的核苷酸序列編碼具有SEQ ID NO.2中的氨基酸序列的多肽或所述多肽的修飾形式，該修飾形式功能上相當(dāng)或與HSP70分子伴侶蛋白相關(guān)。核苷酸序列具有SEQ ID NO.1的多核苷酸序列以及它的突變形式，突變類型包括缺失、無義、插入、錯(cuò)義。
本發(fā)明另一方面提供了一種耐高溫HSP70分子伴侶蛋白活性的多肽。該多肽具有SEQ IDNo.2中的氨基酸序列的多肽、或其保守性變異多肽、或其活性片段、或其活性衍生物。
生產(chǎn)耐高溫HSP70分子伴侶蛋白的方法為1)分離出編碼HSP70分子伴侶蛋白的核苷酸序列SEQ ID NO.1；2)構(gòu)建含SEQ ID NO.1核苷酸序列的表達(dá)載體；3)將步驟2)中表達(dá)載體轉(zhuǎn)入宿主細(xì)胞，形成能生產(chǎn)HSP70分子伴侶蛋白的重組細(xì)胞；4)培養(yǎng)步驟3)中的重組細(xì)胞；5)分離、純化得到HSP70分子伴侶蛋白。
本發(fā)明涉及嗜熱厭氧菌的HSP70分子伴侶基因的分離及表達(dá)。以騰沖嗜熱厭氧菌全基因組測(cè)序與分析為基礎(chǔ)，克隆分離了耐高溫HSP70分子伴侶基因。該基因?qū)τ谥苽溆糜谏a(chǎn)耐高溫HSP70分子伴侶的轉(zhuǎn)基因微生物或動(dòng)植物，并回收獲得該基因編碼的酶有用。另外，本發(fā)明還提供了具有耐高溫HSP70分子伴侶活性的多肽的氨基酸序列及功能等同體。同時(shí)，本發(fā)明還提供了制備，分離，純化具有耐高溫HSP70分子伴侶活性的多肽的方法。


圖1是測(cè)序文庫構(gòu)建步驟流程圖；圖2是測(cè)序與數(shù)據(jù)分析流程圖；圖3是正反向測(cè)序結(jié)果分析示意圖；圖4部分Cosmid末端測(cè)序結(jié)果示意圖；具體實(shí)施方式
首先，本發(fā)明提供了分離的，編碼HSP70分子伴侶活性的多肽的多聚核苷酸分子，該核苷酸分子是通過對(duì)騰沖嗜熱厭氧菌全基因組測(cè)序與分析而獲得的，具有SEQ.ID NO.1的核苷酸序列，它編碼具有342氨基酸閱讀框的多肽，推測(cè)分子量為36906道爾頓。
本發(fā)明還涉及一種重組載體，該載體包含本發(fā)明的分離的核苷酸分子，以及包含有重組載體的宿主細(xì)胞。同時(shí)，本發(fā)明包括構(gòu)建該重組載體和宿主細(xì)胞的方法，以及用重組工程技術(shù)生產(chǎn)HSP70分子伴侶的方法。
本發(fā)明進(jìn)一步地提供了一種分離的HSP70分子伴侶或多肽，其特征在于具有SEQ.ID NO.2氨基酸序列，或至少70％相似，更佳地，至少具有90％，95％，99％的相同。
在本發(fā)明中，“分離的”DNA是指該DNA或片斷已從天然狀態(tài)下位于其兩側(cè)的序列中分離出來，還指該DNA或片斷已經(jīng)與天然狀態(tài)下伴隨核酸的組份分開，而且已經(jīng)與在細(xì)胞中伴隨其的蛋白質(zhì)分開。
在本發(fā)明中，“HSP70分子伴侶基因”指編碼具有HSP70分子伴侶活性的多肽的核苷酸序列，如SEQ.ID NO.1的核苷酸序列及其簡(jiǎn)并序列。該簡(jiǎn)并序列是指該序列中有一個(gè)或多個(gè)密碼子被編碼相同氨基酸的簡(jiǎn)并密碼子所取代后而產(chǎn)生的序列。由于公知的密碼子的簡(jiǎn)并性，所以與SEQ ID NO.1核苷酸序列同源性低至約70％的簡(jiǎn)并序列也能編碼出SEQ ID NO.2所述的氨基酸序列。該術(shù)語還包括能在中度嚴(yán)謹(jǐn)條件下，更佳地在高度嚴(yán)謹(jǐn)條件下與SEQ ID NO.1的核苷酸序列雜交的核苷酸序列。該術(shù)語還包括與SEQ ID NO.1核苷酸序列同源性至少70％，較佳地至少80％，更佳地至少90％，最佳地至少95％的核苷酸序列。
在本發(fā)明中，“分離的”蛋白的多肽是指其至少占樣品總物質(zhì)的至少20％，較佳地至少50％，更佳地至少80％，最佳地至少90％(按干重或濕重計(jì))。純度可以用任何合適的方法進(jìn)行測(cè)量，如用柱層析，PAGE或HPLC法測(cè)量多肽的純度。分離的多肽基本上不含天然狀態(tài)下的伴隨其的組份。
在本發(fā)明中，“HSP70分子伴侶蛋白”指具有HSP70分子伴侶活性的SEQ ID NO.2序列的多肽。該術(shù)語還包括SEQ ID NO.2序列的變異體，這些變異體具有與天然HSP70分子伴侶相同的功能。這些變異體包括(但不限于)若干個(gè)氨基酸的缺失，插入和/或取代，以及在C末段和/或N末端添加一個(gè)或數(shù)個(gè)氨基酸，也可以是不影響序列的修飾形式上的差異。例如，為本領(lǐng)域所公知的，用性能相近或相似的氨基酸進(jìn)行取代時(shí)，通常不會(huì)改變蛋白質(zhì)的功能。又比如，在C末段和/或N末端添加一個(gè)或數(shù)個(gè)氨基酸通常也不會(huì)改變蛋白質(zhì)的功能。該術(shù)語還包括HSP70分子伴侶的活性片斷和活性衍生物。
在本發(fā)明中，可選用本領(lǐng)域已知的各種載體，如市售的各種質(zhì)粒，粘粒，噬菌體及反轉(zhuǎn)錄病毒等。在生產(chǎn)本發(fā)明的HSP70分子伴侶時(shí)，可以將HSP70分子伴侶基因序列可操作低連于表達(dá)調(diào)控序列，從而形成HSP70分子伴侶表達(dá)載體。表達(dá)載體含有復(fù)制起始點(diǎn)和表達(dá)調(diào)控序列，啟動(dòng)子，增強(qiáng)子和必要的加工信息位點(diǎn)。表達(dá)載體還必須含有可供選擇的標(biāo)記基因，如a)提供對(duì)抗生素或其它毒性物質(zhì)(氨芐青霉素，卡那霉素，氨甲蝶呤等)的抗性的蛋白質(zhì)或b)互補(bǔ)營(yíng)養(yǎng)缺陷型蛋白質(zhì)或c)提供復(fù)合培養(yǎng)基中沒有的必需營(yíng)養(yǎng)成分的蛋白質(zhì)。各種不同宿主的合適標(biāo)記基因是本領(lǐng)域中所熟知或生產(chǎn)廠商說明書著名的。這些表達(dá)載體可以用本領(lǐng)域技術(shù)人員公知的重組DNA技術(shù)制備，如可參考Sambrook等人，1989或Ausubel等人，1992。
重組表達(dá)載體可以用本領(lǐng)域熟知的方法引入宿主細(xì)胞，這些方法包括電轉(zhuǎn)化法，氯化鈣法，基因槍法等。將外源重組載體導(dǎo)入宿主細(xì)胞的過程稱為“轉(zhuǎn)化”。通過培養(yǎng)宿主細(xì)胞，誘導(dǎo)所需蛋白的表達(dá)，并通過本領(lǐng)域所熟知的蛋白分離技術(shù)，如柱層析等得到所需的蛋白質(zhì)。也可采用固相技術(shù)等人工合成該蛋白質(zhì)。
在本發(fā)明中，術(shù)語“宿主細(xì)胞”包括原核細(xì)胞和真核細(xì)胞。常用的原核細(xì)胞如大腸桿菌，枯草桿菌等。常用的真核細(xì)胞如酵母細(xì)胞，或各種動(dòng)植物細(xì)胞。
本發(fā)明的HSP70分子伴侶基因全長(zhǎng)序列或其片斷通常可以用PCR擴(kuò)增法，重組法，或人工合成的方法獲得。對(duì)于PCR擴(kuò)增法，可根據(jù)本發(fā)明所公開的有關(guān)核苷酸序列來設(shè)計(jì)引物，用本領(lǐng)域技術(shù)人員已知的常規(guī)方法制備的嗜熱厭氧菌全基因組DNA為模板，擴(kuò)增而得到有關(guān)序列。一旦獲得了有關(guān)序列，就可以將其克隆入有關(guān)載體，再轉(zhuǎn)入宿主細(xì)胞，然后通過常規(guī)方法從增殖后的宿主細(xì)胞中分離得到大批量的有關(guān)序列。
下面結(jié)合具體實(shí)施例，進(jìn)一步闡述本發(fā)明。應(yīng)理解，這些實(shí)施例僅用于說明本發(fā)明而不用于限制本發(fā)明的范圍。下列實(shí)施例中未注明具體條件的實(shí)驗(yàn)方法，通常按照常規(guī)條件，例如Sambrook等人，分子克隆實(shí)驗(yàn)室手冊(cè)(New YorkCold Spring Harbor LaboratoryPress，1989)中所述的條件，或按照制造廠商所建議的條件。
實(shí)施例1構(gòu)建測(cè)序文庫測(cè)序文庫的構(gòu)建采用全基因組霰彈法(shotgun)進(jìn)行。首先培養(yǎng)騰沖嗜熱厭氧菌，培養(yǎng)方法按(Yanfen Xue，2000)改進(jìn)的MB培養(yǎng)基(Balch et al.，1979)，按Marmur(1961)方法收集細(xì)菌，提取總DNA。為了保證測(cè)序文庫構(gòu)建的隨機(jī)性，最大程度地避免產(chǎn)生斷裂熱點(diǎn)的問題，采用多種方法、不同條件的建庫原則。。先采用物理剪切方法(包括超聲波法及用Hydroshear Machine進(jìn)行剪切)，其次根據(jù)該菌基因組特征選用AluI進(jìn)行隨機(jī)部分酶切。物理剪切時(shí)采用不同強(qiáng)度處理樣品，酶切時(shí)通過設(shè)置酶量梯度處理樣品。處理后的樣品經(jīng)平末端處理后，采用電泳分部收集1.5-4kb DNA片段，與去磷酸化的經(jīng)SmaI酶切的pUC18進(jìn)行連接，連接產(chǎn)物通過電轉(zhuǎn)化E.coli DH5α構(gòu)建了隨機(jī)測(cè)序的文庫。同時(shí)，為了便于以后長(zhǎng)片斷(contig)的搭接還構(gòu)建了長(zhǎng)插入片段(10kb左右)的測(cè)序文庫(將基因組DNA以Sau3AI隨機(jī)部分酶切，電泳收集10kb左右的片段，與去磷酸化的經(jīng)BamHI酶切的pUC18進(jìn)行連接、構(gòu)建文庫)。該文庫經(jīng)兩個(gè)末端的測(cè)序在完成圖(finishing)的過程中可以得到contig之間的關(guān)系，并可以解決較大的gap對(duì)補(bǔ)洞造成的困難。建庫流程如(見圖1)。
實(shí)施例2基因組測(cè)序在完成騰沖嗜熱厭氧菌基因組的測(cè)序時(shí)，主要使用了兩種全自動(dòng)測(cè)序儀ABI377和MegaBACE 1000。這兩種測(cè)序儀都是利用電泳原理進(jìn)行測(cè)序(見圖2)，每次可完成96個(gè)樣品。ABI377是PE公司的產(chǎn)品，是ABI系列的一種。它屬于平板凝膠電泳測(cè)序儀。MegaBACE 1000是法瑪西亞公司的產(chǎn)品，屬于毛細(xì)管凝膠電泳測(cè)序儀。
實(shí)施例3Basecalling和測(cè)序質(zhì)量監(jiān)控所謂Basecalling是指從測(cè)序儀上得到的原始數(shù)據(jù)文件中得到正確的堿基序列的過程。由于測(cè)序儀上得到的是A，T，G，C四種堿基對(duì)應(yīng)的不同波長(zhǎng)的光的強(qiáng)度變化軌跡(trace)，需要用計(jì)算機(jī)采取一定的算法從中正確識(shí)別出不同的軌跡對(duì)應(yīng)的堿基。我們使用的是Phred軟件(Ewing B，Hillier L，1998)，原因是其結(jié)果更可靠，并且其結(jié)果輸出更便于同一軟件包中的其他程序進(jìn)行進(jìn)一步的分析。
Phred進(jìn)行Basecalling的算法原理，是根據(jù)軌跡中各個(gè)峰的形狀，間距，以及信噪比等因素，判斷堿基類型，同時(shí)對(duì)這個(gè)堿基給出可信度信息，即堿基的測(cè)序質(zhì)量。在大規(guī)模測(cè)序中，測(cè)序質(zhì)量的監(jiān)控是十分重要的，它直接影響對(duì)測(cè)序的決策，包括文庫的構(gòu)建，覆蓋率的大小。同時(shí)對(duì)測(cè)序?qū)嶒?yàn)中可能出現(xiàn)的失誤能及時(shí)反饋。
實(shí)施例4序列拼接甲所謂序列拼接，就是把全基因組霰彈法，又稱鳥槍法隨機(jī)測(cè)序得到的樣品序列組裝成連續(xù)的長(zhǎng)片斷(contig)，主要利用它們之間的重疊序列作參考。考慮到測(cè)序中存在載體的影響，需要先對(duì)樣品序列進(jìn)行去載體處理。這里所用的軟件cross_match和后面拼接所用的軟件Phrap都是美國Washington大學(xué)的軟件(Gordon D，Abajian C，1998)，其基本原理為Swith-Waterman算法(Waterman MS，1990)。這是一種動(dòng)態(tài)算法，在考慮了兩兩序列之間的比較之后，可以得到一組序列的公有序列(consensus sequence)。去除載體后的樣品序列再用Phrap進(jìn)行拼接。在拼接時(shí)，堿基的測(cè)序質(zhì)量也被考慮了，所得到的公有序列各堿基的可信度，由組成該公有序列的樣品的測(cè)序質(zhì)量計(jì)算得到。
實(shí)施例5基因注釋在大體得到基因組的大部分序列(完成工作框架圖)后，就需要對(duì)基因組進(jìn)行注釋，包括進(jìn)行開讀框架(Open Reading Frame，ORF)的預(yù)測(cè)，基因功能的預(yù)測(cè)，以及特殊RNA片斷的分析等。
第一步采用缺省參數(shù)的GLIMMER2.0(Delcher，A.L.，Harmon，D.1999)和ORPHEUS(Frishman，D.1998)軟件預(yù)測(cè)基因編碼序列，然后所有預(yù)測(cè)的開讀框和非編碼區(qū)(intergenicregion)都用BLAST軟件(Altschul，S.F.et al.1997)與NCBI的無冗余蛋白數(shù)據(jù)庫(non-redundant protein database)比較來發(fā)現(xiàn)可能漏掉的基因。在判斷一個(gè)基因的起始點(diǎn)時(shí)，將參考各種相關(guān)信息，如序列同源性，核糖體結(jié)合位點(diǎn)，可能的信號(hào)肽序列和啟動(dòng)子序列等。如果在一個(gè)開讀框內(nèi)出現(xiàn)多個(gè)啟動(dòng)子時(shí)，一般采用第一個(gè)啟動(dòng)子作為基因的起始點(diǎn)。采用TransTerm軟件(Ermolaeva，M.D.2000)在非編碼區(qū)預(yù)測(cè)不依賴于Rho(ρ)因子的轉(zhuǎn)錄終止子。如果該終止子位于一個(gè)基因的下游區(qū)的太遠(yuǎn)處，則可能暗示一個(gè)小基因的丟失或測(cè)序錯(cuò)誤人為地縮短了該基因，可作為進(jìn)一步分析的參考。在確定移框突變和點(diǎn)突變時(shí)，主要根據(jù)與數(shù)據(jù)庫中的蛋白質(zhì)的相似性來判斷。如果出現(xiàn)一個(gè)蛋白質(zhì)對(duì)應(yīng)于兩個(gè)彼此相鄰的編碼序列的情況，則被認(rèn)為是一個(gè)無活性基因(假基因pseudogenes)，因?yàn)檫@說明這兩個(gè)編碼序列之間由于突變而產(chǎn)生異常中止現(xiàn)象，進(jìn)而使基因失去活性。所有分析結(jié)果再用Artemissequence viewer軟件(Rutherford，K.et al.2000)進(jìn)行手工分析。一些明顯與其它編碼序列有重疊的開讀框，長(zhǎng)度小于150堿基對(duì)并且在已有數(shù)據(jù)庫中沒有同源性和其中沒有明顯的啟動(dòng)子或終止區(qū)域的開讀框?qū)⒈蝗コ?br> 蛋白質(zhì)的功能片斷(motif)和功能區(qū)域(domain)分別采用與Pfam、PRINTS、PROSITE、ProDom和SMART數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì)分析，結(jié)果再用InterPro數(shù)據(jù)庫(Apweiler，R.et al.2001)進(jìn)行匯總分析。根據(jù)NCBI的COGs數(shù)據(jù)庫(Tatusov，R.L.et al.2001)并且參照其他數(shù)據(jù)庫的查詢結(jié)果來確定蛋白質(zhì)在COGs分類中的功能分類和可能的代謝途徑。用TMHMM軟件(Krogh，A.et al.2001)來確認(rèn)膜蛋白、ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白和跨膜功能域。采用革蘭氏陰性菌為參數(shù)，用SIGNALP2.0軟件(Nielsen，H.et al.1999)分析信號(hào)肽區(qū)域。(4)補(bǔ)洞在完成基因組的工作框架圖之后，就要進(jìn)行更加困難的補(bǔ)洞工作，即完成整個(gè)基因組100％的測(cè)序，得到一個(gè)環(huán)形基因組。主要工作就是把前面得到的contig連接起來。這是一項(xiàng)十分具體而又繁雜的工作。主要方法包括
A.利用測(cè)序中的正反向測(cè)序樣品信息在測(cè)序過程中，我們有意對(duì)某些樣品進(jìn)行了雙向測(cè)序，即同時(shí)測(cè)序某個(gè)插入片斷的兩端，再將所得序列與其他序列一起進(jìn)行拼接。由于這一對(duì)序列在基因組上的關(guān)系一定，其之間的距離大致已知，根據(jù)這一信息，一可以確認(rèn)某段contig是否可靠，二是當(dāng)這一對(duì)序列分別位于不同的contig上時(shí)，可以確定這兩個(gè)contig的方向關(guān)系和位置關(guān)系，為進(jìn)一步設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)提供參考(見圖3)。
B.長(zhǎng)插入片斷及Cosmid末端測(cè)序基于同樣的原理，我們可以構(gòu)建不同長(zhǎng)度的插入片斷文庫，只對(duì)其兩端測(cè)序，然后拼接，分析其具體位置。這些文庫包括長(zhǎng)度為9-12Kb的長(zhǎng)插入片斷庫和20-40Kb左右的Cosmid文庫。具體分析方法同上所述。圖4所示為部分Cosmid末端測(cè)序結(jié)果。
C.PCR和末端延伸Walking實(shí)驗(yàn)根據(jù)A和B所提供的contig方向和位置關(guān)系，進(jìn)一步的生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)就可以進(jìn)行了。如設(shè)計(jì)一對(duì)引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增，或以某一contig末端序列合成引物進(jìn)行末端延伸(Walking)來補(bǔ)洞等。
實(shí)施例6HSP70分子伴侶的制備和提純根據(jù)實(shí)施例中基因注釋得到的HSP70分子伴侶全長(zhǎng)編碼序列(SEQ ID NO.1)，設(shè)計(jì)能擴(kuò)增出完整編碼閱讀框的引物，并在正反引物上分別引入限制性內(nèi)切酶位點(diǎn)，以便構(gòu)建表達(dá)載體。以實(shí)施例1中獲得的測(cè)序文庫的質(zhì)粒DNA為模板，經(jīng)PCR擴(kuò)增后，在保證閱讀框正確的前提下重組至pGEX-2T載體(Pharmacia，Piscataway，NJ)。再將重組載體轉(zhuǎn)化入大腸桿菌DH5α中(轉(zhuǎn)化方法為CaCL2法或電轉(zhuǎn)化法)。篩選鑒定的到含有表達(dá)載體的工程菌DH5α-pGEX-2T-MreB。
挑取單菌落的工程菌DH5α-pGEX-2t-MreB于3ml含100μg/ml氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中振搖培養(yǎng)37℃過夜，按1∶100的濃度吸取培養(yǎng)液于新的LB培養(yǎng)基(含100μg/ml氨芐青霉素)中培養(yǎng)約3小時(shí)，至OD600達(dá)0.5后，加入IPTG至終濃度1mmol/L，繼續(xù)于37℃分別培養(yǎng)0，1，2，3小時(shí)。取培養(yǎng)時(shí)間不同的1ml菌液離心，在細(xì)菌沉淀物中加入裂解液(2×SDS上樣緩沖液50μl，蒸餾水45μl，二巰基乙醇5μl)，混懸細(xì)菌沉淀，沸水浴中煮5分鐘，10000rpm離心1分鐘，上清加入12％SDS-PAGE膠中電泳。染色后觀察預(yù)期分子量大小的蛋白量隨IPTG誘導(dǎo)時(shí)間增加而增加的菌株即為表達(dá)所需蛋白的工程菌。
按上述方法誘導(dǎo)表達(dá)所需蛋白的工程菌后，將細(xì)菌離心沉淀，按每400ml菌加入20ml PBS飽和的50％谷胱苷肽Sepharose 4B，37℃振搖結(jié)合30分鐘，10000rpm離心10分鐘沉淀結(jié)合了所需蛋白的谷胱苷肽Sepharose 4B，棄上清。按每毫升超聲液所得沉淀加入100μl還原型谷胱苷肽洗脫液，室溫置10分鐘，上清即為洗脫的蛋白。重復(fù)洗脫兩次。洗脫的上清保存于-80℃，并進(jìn)行SDS-PAGE電泳，檢測(cè)純化效果。在36906道爾頓處的蛋白質(zhì)條帶即為HSP70分子伴侶。
序列表1.SEQ ID NO.1(1)序列特征a.長(zhǎng)度1029堿基對(duì)b.類型DNA/RNAc.鏈型雙鏈d.幾何結(jié)構(gòu)線性(2)分子類型核苷酸(3)序列描述atgtttgcgatttcaagagacattggaattgaccttggtacggcatctgtcctggtctacgtgcggggagaggggatcgtattaaacgagccatcagttgtcgcaatagacagaaacaccaacaaaatcctggcagtaggtgaggaagcccagagaatggtaggccggactccgggaaatattctggctattaagcctttgagagcaggagtcatttctgattatgacatcactgaaaaaatgctcaggtattttataaacaaagcttgtggaagtaggttcttgataagacctaggataatgatatgtatacctagtggagtgacacaggttgaaaaaagagccgtgatagatgctgcactgcaggcaggagccagaaaagcctacttaatagaagagcctatcgcagccgcaattggagcggggcttgatatttctcagcccagtgggaacatgatagtggacattggagggggtaccaccgacatcgctgtaatttctctgggaagtgcagtagtgtctaaaaacatcaaagtagcaggcgataactttgacgaggctattataaggtacatgaggaaaaagtaccacataataataggggagaggatggcagaagagataaagataaacataggtacagcatattttgacggaaaagaagaaaaaatggtagtaaagggaaggagcttgttatcaggccttccacagaatgtagaagttacttccagtgaaatttgtgaagctttgcaagagcccctcgagcagattgtagaagctgtccacagcgtgctggaaaggacgcctccagagcttgcagcagacataagcgataaagggatggtgttgacaggaggaggggctttgctaaaagggatggacaggctgttaagagaaagaatgcagatacctgtgtaccttgcaaatgaccctataagttgcgtggcattgggagcagggaaggcattagaatctttggaacttcttgaaaaatcggaaactgtgatagacattcataagataaggtga2.SEQ ID NO.2(1)序列特征a.長(zhǎng)度342氨基酸b.類型多肽c.鏈型單鏈d.幾何結(jié)構(gòu)立體(2)分子類型蛋白質(zhì)(3)序列描述MFAISRDIGIDLGTASVLVYVRGEGIVLNEPSVVAIDRNTNKILAVGEEAQRMVGRTPGNILAIKPLRAGVISDYDITEKMLRYFINKACGSRFLIRPRIMICIPSGVTQVEKRAVIDAALQAGARKAYLIEEPIAAAIGAGLDISQPSGNMIVDIGGGTTDIAVISLGSAVVSKNIKVAGDNFDEAIIRYMRKKYHIIIGERMAEEIKINIGTAYFDGKEEKMVVKGRSLLSGLPQNVEVTSSEICEALQEPLEQIVEAVHSVLERTPPELAADISDKGMVLTGGGALLKGMDRLLRERMQIPVYLANDPISCVALGAGKALESLELLEKSETVIDIHKIR
權(quán)利要求
1.一種分離的DNA分子，其特征在于它是編碼具有耐高溫HSP70分子伴侶蛋白活性的多肽的核苷酸序列。
2.如權(quán)利要求1所述的DNA分子，其特征在于所說的核苷酸序列編碼具有SEQ.ID NO.2中的氨基酸序列的多肽或所述多肽的修飾形式，該修飾形式功能上相當(dāng)或與耐高溫HSP70分子伴侶蛋白相關(guān)。
3.如權(quán)利要求1所述的DNA分子，其特征在于所說的核苷酸序列具有SEQID NO.1的多核苷酸序列以及它的突變形式，突變類型包括缺失、無義、插入、錯(cuò)義。
4.一種分離出的多肽，其特征在于它具有耐高溫HSP70分子伴侶活性。
5.如權(quán)利要求4所述的多肽，其特征在于它具有SEQ ID No.2中的氨基酸序列的多肽、或其保守性變異多肽、或其活性片段、或其活性衍生物。
6.一種載體，其特征在于它含有權(quán)利要求1中之DNA。
7.一種宿主細(xì)胞，其特征在于它是用權(quán)利要求6所述載體轉(zhuǎn)化的原核細(xì)胞或真核細(xì)胞。
8.一種制備耐高溫HSP70分子伴侶蛋白的方法，其特征在于該方法包括1)分離出編碼耐高溫HSP70分子伴侶基因的核苷酸序列SEQ ID NO.1；2)構(gòu)建含SEQ ID NO.1核苷酸序列的表達(dá)載體；3)將步驟2)中表達(dá)載體轉(zhuǎn)入宿主細(xì)胞，形成能生產(chǎn)耐高溫HSP70分子伴侶蛋白的重組細(xì)胞；4)培養(yǎng)步驟3)中的重組細(xì)胞；5)分離、純化得到耐高溫HSP70分子伴侶蛋白。
全文摘要
本發(fā)明涉及編碼具有活性或其功能等同變異體的分離的DNA和利用重組DNA技術(shù)以所述分離的DNA生產(chǎn)具有耐高溫HSP70分子伴侶活性的多肽或其功能等同變異體。以騰沖嗜熱厭氧菌全基因組測(cè)序與分析為基礎(chǔ)，克隆分離了耐高溫HSP70分子伴侶基因。該基因?qū)τ谥苽溆糜谏a(chǎn)耐高溫HSP70分子伴侶的轉(zhuǎn)基因微生物或動(dòng)植物，并回收獲得該基因編碼的酶有用。另外，本發(fā)明還提供了具有耐高溫HSP70分子伴侶活性的多肽的氨基酸序列及功能等同體。同時(shí)，本發(fā)明還提供了制備，分離，純化具有耐高溫HSP70分子伴侶活性的多肽的方法。
文檔編號(hào)C12N15/63GK1418954SQ01134780
公開日2003年5月21日 申請(qǐng)日期2001年11月12日 優(yōu)先權(quán)日2001年11月12日
發(fā)明者于軍, 李蔚, 李 杰, 胡松年, 田宇清 申請(qǐng)人:杭州華大基因研發(fā)中心