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測定葡萄中15N或13C標(biāo)記氨基酸及代謝物同位素豐度的方法與流程

文檔序號:11727549閱讀:645來源:國知局

本發(fā)明涉及化合物同位素豐度的檢測方法,尤其是涉及一種測定葡萄中穩(wěn)定同位素標(biāo)記15n或13c氨基酸及其代謝物同位素豐度的方法。



背景技術(shù):

葡萄中的氨基酸具有抗氧化、抗菌、表面活性和乳化的作用,同時也是葡萄酒釀造所需的重要氮源,其組成和含量受葡萄品種、產(chǎn)地、年份、氣候和肥料使用等因素影響,在某種程度上決定了葡萄酒的特征。其中,氨基酸通過生物代謝轉(zhuǎn)化為高級醇、酯類、醛類和酮酸等芳香性成分。有研究表明,通過外加氨基酸的方法可以提高葡萄酒芳香物質(zhì)的含量,從而加快葡萄酒發(fā)酵速度,提高葡萄酒的品質(zhì)。此外,某些氨基酸如精氨酸、瓜氨酸等在葡萄酒發(fā)酵過程中會產(chǎn)生氨基甲酸乙酯(ec),ec為發(fā)酵酒中廣泛存在的“2a”類致癌物,通過葡萄中氨基酸代謝途徑的研究,可為葡萄品質(zhì)改善和葡萄酒加工特性研究提供依據(jù)。因此,監(jiān)測葡萄中相關(guān)氨基酸及其代謝產(chǎn)物的變化有著重要的應(yīng)用價值。

穩(wěn)定同位素示蹤技術(shù)是利用穩(wěn)定同位素標(biāo)記的化合物作為示蹤劑,研究物質(zhì)轉(zhuǎn)化或變化規(guī)律的方法。由于標(biāo)記化合物與其相應(yīng)的非標(biāo)記化合物(被追蹤物質(zhì))具有相同的化學(xué)和生物學(xué)性質(zhì),在生物機體內(nèi)所發(fā)生的化學(xué)變化和生物過程也完全相同。將二者混合后,通過同位素豐度或比值的變化測出同種非標(biāo)記化合物含量,從而反映被追蹤物質(zhì)在有機體內(nèi)的生物利用率及代謝規(guī)律。同位素標(biāo)記方法被認(rèn)為是繼顯微鏡發(fā)明以來,生物學(xué)和醫(yī)學(xué)科學(xué)歷史上最大的成就之一。穩(wěn)定同位素標(biāo)記的氨基酸是普通氨基酸中的一種或幾種元素被穩(wěn)定同位素所取代(如13c、15n或2h),從而具有示蹤性。將穩(wěn)定標(biāo)記氨基酸引入生物體內(nèi),通過測定代謝過程中氨基酸及其代謝產(chǎn)物的穩(wěn)定同位素豐度變化,能夠揭開生物體或細(xì)胞內(nèi)代謝的理化過程,了解生物體的新陳代謝規(guī)律,代謝路徑如下所示。

其中,在代謝過程中穩(wěn)定同位素氨基酸及其代謝產(chǎn)物同位素豐度的準(zhǔn)確測定是該技術(shù)的關(guān)鍵,直接影響到了代謝規(guī)律的準(zhǔn)確表達(dá)?,F(xiàn)有方法通常是使用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用或氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù),通過質(zhì)譜圖中不同質(zhì)量數(shù)峰強的差異定性地反應(yīng)標(biāo)記氨基酸的豐度變化情況,然而并未對同位素豐度量化。目前,國內(nèi)研究人員對植物中氨基酸的研究大多集中在含量測定方面,對引入的穩(wěn)定同位素標(biāo)記氨基酸,以及氨基酸代謝相關(guān)產(chǎn)物的同位素豐度檢測方法鮮有研究。傳統(tǒng)的氣體同位素質(zhì)譜法適合單一化合物的同位素豐度測定,無法得到復(fù)雜基質(zhì)中多種待測組分的同位素豐度。



技術(shù)實現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的就是為了克服上述現(xiàn)有技術(shù)存在的缺陷而提供一種測定葡萄中穩(wěn)定同位素標(biāo)記15n或13c氨基酸及其代謝物同位素豐度的方法,通過氣相色譜將葡萄樣品中多個氨基酸及代謝物組分依次分離,進(jìn)而通過質(zhì)譜圖中質(zhì)譜峰簇的分布,準(zhǔn)確地對每種組分的同位素豐度進(jìn)行表征。

本發(fā)明的目的可以通過以下技術(shù)方案來實現(xiàn):

測定葡萄中15n或13c標(biāo)記氨基酸及代謝物同位素豐度的方法,采用以下步驟:

(1)氨基酸及氨基酰胺類樣品前處理

(1-1)將葡萄或葡萄皮破碎、研磨并勻漿后加入到酸溶液中,超聲提取10min~45min,以5000~10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮,經(jīng)spe處理后的溶液經(jīng)氮吹儀吹干,之后加入衍生化試劑,充分混合后在40℃~80℃下反應(yīng)2小時,過濾待用;

(1-2)使用相同的前處理和衍生化步驟,對氨基酸及氨基酰胺的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(2)吡嗪類樣品前處理

(2-1)將葡萄或葡萄皮破碎、研磨并勻漿,然后以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮;首先使用甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化,再經(jīng)去離子水淋洗后用甲醇洗脫,過濾待用;

(2-2)使用相同的步驟對吡嗪類化合物的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(3)檢測

利用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀分別對經(jīng)過前處理的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品和葡萄樣品溶液進(jìn)行測定,選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值。

步驟(1)中所述的酸溶液為20g/l~100g/l的磺基水楊酸溶液或6mol/l的鹽酸水溶液,葡萄或葡萄皮與酸溶液的比例關(guān)系為0.1g~1g:5ml~20ml。

步驟(1)中所述的固相萃取小柱的填料為混合型陽離子交換(mcx)、強陽離子交換(scx)、弱陽離子交換(wcx)強陰離子交換(sax)或混合型弱陰離子交換(wax)基質(zhì)。

步驟(1)中所述的衍生化試劑為n-甲基-n-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺(mstfa)或雙(三甲基硅烷基)三氟乙酰胺(bstfa),葡萄或葡萄皮與衍生化試劑的比例關(guān)系為0.1g~1g:100μl~1000μl。

步驟(2)中所述的固相萃取小柱的填料為混合型陽離子交換(mcx)、反相(c18或c8)或氨基(nh2)基質(zhì)。

步驟(2)中葡萄或葡萄皮與活化用的甲醇和去離子水的比例關(guān)系為0.1g~1g:1ml~5ml,葡萄或葡萄皮與淋洗用去離子水的比例關(guān)系為0.1g~1g:3ml~10ml,葡萄或葡萄皮與洗脫用甲醇的比例關(guān)系為0.1g~1g:3ml~10ml。

步驟(3)中氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀中:

氣相色譜條件為:色譜柱為hp-5、hp-1或db-1ms毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為0.1ml/min~2.0ml/min;進(jìn)樣量0.1μl~1.0μl,分流比為(5~100):1;進(jìn)樣口溫度為200℃~300℃;柱升溫程序從60℃~80℃以(25~40)℃/min升至200℃~230℃,

質(zhì)譜分析條件為:電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為10~500;離子源溫度為150℃~280℃,四級桿溫度為150℃~300℃,接口溫度為200℃~300℃;電離能量為50ev~100ev。

步驟(3)中選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值具體采用以下步驟:

a)對天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析,將采集的質(zhì)譜圖中特征碎片離子峰峰簇質(zhì)荷比(m/z)為m,m+1和m+2的峰強度數(shù)據(jù)記為am,am+1和am+2,將峰強度值代入式(1)歸一化得到a,b,c,

am:am+1:am+2=a:b:c(1)

a+b+c=1

b)采集樣品質(zhì)譜圖中質(zhì)荷比為m和m+1的峰強度數(shù)據(jù),代入式(2)計算,解得x0和x1;

amixm=x0·a(2)

amixm+1=x0b+x1·a

其中:amixm和amixm+1為質(zhì)荷比為m和m+1的質(zhì)譜峰強度值;x0為天然豐度待測組分分子的摩爾分?jǐn)?shù),x1為標(biāo)記一個穩(wěn)定同位素(13c或15n)的待測組分分子的摩爾分?jǐn)?shù),同位素豐度值以e計,按公式(3)計算:

e=x1/(x0+x1)·100%(3)。

待測組分結(jié)構(gòu)式對應(yīng)的特征碎片離子峰峰簇質(zhì)荷比如下所示:

與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的前處理步驟能夠保證目標(biāo)化合物的同位素豐度在前處理過程中不發(fā)生同位素豐度稀釋效應(yīng),本發(fā)明可以同時測定葡萄樣品中多種氨基酸及其代謝產(chǎn)物的同位素豐度;經(jīng)過氣相色譜進(jìn)入質(zhì)譜分析的是葡萄樣品中目標(biāo)化合物標(biāo)記位點的同位素豐度值,而非混合物的平均豐度。

附圖說明

圖1為亮氨酸、亮氨酰氨、2-甲氧基-3-異丁基吡嗪和2-甲氧基-3-異丙基吡嗪的質(zhì)譜圖。

圖中,a、亮氨酸;b、亮氨酰氨;c、2-甲氧基-3-異丁基吡嗪;d、2-甲氧基-3-異丙基吡嗪。

具體實施方式

下面結(jié)合附圖和具體實施例對本發(fā)明進(jìn)行詳細(xì)說明。以下實施例將有助于本領(lǐng)域的技術(shù)人員進(jìn)一步理解本發(fā)明,但不以任何形式限制本發(fā)明。應(yīng)當(dāng)指出的是,對本領(lǐng)域的普通技術(shù)人員來說,在不脫離本發(fā)明構(gòu)思的前提下,還可以做出若干變形和改進(jìn)。這些都屬于本發(fā)明的保護(hù)范圍。

實施例1

葡萄組織中亮氨酸和亮氨酰氨同位素豐度分析,包括以下步驟:

1)樣品的前處理

取0.1g~1g葡萄樣品破碎、研磨并勻漿后,加入5ml~20ml鹽酸(濃度為6mol/l),超聲提取20min,以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮。首先使用5ml~10ml甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化。以0.5滴/秒的速度上樣,之后用10ml去離子水淋洗,用0.5mol/l的氨水溶液3ml洗脫,待用。

(1)樣品的衍生化

經(jīng)spe處理后的溶液經(jīng)氮吹儀吹干,之后加入100μl衍生化試劑n-甲基-n-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺(mstfa),充分混合后60℃下反應(yīng)兩小時,待用。使用相同的前處理和衍生化步驟,對待測組分的標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理,待用。

(2)檢測條件

樣品經(jīng)前處理后進(jìn)入氣質(zhì)聯(lián)用分析。氣相色譜條件如下:色譜柱為hp-5ms毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為1.0ml/min;進(jìn)樣量0.5μl,分流比為(5~100):1;進(jìn)樣口溫度為250℃;柱升溫程序從60℃~80℃以25℃/min升至230℃~280℃。質(zhì)譜分析條件為電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為50~200;離子源溫度為250℃,四級桿溫度為150℃,接口溫度為280℃;電離能量為70ev。

(4)同位素豐度的計算

亮氨酸及亮氨酰氨經(jīng)衍生化反應(yīng)后成為衍生化產(chǎn)物,根據(jù)各組分的特征碎片離子的峰簇分布進(jìn)行同位素豐度的計算。

a)首先,對天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析。將采集的質(zhì)譜圖中(圖1中a、b)特征離子峰峰簇質(zhì)荷比(m/z)為158,159和160的峰強度數(shù)據(jù)記為a158,a159和a160,從譜圖結(jié)果中得到a158,a159和a160,然后將峰強度值歸一化,

i)亮氨酸a158:a159:a160=a:b:c=100:15.7:4.38=0.833:0.131:0.0365

ii)亮氨酰胺a158:a159:a160=a:b:c=100:15.6:4.68=0.837:0.123:0.0392

b)將前處理完畢的葡萄樣品進(jìn)入質(zhì)譜分析。質(zhì)譜圖中質(zhì)荷比為158和159的峰強度數(shù)據(jù)分別代入下式計算,解得x0和x1。

i)亮氨酸amix158=x0·a=0.833x0=100

amix159=x0b+x1·a=0.131x0+0.833x1=17

ii)亮氨酰胺amix158=x0·a=0.833x0=100

amix159=x0b+x1·a=0.131x0+0.833x1=22.5

其中:amix158和amix159為質(zhì)荷比為158和159的質(zhì)譜峰強度值;x0為天然豐度亮氨酸或亮氨酰氨的摩爾分?jǐn)?shù),x1為標(biāo)記一個穩(wěn)定同位素13c的亮氨酸或亮氨酰氨分子的摩爾分?jǐn)?shù)。同位素豐度值以e計,e=x1/(x0+x1)·100%。質(zhì)譜采集數(shù)據(jù)及計算結(jié)果列于表1。

表1亮氨酸及亮氨酰氨的質(zhì)譜采集數(shù)據(jù)和計算結(jié)果

實施例2

葡萄組織中2-甲氧基-3-異丁基吡嗪同位素豐度分析,包括以下步驟:

(1)取0.1g~1g葡萄樣品破碎、研磨并勻漿后,以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮。首先使用5ml~10ml甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化。以(0.5~3)滴/秒的速度上樣10ml,之后用10ml去離子水淋洗,用甲醇(3~5)ml洗脫,待用。

(2)樣品經(jīng)前處理后進(jìn)入氣質(zhì)聯(lián)用分析。氣相色譜條件如下:色譜柱為hp-5ms毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為1.0ml/min;進(jìn)樣量0.5μl,分流比為(5~100):1;進(jìn)樣口溫度為250℃;柱升溫程序從60℃~80℃以25℃/min升至230℃~280℃。質(zhì)譜分析條件為電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為50~200;離子源溫度為250℃,四級桿溫度為150℃,接口溫度為280℃;電離能量為70ev。

(3)同位素豐度的計算

a)首先,對天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析。將采集的質(zhì)譜圖(圖1中c)中特征離子峰峰簇質(zhì)荷比(m/z)為124,125和126的峰強度數(shù)據(jù)記為a124,a125和a126。將峰強度值代入下式歸一化可得,

a124:a125:a126=a:b:c=100:7.5:0.45=0.93:0.069:0.004

b)采集樣品質(zhì)譜圖中質(zhì)荷比為124和125的峰強度數(shù)據(jù)分別為100和12.1,代下式計算,解得x0和x1。

amix124=x0·a=0.93·x0=100

amix125=x0b+x1·a=0.069·x1+0.93·x1=12.1

其中:amix124和amix125為質(zhì)荷比為124和125的質(zhì)譜峰強度值;x0為天然豐度2-甲氧基-3-異丁基吡嗪的摩爾分?jǐn)?shù),x1為標(biāo)記一個穩(wěn)定同位素13c的2-甲氧基-3-異丁基吡嗪的摩爾分?jǐn)?shù)。解得x0和x1分別為108.0和5.0,同位素豐度值以e計,e=x1/(x0+x1)·100%=4.4%。

實施例3

葡萄組織中2-甲氧基-3-異丙基吡嗪同位素豐度分析,包括以下步驟:

(1)取0.1g~1g葡萄樣品破碎、研磨并勻漿后,以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮。首先使用5ml~10ml甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化。以(0.5~3)滴/秒的速度上樣10ml,之后用10ml去離子水淋洗,用甲醇(3~5)ml洗脫,待用。

(2)樣品經(jīng)前處理后進(jìn)入氣質(zhì)聯(lián)用分析。氣相色譜條件如下:色譜柱為hp-5ms毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為1.0ml/min;進(jìn)樣量0.5μl,分流比為(5~100):1;進(jìn)樣口溫度為250℃;柱升溫程序從60℃~80℃以25℃/min升至230℃~280℃。質(zhì)譜分析條件為電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為50~200;離子源溫度為250℃,四級桿溫度為150℃,接口溫度為280℃;電離能量為70ev。

(3)同位素豐度的計算

a)首先,對天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析。將采集的質(zhì)譜圖(圖1中d)中特征離子峰峰簇質(zhì)荷比(m/z)為137,138和139的峰強度數(shù)據(jù)記為a137,a138和a139。將峰強度值代入下式歸一化可得,

a137:a138:a139=a:b:c=100:8.10:0.51=0.92:0.075:0.005

b)采集樣品質(zhì)譜圖中質(zhì)荷比為137和138的峰強度數(shù)據(jù)分別為100和14.7,代下式計算,解得x0和x1。

amix137=x0·a=0.92·x0=100

amix138=x0b+x1·a=0.075·x1+0.92·x1=14.7

其中:amix137和amix138為質(zhì)荷比為137和138的質(zhì)譜峰強度值;x0為天然豐度2-甲氧基-3-異丙基吡嗪的摩爾分?jǐn)?shù),x1為標(biāo)記一個穩(wěn)定同位素13c的2-甲氧基-3-異丙基吡嗪的摩爾分?jǐn)?shù)。解得x0和x1分別為108.6和7.2,同位素豐度值以e計,e=x1/(x0+x1)·100%=6.2%。

實施例4

測定葡萄中同位素15n或13c標(biāo)記氨基酸及代謝物豐度的方法,采用以下步驟:

(1)氨基酸及氨基酰胺類樣品前處理

(1-1)將葡萄破碎、研磨并勻漿后加入到20g/l的磺基水楊酸溶液中,葡萄與酸溶液的比例關(guān)系為0.1g:5ml,超聲提取10min,以5000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮,固相萃取小柱的填料為混合型陽離子交換(mcx)基質(zhì),經(jīng)spe處理后的溶液經(jīng)氮吹儀吹干,之后加入衍生化試劑n-甲基-n-(三甲基硅烷)三氟乙酰胺(mstfa),葡萄與衍生化試劑的比例關(guān)系為0.1g:1000μl,充分混合后在40℃下反應(yīng)2小時,過濾待用;

(1-2)使用相同的前處理和衍生化步驟,對氨基酸及氨基酰胺的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(2)吡嗪類樣品前處理

(2-1)將葡萄破碎、研磨并勻漿,然后以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮;首先使用甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化,葡萄與活化用的甲醇和去離子水的比例關(guān)系為0.1g:1ml,再經(jīng)去離子水淋洗后用甲醇洗脫,葡萄與淋洗用去離子水的比例關(guān)系為0.1g:3ml,與洗脫用甲醇的比例關(guān)系為0.1g:3ml,過濾待用;

(2-2)使用相同的步驟對吡嗪類化合物的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(3)檢測

利用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀分別對經(jīng)過前處理的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品和葡萄樣品溶液進(jìn)行測定,選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值。氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀中:

氣相色譜條件為:色譜柱為hp-5毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為0.1ml/min;進(jìn)樣量0.1μl,分流比為5:1;進(jìn)樣口溫度為200℃;柱升溫程序從60℃以25℃/min升至200℃,

質(zhì)譜分析條件為:電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為10;離子源溫度為150℃,四級桿溫度為150℃,接口溫度為200℃;電離能量為50ev。

步驟(3)中選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值具體采用以下步驟:

a)對天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分析,將采集的質(zhì)譜圖中特征碎片離子峰峰簇質(zhì)荷比(m/z)為m,m+1和m+2的峰強度數(shù)據(jù)記為am,am+1和am+2,將峰強度值代入式(1)歸一化得到a,b,c,

am:am+1:am+2=a:b:c(1)

a+b+c=1

b)采集樣品質(zhì)譜圖中質(zhì)荷比為m和m+1的峰強度數(shù)據(jù),代入式(2)計算,解得x0和x1;

amixm=x0·a(2)

amixm+1=x0b+x1·a

其中:amixm和amixm+1為質(zhì)荷比為m和m+1的質(zhì)譜峰強度值;x0為天然豐度待測組分分子的摩爾分?jǐn)?shù),x1為標(biāo)記一個穩(wěn)定同位素(13c或15n)的待測組分分子的摩爾分?jǐn)?shù),同位素豐度值以e計,按公式(3)計算:

e=x1/(x0+x1)·100%(3)。

實施例5

測定葡萄中同位素15n或13c標(biāo)記氨基酸及代謝物豐度的方法,采用以下步驟:

(1)氨基酸及氨基酰胺類樣品前處理

(1-1)將葡萄皮破碎、研磨并勻漿后加入到6mol/l的鹽酸水溶液中,葡萄皮與酸溶液的比例關(guān)系為1g:20ml,超聲提取45min,以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮,固相萃取小柱的填料為強陰離子交換(sax)基質(zhì),經(jīng)spe處理后的溶液經(jīng)氮吹儀吹干,之后加入衍生化試劑雙(三甲基硅烷基)三氟乙酰胺(bstfa),葡萄皮與衍生化試劑的比例關(guān)系為1g:100μl,充分混合后在80℃下反應(yīng)2小時,過濾待用;

(1-2)使用相同的前處理和衍生化步驟,對氨基酸及氨基酰胺的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(2)吡嗪類樣品前處理

(2-1)將葡萄皮破碎、研磨并勻漿,然后以10000r/min的速度離心,取上清液經(jīng)固相萃取小柱凈化濃縮,固相萃取小柱的填料為混合型陽離子交換(mcx);首先使用甲醇和去離子水分別對小柱進(jìn)行活化,葡萄皮與活化用的甲醇和去離子水的比例關(guān)系為1g:5ml,再經(jīng)去離子水淋洗后用甲醇洗脫,葡萄皮與淋洗用去離子水的比例關(guān)系為1g:10ml,與洗脫用甲醇的比例關(guān)系為1g:10ml,過濾待用;

(2-2)使用相同的步驟對吡嗪類化合物的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行處理;

(3)檢測

利用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀分別對經(jīng)過前處理的天然豐度標(biāo)準(zhǔn)品和葡萄樣品溶液進(jìn)行測定,選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值。

氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀中,氣相色譜條件為:色譜柱為hp-5、hp-1或db-1ms毛細(xì)管柱;載氣為高純氦,流速為2.0ml/min;進(jìn)樣量1.0μl,分流比為100:1;進(jìn)樣口溫度為300℃;柱升溫程序從80℃以40℃/min升至230℃,

質(zhì)譜分析條件為:電子轟擊離子源(ei);掃描范圍(m/z)為500;離子源溫度為280℃,四級桿溫度為300℃,接口溫度為300℃;電離能量為100ev。

步驟(3)中選擇特征碎片離子進(jìn)行同位素豐度值的計算,利用同位素峰簇的比值計算出標(biāo)記試劑的同位素豐度值的步驟與實施例4相同。

本發(fā)明并不局限于上述特定實施方式,本領(lǐng)域技術(shù)人員可以在權(quán)利要求的范圍內(nèi)做出各種變形或修改,這并不影響本發(fā)明的實質(zhì)內(nèi)容。

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