本發(fā)明屬于基因工程領(lǐng)域,具體涉及桔小實(shí)蠅taiman基因和其可變剪切體檢測(cè)方法及其dsrna。
背景技術(shù):
桔小實(shí)蠅(bactroceradorsalis)作為我國重要的檢疫性害蟲,在水果和蔬菜產(chǎn)業(yè)方面的危害最為嚴(yán)重,也被認(rèn)為是我國國際貿(mào)易中農(nóng)產(chǎn)品出口和國內(nèi)農(nóng)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展中重要的制約因子。桔小實(shí)蠅以其寄主范圍廣、繁殖能力強(qiáng)和世代重疊的特點(diǎn),使防治的難度大大加大。近年來,主要使用化學(xué)防治的方法對(duì)于桔小實(shí)蠅的治理,雖然簡單方便,但長期使用單一藥劑,抗藥性日益上升為亟待解決的問題。
rna干擾(rnainterference,rnai)是近年來發(fā)現(xiàn)的一種重要基因沉默手段,是指在進(jìn)化過程中高度保守的、由雙鏈rna(dsrna,double-strandedrna,雙鏈核糖核酸)誘發(fā)的、同源rna高效特異性降解的現(xiàn)象,是通過dsrna的介導(dǎo)特異性的降解對(duì)應(yīng)序列的mrna。由于使用rnai技術(shù)可以特異性抑制特定基因的表達(dá),所以該技術(shù)已被廣泛用于探索基因功能和基因治療領(lǐng)域。
保幼激素(juvenilehormone,jh)是調(diào)控昆蟲發(fā)育、變態(tài)與生殖最重要的激素之一。在昆蟲幼蟲期,jh阻止由蛻皮激素(ecdysone)引起的變態(tài),從而使幼蟲蛻皮后仍然維持幼蟲形態(tài)。在幼蟲最后一次蛻皮前,jh滴度降低或缺失,導(dǎo)致全變態(tài)昆蟲化蛹和不完全變態(tài)昆蟲羽化為成蟲。保幼激素在全變態(tài)和不全變態(tài)昆蟲生長發(fā)育變態(tài)過程中不可或缺,所以保幼激素信號(hào)通路taiman基因的功能研究有利于我們了解保幼激素作用機(jī)理。由于人類、高等動(dòng)物、植物并不含有保幼激素,故保幼激素信號(hào)通路基因作為害蟲的靶標(biāo)相對(duì)安全,基于該途徑研發(fā)的新型殺蟲劑,應(yīng)用于害蟲的防治具有很大的潛力,但是目前針對(duì)桔小實(shí)蠅保幼激素通路taiman基因的相關(guān)研究較少,也未見針對(duì)桔小實(shí)蠅保幼激素信號(hào)通路taiman基因的dsrna的報(bào)道。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是提供一種桔小實(shí)蠅taiman基因,其核苷酸序列如seqidno:11或12或13或14所示。
在本發(fā)明的第一方面,提供一種如seqidno:11或12或13或14所示的桔小實(shí)蠅taiman基因全長的分段擴(kuò)增引物對(duì),其特征在于,共計(jì)5對(duì)引物,引物bdtais1-f、bdtais1-r、bdtais2-f、bdtais2-r、bdtais3-f、bdtais3-r、bdtais4-f、bdtais4-r、bdtais5-f、bdtais5-r的序列依次如seqidno:1~10所示。
在本發(fā)明的另一方面,提供一種如seqidno:11或12或13或14所示的桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna,為由序列如seqidno:18所示的核苷酸和與其序列互補(bǔ)的核苷酸組成的雙鏈rna。
本發(fā)明還提供了seqidno:18所示的桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna的合成方法,包括如下步驟:提取桔小實(shí)蠅的總rna,反轉(zhuǎn)錄成為cdna作為擴(kuò)增模板,以序列為seqidno:16的上游引物和以序列為seqidno:17的下游引物進(jìn)行pcr擴(kuò)增,pcr擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行電泳后回收產(chǎn)物,以膠回收產(chǎn)物為模板合成得到桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna。
本發(fā)明還提供了一種如seqidno:11或12或13或14所示的桔小實(shí)蠅taiman基因進(jìn)行qrt-pcr檢測(cè)的方法,qpcr中的使用的上下游引物為bdtai-core-f、bdtai-core-r,其序列分別如seqidno:27、28所示。
本發(fā)明還提供了一種針對(duì)seqidno:11所示的桔小實(shí)蠅taiman基因進(jìn)行qrt-pcr檢測(cè)的方法,qpcr中的使用的上下游引物為bdtaia-f、bdtaia-r,其序列分別如seqidno:29、30所示。
還提供了一種針對(duì)seqidno:12所示的桔小實(shí)蠅taiman基因進(jìn)行qrt-pcr檢測(cè)的方法,qpcr中的使用的上下游引物為bdtaib-f、bdtaib-r,其序列分別如seqidno:31、32所示。
還提供了一種針對(duì)seqidno:13所示的桔小實(shí)蠅taiman基因進(jìn)行qrt-pcr檢測(cè)的方法,qpcr中的使用的上下游引物為bdtaic-f、bdtaic-r,其序列分別如seqidno:33、34所示。
還提供了一種針對(duì)seqidno:14所示的桔小實(shí)蠅taiman基因進(jìn)行qrt-pcr檢測(cè)的方法,qpcr中的使用的上下游引物為bdtaid-f、bdtaid-r,其序列分別如seqidno:35、36所示。
本發(fā)明還提供了上述dsrna在桔小實(shí)蠅發(fā)育、變態(tài)與生殖調(diào)節(jié)方面的應(yīng)用,在桔小實(shí)蠅防治上的應(yīng)用,或者在制備桔小實(shí)蠅殺蟲劑方面的應(yīng)用。
本發(fā)明的有益效果是:本發(fā)明運(yùn)用pcr技術(shù)克隆獲得桔小實(shí)蠅保幼激素信號(hào)通路taiman基因的可變剪切體,并根據(jù)可變剪切體的序列得到taiman基因的dsrna,可以應(yīng)用于對(duì)桔小實(shí)蠅進(jìn)行rna干擾從而起到防治桔小實(shí)蠅的效果。通過實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,dsrna基因沉默效率高,基因干擾后桔小實(shí)蠅有明顯表型變化,解決了桔小實(shí)蠅目前沒有有效的保幼激素信號(hào)taiman基因的dsrna的問題,在研發(fā)新型殺蟲劑方面有很好的應(yīng)用前景。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)taiman基因被dsrna干擾后會(huì)縮短桔小實(shí)蠅幼蟲生長發(fā)育進(jìn)程,使幼蟲提前化蛹近24h,除此之外,處理組蛹的體長和體重與對(duì)照組相比有顯著差異。
附圖說明
圖1為擴(kuò)增桔小實(shí)蠅taiman基因得到的5個(gè)可變剪切體進(jìn)行氨基酸序列相似性比對(duì)結(jié)果圖。
圖2為桔小實(shí)蠅的taiman基因的氨基酸系統(tǒng)發(fā)育樹。
圖3為桔小實(shí)蠅注射dsrna后taiman基因或注射sitaiman-e后taiman-e基因的qrt-pcr檢測(cè)結(jié)果,其中a、b為注射dsrna,c、d為注射sitaiman-e。
圖4為桔小實(shí)蠅注射dsrna或sitaiman-e后幼蟲化蛹時(shí)間變化統(tǒng)計(jì)圖,其中,a為注射dsrna,b為注射sitaiman-e。
圖5為桔小實(shí)蠅注射dsrna或sitaiman-e后蛹的表型,其中,a、c、e為注射dsrna后的蛹的表型,b、d、f為注射sitaiman-e后的蛹的表型。
具體實(shí)施方式
以下實(shí)施例用于說明本發(fā)明,但不用來限制本發(fā)明的范圍。
主要試劑及生產(chǎn)者:
primestarmaxpremix、primestarmaxpremix、膠回收純化試劑盒、perfectrealtimertreagent(takara公司,日本)
trizolkit(invitrogen公司,美國)
rneasyplusmicrokit(qiagen公司,德國)
transcriptaidt7highyieldtranscriptionkit、transcriptaidenzymemix、atp/ctp/gtp/utpmix、primescriptrtenzymemixi、oligodtprimer(thermofisherscientific公司,美國)
實(shí)施例一、桔小實(shí)蠅taiman基因可變剪切體序列克隆
按照如下步驟操作:
1)利用rna提取試劑盒rneasyplusmicrokit按照使用說明提取桔小實(shí)蠅的總rna,然后利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒perfectrealtimertreagent按照使用說明將1μg總rna反轉(zhuǎn)錄成為cdna。
2)以上述得到的cdna為模板,根據(jù)ncbi上預(yù)測(cè)的桔小實(shí)蠅taiman基因序列以及該基因保守結(jié)構(gòu)序列,分段設(shè)計(jì)全長擴(kuò)增引物,共設(shè)計(jì)了5對(duì)分段擴(kuò)增引物進(jìn)行全長擴(kuò)增:bdtais1-f/bdtais1-r,bdtais2-f/bdtais2-r,bdtais3-f/bdtais3-r,bdtais4-f/bdtais4-r,bdtais5-f/bdtais5-r。pcr條件為:98℃預(yù)變性3min;98℃變性30s、60℃退火15s、72℃延伸2min,共35個(gè)循環(huán);72℃條件下延伸10min。pcr反應(yīng)體系共25μl,包括:濃度為1000ng/μl的cdna模板1μl,濃度為0.15-0.25μm的前述上、下游引物各1μl,primestarmaxpremix12μl以及去核酸酶水10μl。前述5對(duì)分段擴(kuò)增引物的序列如下:
bdtais1-f:5’-gtgtaatcctgggcagaaacg-3’(如seqidno:1所示),
bdtais1-r:5’-accgctaccacaaccaatgtc-3’(如seqidno:2所示),
bdtais2-f:5’-aataatatgccgtatggagttagcg-3’(如seqidno:3所示),
bdtais2-r:5’-cacttatgctgctactgctgttt-3’(如seqidno:4所示),
bdtais3-f:5’-ccttcgcctcagtcaaataca-3’(如seqidno:5所示),
bdtais3-r:5’-cagtgggagtaggtgctgataca-3’(如seqidno:6所示),
bdtais4-f:5’-gcgttatggactatgtttcagacg-3’(如seqidno:7所示),
bdtais4-r:5’-gttgagacttcgccgctgatt-3’(如seqidno:8所示),
bdtais5-f:5’-cctatgttaagcgcgcagtt-3’(如seqidno:9所示),
bdtais5-r:5’-cgacggccgttagtagtgta-3’(如seqidno:10所示)。
3)將pcr產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠電泳中進(jìn)行分離,分別得到1600bp、1500bp、1300bp、1100bp、750bp左右的條帶,將pcr產(chǎn)物純化,隨后將純化產(chǎn)物進(jìn)行加a反應(yīng),然后將加a后的產(chǎn)物與載體pgem-teasy連接,轉(zhuǎn)化至感受態(tài)大腸桿菌dh5α中。轉(zhuǎn)化后經(jīng)藍(lán)白斑篩選,選出白色菌落轉(zhuǎn)入lb液體培養(yǎng)基中,在37℃恒溫?fù)u床震蕩繁殖(4h),以菌液為模板進(jìn)行pcr擴(kuò)增,將陽性克隆菌液送往上海英駿公司進(jìn)行測(cè)序。
4)將測(cè)序結(jié)果通過手工校對(duì)、序列拼接,發(fā)現(xiàn)bdtais5-f/bdtais5-r的擴(kuò)增產(chǎn)物(750bp的產(chǎn)物)有5個(gè)可變剪切體,將5個(gè)可變剪切體對(duì)應(yīng)的taiman基因分別命名為taiman-a、taiman-b、taiman-c、taiman-d、taiman-e基因,其核苷酸序列分別如序列表中seqidno:11~15所示。
5)用dnaman6.0對(duì)引物bdtais5-f/bdtais5-r擴(kuò)增的片段所獲得的5個(gè)可變剪切體氨基酸序列進(jìn)行相似性比對(duì),比對(duì)結(jié)果如圖1所示:taiman-a、taiman-b、taiman-c、taiman-d的氨基酸序列依次比taiman-e的氨基酸序列缺失249、183、167、75個(gè)氨基酸。
6)構(gòu)建氨基酸系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果如圖2所示:用前述seqidno:11~15所示的序列與雙翅目的果蠅、埃及伊蚊聚到一枝,確定得到的序列為桔小實(shí)蠅taiman基因序列。
實(shí)施例二、桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna
1)根據(jù)克隆獲得的桔小實(shí)蠅taiman基因序列,設(shè)計(jì)擴(kuò)增taiman基因的上、下游引物(含有t7啟動(dòng)子的序列):t7-tai-core-f(如seqidno:16所示)、t7-tai-core-r(如seqidno:17所示),引物序列分別為:
t7-tai-core-f:5’-taatacgactcactataggggctctcaattcgacgacacc-3’;
t7-tai-core-r:5’-taatacgactcactatagggacctgaccgttaagcagtga-3’。
2)利用rna提取試劑盒rneasyplusmicrokit按照使用說明提取桔小實(shí)蠅的總rna,然后利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒perfectrealtimertreagent按照使用說明將1μg總rna反轉(zhuǎn)錄成為cdna,反轉(zhuǎn)錄體系為20μl,其中包括:totalrna1μl(約1μg),5×primescriptbuffer4μl,primescriptrtenzymemixi1μl,oligodtprimer(50μm)1μl,random6mers(100μm)1μl,rnasefreeddh2o12μl。
3)對(duì)步驟2)得到的cdna進(jìn)行pcr擴(kuò)增,反應(yīng)條件為:98℃預(yù)變性3min;98℃變性30s、60℃退火10s、72℃延伸5min,共35個(gè)循環(huán);72℃條件下延伸10min;pcr反應(yīng)體系共25μl,包括:濃度為1000ng/μl的cdna模板0.5μl,濃度為0.15-0.25μm的上、下游引物(t7-tai-core-f、t7-tai-core-r)各1μl,primestarmaxpremix12.5μl以及去核酸酶水10μl。
4)將步驟3)中的pcr產(chǎn)物用膠回收純化試劑盒按照說明書純化回收之后作為合成dsrna的轉(zhuǎn)錄模板,用體外合成dsrna試劑盒transcriptaidt7highyieldtranscriptionkit按照使用說明轉(zhuǎn)錄合成并純化得到桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna溶液,將該dsrna命名為dstaiman-core,為由序列如seqidno:18所示的核苷酸和與其序列互補(bǔ)的核苷酸組成的雙鏈rna,seqidno:18所示序列為:
gcucucaauucgacgacaccuaauaacaacaauagcagcucaacuucuaaaagcaacgauaaucgaaauaauacagcaucuacacguuguuuacgaugugcaacugacaauugcucuauccauccaguacaacaaggugacguuucaucgaccgaacccccauugccggagccaucacugcuuaacggucaggu。
將dsrna溶液濃度稀釋到200-300ng/μl備用。dsrna合成反應(yīng)體系為20μl,其中包括:膠回收片段模板4μl(約1μg)、5×transcrptaidreactionbuffer4μl、濃度為100mm的atp/ctp/gtp/utpmix8μl、transcriptaidenzymemix2μl和depc-treated水2μl;反應(yīng)條件為:37℃孵育6h。
同時(shí)利用上述方法合成并純化得到gfp(綠色熒光蛋白)的dsrna溶液作為陰性對(duì)照,反轉(zhuǎn)錄得到的cdna進(jìn)行pcr擴(kuò)增時(shí)使用的上下游引物序列分別為gfp-ds-t7f(如seqidno:19所示)、gfp-ds-t7r(如seqidno:20所示),序列為:
gfp-ds-t7f:
5’-taatacgactcactatagggcagttcttgttgaattagatg-3’;
gfp-ds-t7r:
5’-taatacgactcactatagggtttggtttgtctcccatgatg-3’。
實(shí)施例三、桔小實(shí)蠅taiman基因的sirna
根據(jù)實(shí)施例一中得到的桔小實(shí)蠅taiman基因的5個(gè)可變剪切體,針對(duì)5個(gè)可變剪切體對(duì)應(yīng)的taiman基因taiman-a、taiman-b、taiman-c、taiman-d、taiman-e基因,相應(yīng)地設(shè)計(jì)5條特異性sirna序列送于廣州瑞博生物有限公司合成,sirna序列如下:
sitaiman-a:5’-guguaucugcacuacuuaaua-3’,如seqidno:21所示;
sitaiman-b:5’-ucuaaugucgguccuggcggu-3’,如seqidno:22所示;
sitaiman-c:5’-aauucuuuucaagguggcggc-3’,如seqidno:23所示;
sitaiman-d:5’-ucaacauuuaccugcagguaa-3’,如seqidno:24所示;
sitaiman-e:5’-guauuguuggcuuugguggca-3’,如seqidno:25所示;
sigfp:5’-gccacaacgucuauaucaugg-3’,如seqidno:26所示。
實(shí)施例四、桔小實(shí)蠅taiman基因的基因沉默驗(yàn)證
一、將桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna/sirna導(dǎo)入桔小實(shí)蠅
將實(shí)施例二、三中的桔小實(shí)蠅taiman基因的dsrna/sirna導(dǎo)入桔小實(shí)蠅:
利用nanojiectiiauto-nanoliter(drummondscientific)顯微注射儀對(duì)桔小實(shí)蠅注射dsrna/sirna,按照如下步驟操作:
1)將玻璃毛細(xì)管(美國drummond)固定于拉針儀(美國sutter)指定位置,參數(shù)設(shè)置為heat=510,pull=60,vel=35,del=30的拉針程序,取下拉制的毛細(xì)管。
2)將拉制后的毛細(xì)管至于磨針儀(美國sutter)指定位置,調(diào)整角度,將毛細(xì)管尖端磨成光滑表面,減少注射時(shí)對(duì)蟲體的傷害。
3)將磨好的毛細(xì)管置于顯微注射儀(美國drummond),操作步驟嚴(yán)格遵循nanojectii/autonanoliterinjector說明書。
4)挑取桔小實(shí)蠅體型大小一致的4日齡幼蟲,置于裝有清水的培養(yǎng)皿中洗去體表飼料殘余,然后用濾紙吸干體表水分。
5)手持4日齡幼蟲,將1μgtaiman基因dsrna/80ngsirna溶液注射至幼蟲腹末倒數(shù)第三節(jié)間,以gfp的dsrna/sirna溶液的處理作為對(duì)照。
6)將注射后的幼蟲放入幼蟲人工飼料內(nèi),置于恒溫箱正常飼養(yǎng)(溫度27.5±1℃,相對(duì)濕度70±5%,無光照)。
每30頭桔小實(shí)蠅為一個(gè)生物重復(fù),設(shè)置3個(gè)taiman基因dsrna/sirna溶液的生物重復(fù)作為實(shí)驗(yàn)組。同時(shí)設(shè)置注射gfp的dsrna/sirna溶液的處理作為對(duì)照組。
二、沉默效率以及表型的檢測(cè):
隨機(jī)選取注射taiman基因的dsrna/sirna后的24h和72h桔小實(shí)蠅幼蟲,以及gfp的dsrna/sirna溶液處理的對(duì)照組的桔小實(shí)蠅,使用trizol法分別提取rna之后利用perfectrealtimertreagent反轉(zhuǎn)錄得到相應(yīng)的cdna,反轉(zhuǎn)錄體系為20μl,其中包括:totalrna1μl(約1μg),5×primescriptbuffer4μl,primescriptrtenzymemixi1μl,oligodtprimer(50μm)1μl,random6mers(100μm)1μl,rnasefreeddh2o12μl。反應(yīng)條件為:37℃15min,85℃5s。
利用qrt-pcr技術(shù),檢測(cè)taiman基因以及5條可變剪切體在實(shí)驗(yàn)組、對(duì)照組中的相對(duì)表達(dá)量。qpcr中,針對(duì)5個(gè)可變剪切體的公共部分檢測(cè)的上、下游引物為bdtai-core-f(如seqidno:27所示)、bdtai-core-r(如seqidno:28所示);針對(duì)taiman-a基因檢測(cè)的上、下游引物為bdtaia-f(如seqidno:29所示)、bdtaia-r(如seqidno:30所示);針對(duì)taiman-b基因檢測(cè)的上、下游引物為bdtaib-f(如seqidno:31所示)、bdtaib-r(如seqidno:32所示);針對(duì)taiman-c基因檢測(cè)的上、下游引物為bdtaic-f(如seqidno:33所示)、bdtaic-r(如seqidno:34所示);針對(duì)taiman-d基因檢測(cè)的上、下游引物為bdtaid-f(如seqidno:35所示)、bdtaid-r(如seqidno:36所示);針對(duì)taiman-e基因檢測(cè)的上、下游引物為bdtaie-f(如seqidno:37所示)、bdtaie-r(如seqidno:38所示)。各引物序列如下:
bdtaia-f:5’-cctatgttaagcgcgcagtt-3’;bdtaia-r:5’-taagtagtgcagatacacccc-3’;
bdtaib-f:5’-cctatgttaagcgcgcagtt-3’;bdtaib-r:5’-gccaggaccgacattagttc-3’;
bdtaic-f:5’-cctatgttaagcgcgcagtt-3’;bdtaic-r:5’-gccgccaccttgaaaagaat-3’;
bdtaid-f:5’-aggtggtgaatctggtggtt-3’;bdtaid-r:5’-cctgcaggtaaatgttgggt-3’;
bdtaie-f:5’-ggagtgtcggtattgttggc-3’;bdtaie-r:5’-cctgagcgcgaccataaaat-3’;
bdtai-core-f:5’-gctctcaattcgacgacacc-3’;bdtai-core-r:5’-acctgaccgttaagcagtga-3’。
qrt-pcr反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性2min;95℃變性30s、60℃退火30s,共40個(gè)循環(huán)。pcr反應(yīng)體系為20μl,包括:cdna模板1μl(250ng),前述上、下游qpcr引物各1μl,去核酸酶水7μl和熒光染料
α-tubulin-f:5’-cgcattcatggttgataacg-3’,如seqidno:39所示;
α-tubulin-r:5’-gggcaccaagttagtctgga-3’,如seqidno:40所示。
qrt-pcr檢測(cè)結(jié)果顯示,在rna干擾4日齡幼蟲24-72h后,桔小實(shí)蠅的taiman基因5條可變剪切體在注射dsrna的實(shí)驗(yàn)組中的相對(duì)表達(dá)量相對(duì)于對(duì)照組(gfp)均顯著下調(diào),而且下調(diào)高達(dá)50%左右,如圖3a、3b所示。注射sitaiman-e的實(shí)驗(yàn)組中taiman-e基因的相對(duì)表達(dá)量也顯著下調(diào),如圖3c、3d所示。同時(shí),通過觀察發(fā)現(xiàn),taiman基因的dsrna及taiman-e基因的sirna處理的實(shí)驗(yàn)組的桔小實(shí)蠅幼蟲化蛹提前,提前約24h(結(jié)果如圖4所示),同時(shí)實(shí)驗(yàn)組的蛹重和蛹長較對(duì)照組相比顯著減小,圖5中a、c、e為注射taiman基因dsrna后的蛹的表型,處理組與對(duì)照組相比蛹明顯變小,圖5中b、d、f為注射sirna-tai-e后的蛹的表型,taiman-e基因被單獨(dú)干擾之后的表型與dsrna干擾的taiman-core(前述5個(gè)可變剪切體的公共部分)被干擾后的表型一致,實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了實(shí)驗(yàn)組的桔小實(shí)蠅的taiman基因的表達(dá)受到抑制,且taiman基因參與昆蟲的變態(tài)發(fā)育,也進(jìn)一步證明了實(shí)施例一中的序列seqidno:11~15為桔小實(shí)蠅taiman基因。實(shí)驗(yàn)結(jié)果也說明利用本發(fā)明方法對(duì)桔小實(shí)蠅進(jìn)行taiman基因的dsrna和taiman-e的sirna,能夠有效導(dǎo)入dsrna和sirna,達(dá)到rna干擾的效果。
研究發(fā)現(xiàn),同時(shí)分別注射針對(duì)5個(gè)可變剪切體對(duì)應(yīng)的taiman基因taiman-a、taiman-b、taiman-c、taiman-d、taiman-e基因的sirna進(jìn)行功能驗(yàn)證,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在5條可變剪切體中,taiman-e基因被干擾后的表型與dsrna處理后的表型一致,而其他4條可變剪切體被干擾后無明顯表型,說明taiman-e基因主要發(fā)揮該方面功能。
序列表
<110>西南大學(xué)
<120>桔小實(shí)蠅taiman基因和其可變剪切體檢測(cè)方法及其dsrna
<130>1
<160>40
<210>1
<211>21
<212>dna
<213>人工序列
<223>bdtais1-f
<400>1
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<400>16
taatacgactcactataggggctctcaattcgacgacacc40
<210>17
<211>40
<212>dna
<213>人工序列
<223>t7-tai-core-r
<400>17
taatacgactcactatagggacctgaccgttaagcagtga40
<210>18
<211>194
<212>rna
<213>人工序列
<223>dstaiman-core
<400>18
gcucucaauucgacgacaccuaauaacaacaauagcagcucaacuucuaaaagcaacgau60
aaucgaaauaauacagcaucuacacguuguuuacgaugugcaacugacaauugcucuauc120
cauccaguacaacaaggugacguuucaucgaccgaacccccauugccggagccaucacug180
cuuaacggucaggu194
<210>19
<211>41
<212>dna
<213>人工序列
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taatacgactcactatagggcagttcttgttgaattagatg41
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<211>41
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<213>人工序列
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taatacgactcactatagggtttggtttgtctcccatgatg41
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<211>21
<212>rna
<213>人工序列
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guguaucugcacuacuuaaua21
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<211>21
<212>rna
<213>人工序列
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<212>rna
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aauucuuuucaagguggcggc21
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<211>21
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<213>人工序列
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ucaacauuuaccugcagguaa21
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<213>人工序列
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guauuguuggcuuugguggca21
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<213>人工序列
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gccacaacgucuauaucaugg21
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<212>dna
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<212>dna
<213>人工序列
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<213>人工序列
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<223>α-tubulin-r
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gggcaccaagttagtctgga20