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一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物、檢測(cè)盒及其應(yīng)用的制作方法

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一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物、檢測(cè)盒及其應(yīng)用的制作方法與工藝

本發(fā)明涉及細(xì)菌檢測(cè)技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物、檢測(cè)盒及其應(yīng)用。



背景技術(shù):

牛多殺性巴氏桿菌(Pasteurella multocida)為巴氏桿菌科巴氏桿菌屬成員,革蘭氏陰性菌,顯微鏡下觀察為短小的桿狀或者球狀,兩端鈍圓、沒有鞭毛、不形成芽孢。生化特性為需氧或兼性厭氧、對(duì)營(yíng)養(yǎng)的要求較高;可分解甘露糖、葡萄糖、蔗糖和果糖、產(chǎn)酸不產(chǎn)氣。有莢膜的菌株抗性較強(qiáng),多見于臨床病料新分離菌株。該菌易感染月齡較小的犢牛,引起地方性的新生犢牛肺炎、運(yùn)輸熱或者斷奶牛肺炎;實(shí)際生產(chǎn)中這些疾病的產(chǎn)生通常伴隨著各種應(yīng)激因素,如不利的氣候影響、不良的營(yíng)養(yǎng)狀況、長(zhǎng)途運(yùn)輸?shù)?。尤其是該菌在呈急性感染時(shí)會(huì)表現(xiàn)為出血性敗血癥,導(dǎo)致病畜迅速死亡。目前根據(jù)細(xì)菌的莢膜血清反應(yīng)將該菌可以分為A、B、D、E和F5種莢膜血清型,其中臨床上對(duì)牛有致病性的為A、B和E型。至2006年報(bào)道分離A型菌株以來(lái),我國(guó)其它地區(qū)如天津、寧夏、內(nèi)蒙古、新疆、湖北、吉林和山東等地也相繼報(bào)道分離了A型菌株,表明我國(guó)從北部到中部都存在該病的流行。由于該病對(duì)養(yǎng)牛業(yè)的危害極大,因此對(duì)該病的診斷就顯得尤為重要。

傳統(tǒng)的牛多殺性巴氏桿菌檢測(cè)方法主要是通過(guò)實(shí)驗(yàn)室手段進(jìn)行細(xì)菌的分離和相關(guān)的生化鑒定、血清學(xué)鑒定;近些年也出現(xiàn)了常規(guī)PCR鑒定、套式PCR鑒定和熒光定量PCR鑒定。這些方法往往存在需要精密儀器和特殊實(shí)驗(yàn)條件的限制,制約了現(xiàn)地應(yīng)用。因此,建立一種實(shí)際應(yīng)用性強(qiáng)的檢測(cè)技術(shù)在基層推廣應(yīng)用,具有很強(qiáng)的臨床意義。

環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)技術(shù)是一種新穎的恒溫核酸擴(kuò)增方法,它是一種靈敏的鏈置換技術(shù),可以在恒溫條件下和短時(shí)間內(nèi)將目標(biāo)DNA從幾個(gè)拷貝擴(kuò)增到109~1010拷貝。LAMP技術(shù)的基本原理是針對(duì)靶序列的6個(gè)區(qū)域,設(shè)計(jì)4條特異性引物,利用一種具有鏈置換活性的DNA聚合酶-Bst DNA polymerase 在等溫條件下進(jìn)行反應(yīng)。同一鏈上的一組引物順序地退火到靶序列,在鏈置換DNA聚合酶的作用下,后階段退火的引物置換前面引物所形成的鏈。置換發(fā)生在兩條鏈上,對(duì)引物設(shè)計(jì)的要求是能形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)。反應(yīng)在恒溫條件下進(jìn)行,鏈的變性是由鏈置換產(chǎn)生的。LAMP反應(yīng)形成一系列不同長(zhǎng)度莖環(huán)結(jié)構(gòu)的DNA再通過(guò)特定的方法判斷擴(kuò)增與否。該方法具有方便快速、操作簡(jiǎn)單、敏感性高、適用性強(qiáng)、結(jié)果準(zhǔn)確等特點(diǎn),而且對(duì)實(shí)驗(yàn)所用的儀器要求非常低,一臺(tái)普通的水浴鍋就可以完成全部實(shí)驗(yàn)反應(yīng)。

為了實(shí)現(xiàn)牛多殺性巴氏桿菌的快捷、準(zhǔn)確和簡(jiǎn)易檢測(cè)診斷,很有必要提供一種利用LAMP技術(shù)檢測(cè)牛多殺性巴氏桿菌的方法。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明所要解決的技術(shù)問(wèn)題是提供一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法,使其能夠快速、準(zhǔn)確地對(duì)疑似樣品進(jìn)行檢測(cè),以克服現(xiàn)有方法在臨床實(shí)用性上的不足。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題,本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是:

一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物,由正向內(nèi)引物FIP、反向內(nèi)引物BIP、正向外引物F3和反向外引物B3組成,其中,各引物的序列分別為:

FIP:GCCACAAGCCAAATAAAAGACTACCAAATGGCATTATTTTATGGCTCG,

BIP:AGCACAGTTTTGTTGGGCAGAAAATAACGTCCAATCAGTTGC,

F3:CGCGAAATTGAGTTTTATGC,

B3:CAAGGAAATATAAACCGGCAA。

本發(fā)明提供了上述牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物在檢測(cè)牛多殺性巴氏桿菌中的應(yīng)用。

一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒,包含檢測(cè)溶液,每24μL檢測(cè)溶液中包括:

10×Thermo Pol反應(yīng)緩沖液 2.5μL

正向內(nèi)引物FIP 1.0μmol/L

反向內(nèi)引物BIP 1.0μmol/L

正向外引物F3 0.4μmol/L

反向外引物B3 0.4μmol/L

MgSO4 1.0mmol/L

dNTP 1.6nmol/L

Bst DNA聚合酶 320000U/L

顯色試劑 3mmol/L

DEPC水 補(bǔ)足至24μL,

其中,各引物的序列分別為:

FIP:GCCACAAGCCAAATAAAAGACTACCAAATGGCATTATTTTATGGCTCG,

BIP:AGCACAGTTTTGTTGGGCAGAAAATAACGTCCAATCAGTTGC,

F3:CGCGAAATTGAGTTTTATGC,

B3:CAAGGAAATATAAACCGGCAA。

優(yōu)選地,所述顯色試劑為羥基萘酚藍(lán),在恒溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)前加入。

本發(fā)明提供了上述牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒在檢測(cè)牛多殺性巴氏桿菌中的應(yīng)用。

本發(fā)明提供了利用上述牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒檢測(cè)牛多殺性巴氏桿菌的方法,包括以下步驟:

步驟S1:當(dāng)原始病料樣品為液體樣本時(shí),取所述液體樣本1mL在12000rpm/min條件下離心2min后起棄掉上清,再用PBS緩沖液1 mL重懸沉淀,12000rpm/min條件下離心2min后再次棄掉上清;然后利用100μL PBS緩沖液將沉淀吹懸后,取1μL作為樣品模板DNA;當(dāng)原始病料樣品為固體樣本時(shí),取所述固體樣品的病變與正常交界處的組織0.5g,加入10倍的PBS緩沖液無(wú)菌研磨,凍融2次后無(wú)菌紗布過(guò)濾,然后將獲得的濾液采用前述液體樣本的方法進(jìn)行處理,得到樣品模板DNA;

步驟S2:取1μL的樣品模板DNA加入24μL環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒中的檢測(cè)溶液,62℃恒溫反應(yīng)1小時(shí);

步驟S3:觀察反應(yīng)結(jié)束后溶液的顏色變化,陽(yáng)性結(jié)果顯示為天藍(lán)色,陰性結(jié)果顯示為紫色。

優(yōu)選地,所述樣品模板DNA,是疑似感染牛多殺性巴氏桿菌的患病動(dòng)物組織樣品的基因組。

與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的有益效果如下:

采用LAMP技術(shù)設(shè)計(jì)的4條引物分別針對(duì)6個(gè)不同的區(qū)域,任何一個(gè)不匹配反應(yīng)就無(wú)法進(jìn)行。本發(fā)明所設(shè)計(jì)的4條引物:正向內(nèi)引物FIP、反向內(nèi)引物BIP、正向外引物F3、反向外引物B3,分別針對(duì)靶序列上的6個(gè)獨(dú)立區(qū)域。其中正向內(nèi)引物是FIP,包括F1c區(qū)段(同靶序列的F1c區(qū)段完全相同)、F2區(qū)段(同靶序列的F2c區(qū)段完全相同)和TTTT連接子;正向外引物是F3,該基因與靶序列的F3c區(qū)段完全互補(bǔ);反向內(nèi)引物BIP,包括B1c區(qū)段(同靶序列的B1c區(qū)段完全相同)、B2區(qū)段(同靶序列的B2c區(qū)段完全相同)和TTTT連接子;反向外引物B3,同靶序列上的B3c區(qū)段完全互補(bǔ)。本發(fā)明所設(shè)計(jì)的4條引物分別針對(duì)靶序列上6個(gè)不同的區(qū)域,從而保證反應(yīng)的強(qiáng)特異性性。

本發(fā)明牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法,包括提取樣品模板DNA,利用所述環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增引物組合物進(jìn)行環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增;羥基萘酚藍(lán) (hydroxyl naphthol blue,HNB) 屬于金屬離子指示劑的一種。 HNB是Mg2+的滴定劑,其顏色隨溶液pH變化而改變,因此可以通過(guò)監(jiān)測(cè) 環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)體系中Mg2+濃度的變化及溶液pH而起到顏色指示劑的作用。反應(yīng)前將HNB加入到反應(yīng)液中,反應(yīng)體系呈紫色,反應(yīng)過(guò)程中Mg2+與環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)的副產(chǎn)物P2O74-結(jié)合產(chǎn)生大量沉淀,溶液中Mg2+濃度降低,pH發(fā)生變化,從而使HNB的顏色由紫色變?yōu)樘焖{(lán)色。因此,反應(yīng)結(jié)束后通過(guò)反應(yīng)體系的顏色變化,來(lái)判斷牛多殺性巴氏桿菌的有無(wú):天藍(lán)色表示檢測(cè)為陽(yáng)性,存在牛多殺性巴氏桿菌;紫色表示檢測(cè)結(jié)果為陰性,不存在牛多殺性巴氏桿菌。

1)強(qiáng)特異性:本發(fā)明利用牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒對(duì)提取的牛多殺性巴氏桿菌、牛源金黃色葡萄球菌、牛源無(wú)乳鏈球菌和牛源大腸桿菌基因組,同時(shí)進(jìn)行環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增實(shí)驗(yàn),并設(shè)置陰性對(duì)照。擴(kuò)增結(jié)果表明以其它細(xì)菌(牛源金黃色葡萄球菌、牛源無(wú)乳鏈球菌和牛源大腸桿菌基因組)作為模板時(shí)沒有陽(yáng)性擴(kuò)增。本發(fā)明環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物對(duì)牛多殺性巴氏桿菌具有特異性。

2)高敏感性:利用牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒和常規(guī)PCR對(duì)倍比稀釋的樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明:本發(fā)明牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒可檢測(cè)到10 CFU/mL,而常規(guī)PCR擴(kuò)增的方法只能檢測(cè)到1000 CFU/mL。由此可見,本發(fā)明提供的牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒具有更高的敏感性。

3)快速性:相對(duì)常規(guī)PCR反應(yīng)長(zhǎng)達(dá)數(shù)小時(shí)的反應(yīng)時(shí)間和檢測(cè)時(shí)間,本發(fā)明僅需1小時(shí)即可完成整個(gè)反應(yīng)和結(jié)果判定。

4)可操作性:相對(duì)常規(guī)PCR,本發(fā)明牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)試劑盒不需要昂貴的PCR儀,只需要一個(gè)簡(jiǎn)單的恒溫水浴鍋即可完成反應(yīng);且結(jié)果的檢測(cè)可以直接肉眼判定,無(wú)需使用凝膠電泳等特殊儀器。因此本發(fā)明試劑盒具有較強(qiáng)的現(xiàn)地可操作性。

本發(fā)明的檢測(cè)方法快速、靈敏高、準(zhǔn)確性好、操作簡(jiǎn)便,其靈敏度比常規(guī)PCR高100倍,通過(guò)肉眼可直接觀察到檢測(cè)結(jié)果,可作為牛多殺性巴氏桿菌的特異性檢測(cè),為疑似感染牛多殺性巴氏桿菌的患病動(dòng)物組織樣品的快速診斷提供了一種新的方法,具有非常高的實(shí)用價(jià)值。

附圖說(shuō)明

下面結(jié)合附圖對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步的詳細(xì)說(shuō)明。

圖1為環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)的特異性檢測(cè)結(jié)果(凝膠檢測(cè)圖),其中,1:陰性對(duì)照;2:牛多殺性巴氏桿菌;3:牛源金黃色葡萄球菌;4:牛源無(wú)乳鏈球菌;5:牛源大腸桿菌;

圖2為環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增反應(yīng)的敏感性檢測(cè)結(jié)果(加入HNB后直接肉眼觀察),其中,1:陰性對(duì)照,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為紫色;2:1 CFU/mL,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為紫色;3:10 CFU/mL,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;4:102 CFU/mL,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;5:103 CFU/mL,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;6:104 CFU/mL,擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;

圖3為常規(guī)PCR方法的敏感性檢測(cè)結(jié)果(凝膠檢測(cè)圖),其中,1:陰性對(duì)照;2:1 CFU/mL;3:10 CFU/mL;4:102 CFU/mL;5:103 CFU/mL;6:104 CFU/mL。

具體實(shí)施方式

為了更好地理解本發(fā)明,下面結(jié)合實(shí)施例進(jìn)一步清楚闡述本發(fā)明的內(nèi)容,但本發(fā)明的保護(hù)內(nèi)容不僅僅局限于下面的實(shí)施例。

1、材料準(zhǔn)備

牛多殺性巴氏桿菌(Pasteurella multocida CVCC1667)、牛源金黃色葡萄球菌(staphylococcus aureus CVCC3050)、牛源無(wú)乳鏈球菌(streptococcus agalactiae CVCC1886)、牛源大腸桿菌(Escherichia coli CVCC1299)購(gòu)自中國(guó)獸醫(yī)微生物菌種保藏管理中心。Bst DNA聚合酶及10×Thermo Pol反應(yīng)緩沖液 (購(gòu)自New England Biolabs公司),dNTP(購(gòu)自Clontech公司)、Mg2+(購(gòu)自Vazyme公司)。

2、引物設(shè)計(jì)與合成

參考目前已發(fā)表的牛多殺性巴氏桿菌的基因序列,針對(duì)牛多殺性巴氏桿菌的基因KMT1的保守區(qū)域,其中,KMT1基因序列如序列表中序列1所示,利用PrimerExplorer V4在線軟件 http://primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html設(shè)計(jì)用于檢測(cè)牛多殺性巴氏桿菌的LAMP引物,其中,LAMP引物包括:正向內(nèi)引物FIP和反向內(nèi)引物BIP,正向外引物F3和反向外引物B3,引物序列分別如下所示:

FIP: GCCACAAGCCAAATAAAAGACTACCAAATGGCATTATTTTATGGCTCG;

BIP:AGCACAGTTTTGTTGGGCAGAAAATAACGTCCAATCAGTTGC;

F3:CGCGAAATTGAGTTTTATGC;

B3:CAAGGAAATATAAACCGGCAA。

設(shè)計(jì)完成的引物由蘇州泓迅生物合成。

正向內(nèi)引物FIP的序列如序列表中序列2所示;反向內(nèi)引物BIP的序列如序列表中序列3所示;正向外引物F3的序列如序列表中序列4所示;反向外引物B3的序列如序列表中序列5所示。

3、樣品基因組的提取

當(dāng)原始病料樣品為液體樣本時(shí),取所述液體樣本1mL在12000rpm/min條件下離心2min后起棄掉上清,再用PBS緩沖液1 mL重懸沉淀,12000 rpm/min條件下離心2min后再次棄掉上清;然后利用100μL PBS緩沖液將沉淀吹懸后,取1μL作為樣品模板DNA;

當(dāng)原始病料樣品為固體樣本時(shí),取所述固體樣品的病變與正常交界處的組織0.5g,加入10倍的PBS緩沖液無(wú)菌研磨,凍融2次后無(wú)菌紗布過(guò)濾,然后將獲得的濾液采用前述液體樣本的方法進(jìn)行處理,得到樣品模板DNA。

4、牛多殺性巴氏桿菌LAMP反應(yīng)體系的建立

LAMP反應(yīng)體系,以25μL計(jì),包括如下組分:

10×Thermo Pol反應(yīng)緩沖液 2.5μL

正向內(nèi)引物FIP 1.0μmol/L

反向內(nèi)引物BIP 1.0μmol/L

正向外引物F3 0.4μmol/L

反向外引物B3 0.4μmol/L

MgSO4 1.0mmol/L

dNTP 1.6nmol/L

Bst DNA聚合酶 320000U/L

羥基萘酚藍(lán) 3mmol/L

樣品模板DNA 1μL

DEPC水 補(bǔ)足至25μL。

將上述組分混勻后放置于PCR儀內(nèi)或者水浴鍋中恒溫62℃作用1小時(shí);反應(yīng)結(jié)束后可以進(jìn)行凝膠檢測(cè)或者可視化檢測(cè),對(duì)結(jié)果進(jìn)行判定。

5、牛多殺性巴氏桿菌LAMP檢測(cè)試劑盒條件的優(yōu)化

5.1 引物濃度優(yōu)化

在25 μL的LAMP反應(yīng)體系中以一對(duì)引物為變量,其他反應(yīng)底物成分相同,依次對(duì)FIP與BIP(0.4μmol/L、0.6μmol/L、0.8μmol/L、1.0μmol/L、1.2μmol/L、1.4μmol/L、1.6μmol/L、1.8μmol/L、2.0μmol/L)、F3與B3(0.05μmol/L、0.1μmol/L、0.2μmol/L、0.3μmol/L、0.4μmol/L、0.5μmol/L、0.6μmol/L)這兩對(duì)引物進(jìn)行濃度梯度優(yōu)化,每個(gè)濃度重復(fù)3次,反應(yīng)結(jié)束之后,進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

5.2 擴(kuò)增時(shí)間優(yōu)化

配置LAMP反應(yīng)體系,每個(gè)時(shí)間條件下樣品設(shè)置3個(gè)重復(fù),分別在恒溫水浴鍋中反應(yīng)30 min、45 min、60 min、75 min后取出,進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

5.3 擴(kuò)增溫度的優(yōu)化

配置LAMP反應(yīng)體系,每個(gè)溫度條件下樣品設(shè)置3個(gè)重復(fù),分別在不同溫度60℃、61℃、62℃、63℃、64℃、65℃反應(yīng)1小時(shí)后取出,進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

5.4 Mg2+濃度優(yōu)化

對(duì)Mg2+的濃度設(shè)置梯度為0.6 mmol/L、0.8 mmol/L、1.0 mmol/L、1.2 mmol/L、1.4 mmol/L,每個(gè)濃度梯度下設(shè)置3個(gè)重復(fù)。待所有濃度梯度反應(yīng)結(jié)束后,進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

5.5 Bst DNA聚合酶濃度優(yōu)化

對(duì)Bst DNA聚合酶的濃度進(jìn)行優(yōu)化,其梯度設(shè)置為160000 U/L、320000 U/L、480000 U/L 、640 000U/L、800000 U/L,每個(gè)濃度梯度設(shè)置3個(gè)重復(fù)。待所有濃度梯度反應(yīng)結(jié)束后,進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

5.6 LAMP反應(yīng)的特異性試驗(yàn)

以臨床上常見的牛細(xì)菌性疾?。号T唇瘘S色葡萄球菌、牛源無(wú)乳鏈球菌和牛源大腸桿菌的基因組作為檢測(cè)對(duì)象,提取上述三種細(xì)菌的基因組,并以此為模板進(jìn)行環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增,來(lái)驗(yàn)證其反應(yīng)的特異性,結(jié)果參見圖1所示。

結(jié)果顯示,當(dāng)發(fā)生LAMP擴(kuò)增反應(yīng)時(shí),產(chǎn)生大量的焦磷酸鎂白色沉淀導(dǎo)致反應(yīng)液的濁度上升,通過(guò)HNB的顯色反應(yīng)結(jié)果所示,牛多殺性巴氏桿菌的反應(yīng)管呈天藍(lán)色,其為陽(yáng)性結(jié)果;而其它牛源金黃色葡萄球菌、牛源無(wú)乳鏈球菌、牛源大腸桿菌和陰性對(duì)照菌反應(yīng)管均呈紫色,為陰性結(jié)果,證明所設(shè)計(jì)的LAMP特異性引物具有種的特異性。 這說(shuō)明該引物組合物可被用于生產(chǎn)實(shí)踐中病料樣品中牛多殺性巴氏桿菌的快速可靠的檢測(cè)盒鑒定。

5.7 LAMP反應(yīng)的敏感性試驗(yàn)

取已知CFU值的牛多殺性巴氏桿菌液,然后用PBS緩沖液進(jìn)行稀釋,使其分別相當(dāng)于含有1 CFU/mL、10CFU/mL、100 CFU/mL、1000 CFU/mL、10000 CFU/mL,然后提取上述五組牛多殺性巴氏桿菌的基因組,并分成兩部分,一部分用LAMP試劑盒檢測(cè);另一部分用常規(guī)PCR方法檢測(cè),將兩者檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行比較,以驗(yàn)證其反應(yīng)的敏感性,結(jié)果參見圖2~3所示。

參閱圖2,LAMP試劑盒檢測(cè)結(jié)果表明:陰性對(duì)照組的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為紫色;1 CFU/mL的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為紫色;10 CFU/mL的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;102 CFU/mL的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;103 CFU/mL的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色;104 CFU/mL的擴(kuò)增產(chǎn)物顯示為天藍(lán)色。

參閱圖3,常規(guī)PCR方法檢測(cè)結(jié)果表明:陰性對(duì)照組無(wú)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物;1 CFU/mL無(wú)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物;10 CFU/mL無(wú)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物;102 CFU/mL無(wú)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物;103 CFU/mL在600bp左右出現(xiàn)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物;104 CFU/mL在600bp左右出現(xiàn)特異性擴(kuò)增產(chǎn)物。

將上述兩種方法的檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行比較:LAMP試劑盒的檢測(cè)閾值為10CFU/mL,而常規(guī)PCR的檢測(cè)閾值則是103 CFU/mL;表明LAMP檢測(cè)方法檢測(cè)敏感性為常規(guī)PCR的100倍,能夠更加有效地檢測(cè)病料,提高臨床診斷的準(zhǔn)確性。

5.8 LAMP實(shí)際應(yīng)用的符合性

臨床采集63頭患呼吸道病牛的鼻腔拭子。提取樣品的基因組,分別利用建立的的LAMP檢測(cè)方法與常規(guī)PCR方法進(jìn)行檢測(cè)。通過(guò)對(duì)上述方法實(shí)際應(yīng)用中檢測(cè)結(jié)果比較,驗(yàn)證LAMP實(shí)際應(yīng)用的符合性。

6、牛多殺性巴氏桿菌LAMP方法的優(yōu)化結(jié)果

6.1 優(yōu)化體系和條件

通過(guò)上述條件的優(yōu)化,牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增試劑盒的最后優(yōu)化的LAMP體系,以25μL計(jì),為:

10×Thermo Pol反應(yīng)緩沖液 2.5μL

正向內(nèi)引物FIP 1.0μmol/L

反向內(nèi)引物BIP 1.0μmol/L

正向外引物F3 0.4μmol/L

反向外引物B3 0.4μmol/L

MgSO4 1.0mmol/L

dNTP 1.6nmol/L

Bst DNA聚合酶 320000U/L

羥基萘酚藍(lán) 3mmol/L

樣品模板DNA 1μL

DEPC水 補(bǔ)足至25μL。

反應(yīng)條件為62℃反應(yīng)1小時(shí)。

6.2 牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增試劑盒的符合性

利用牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增試劑盒與常規(guī)PCR方法對(duì)獲得的63份樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn)牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增試劑盒的檢出率(23/63)顯著高于常規(guī)PCR方法(13/63),且常規(guī)PCR方法檢出的陽(yáng)性樣品都可以被牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增試劑盒檢出。

最后說(shuō)明的是,以上實(shí)施例僅用以說(shuō)明本發(fā)明的技術(shù)方案而非限制,本領(lǐng)域普通技術(shù)人員對(duì)本發(fā)明的技術(shù)方案所做的其他修改或者等同替換,只要不脫離本發(fā)明技術(shù)方案的精神和范圍,均應(yīng)涵蓋在本發(fā)明的權(quán)利要求范圍當(dāng)中。

SEQUENCE LISTING

<110> 南陽(yáng)師范學(xué)院

<120> 一種牛多殺性巴氏桿菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)引物組合物、檢測(cè)盒及其應(yīng)用

<130> 2017

<160> 5

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 431

<212> DNA

<213> 牛多殺性巴氏桿菌(Pasteurella multocida)

<400> 1

acccagtggg gcggtgcgaa tgaaccgatt gccgcgaaat tgagttttat gccacttgaa 60

atgggaaatg gcattatttt atggctcgtt gtgagtgggc ttgtcggtag tcttttattt 120

ggcttgtggc aaagaaaagc acagttttgt tgggcagagt ttggtgtgtt gagccaatct 180

gcttccttga caacggcgca actgattgga cgttatttat tactcagctt attgttattt 240

gccggtttat atttccttgt cagtctgatt tatcaatatt tccatgttga gttacgtttc 300

ttatggccat tattgaagcc ttaacggtag agcggtttaa tttatttatc gtgtattggt 360

tacctatttt ggtctttttc ttcgtgttca acggtttgat cgtgtcagtc caaatgaaac 420

aaaaagtggc g 431

<210> 2

<211> 48

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 2

gccacaagcc aaataaaaga ctaccaaatg gcattatttt atggctcg 48

<210> 3

<211> 42

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

agcacagttt tgttgggcag aaaataacgt ccaatcagtt gc 42

<210> 4

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

cgcgaaattg agttttatgc 20

<210> 5

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 5

caaggaaata taaaccggca a 21

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