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基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器、制備方法及應(yīng)用與流程

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基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器、制備方法及應(yīng)用與流程

本發(fā)明屬于生物傳感器技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器、制備方法及應(yīng)用;實現(xiàn)對avidin的靈敏檢測。



背景技術(shù):

抗生物素蛋白(avidin)是一種廣泛存在于生蛋清中的一種堿性糖蛋白,第一次被發(fā)現(xiàn)在20世紀(jì)上半期??股锼氐鞍自诎┌Y的治療過程中起著重要的作用,如腫瘤細胞的定位和成像。

隨著研究的深入,由于其抗菌活性和殺蟲技能,抗生物素蛋白被廣泛用于基于工程,這可能會導(dǎo)致抗生物素蛋白的殘留。生物素(biotin)作為一種水溶性維生素,是正常代謝和重要的生化過程所必需的。抗生物素蛋白-生物素之間的締合常數(shù)K=10-15,是最大的蛋白質(zhì)和小分子之間的非共價鍵相互作用之一。近幾十年里,這種復(fù)合物的穩(wěn)定性已被應(yīng)用于許多系統(tǒng)中??股锼氐鞍?生物素系統(tǒng)在免疫組化、免疫細胞/組織工程和生物傳感應(yīng)用等中的應(yīng)用具有重要的意義。

然而,過量的抗生物素蛋白的殘留會導(dǎo)致生物素營養(yǎng)不良。因此,檢測avidin的含量是非常重要的。



技術(shù)實現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的在于提供基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器及其制備方法,將biotin標(biāo)記在DNA單鏈上并和avidin結(jié)合對DNA單鏈起保護作用,由于單鏈DNA和AuNPs之間的相互作用,使得AuNPs在高鹽濃度下不發(fā)生聚沉。

本發(fā)明還提供了基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器可視化檢測avidin的應(yīng)用,具有高靈敏性、特異性、穩(wěn)定性。

本發(fā)明提供的基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器的制備方法,包括以下步驟:

1)、將抗生素蛋白avidin溶液和biotin-ssDNA溶液混合在PBS緩沖液中,培養(yǎng),使avidin與biotin-ssDNA結(jié)合,對DNA單鏈起保護作用;

2)將Exo I剪切酶加入步驟1)培養(yǎng)后的溶液中,加熱反應(yīng),然后冷卻至室溫;

3)室溫下,將AuNPs加入步驟2)得到的冷卻后的反應(yīng)液中反應(yīng),最后加入NaCl溶液,利用AuNPs在高鹽濃度下發(fā)生聚沉而使溶液顏色變化,制備得到化學(xué)生物傳感器。

步驟1)之前制備抗生素蛋白avidin溶液:將購買的抗生素蛋白avidin用二次水溶解,濃度為1μM,4℃下保存?zhèn)溆茫?/p>

步驟1)之前制備biotin-ssDNA溶液:將購買的biotin-ssDNA用二次水溶解,濃度為2μM,4℃下保存?zhèn)溆?;biotin-ssDNA序列為5-CCCTCTATCTATCTCTCTCTCTCTCACTTA-biotin-3。

步驟1)中所述PBS緩沖液濃度為0.05M;

步驟1)中所述培養(yǎng)具體為:在30~37℃下反應(yīng)20-30min;

步驟1)具體為:將30μL 1μM的抗生素蛋白avidin溶液和30μL 2μM biotin-ssDNA溶液混合在40μL PBS緩沖液中,在30~37℃下反應(yīng)20-30min。

步驟2)中所述加熱反應(yīng)具體為:先在30~37℃下反應(yīng)20min后,再85~95℃熱水浴20-30min。

先在30~37℃下反應(yīng)20min,目的是使Exo I剪切酶水解DNA,然后再85~95℃熱水浴20min目的是使Exo I剪切酶失活,以免影響后續(xù)檢測。

步驟2)具體為:將10U Exo I剪切酶加入步驟1)培養(yǎng)后的溶液中,在37℃下反應(yīng)20min后,85℃熱水浴,熱水浴20min后拿出冷卻至室溫。

步驟3)中AnNPs制備方法為:加熱50mL,1mg/mL的HAuCl4溶液直至沸騰,然后將2mL 1mg/mL檸檬酸鈉溶液迅速加入煮沸的HAuCl4溶液中,劇烈攪拌,直至溶液顏色變成深紅色,再加熱30min,然后停止加熱并冷卻至室溫,后裝入容量瓶備用。所有參與反應(yīng)的玻璃儀器及轉(zhuǎn)子均在王水中浸泡12h以上。

步驟3)中NaCl溶液溶度大于0.12M,優(yōu)選的為:0.2M。

步驟3)具體為:將200μL AuNPs加入步驟2)得到的冷卻后的反應(yīng)液中反應(yīng)10min,最后加入120μL 0.2M的NaCl溶液,利用AuNPs在高鹽濃度下發(fā)生聚沉而使溶液顏色變化,制備得到化學(xué)生物傳感器。

本發(fā)明提供的一種基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器,采用上述方法制備得到。

本發(fā)明提供的基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器用于檢測抗生素蛋白avidin;

具體檢測方法為:將biotin標(biāo)記在DNA單鏈上并和avidin結(jié)合構(gòu)建末端保護體系對DNA單鏈起保護作用,保護DNA不被Exo I剪切酶水解,由于單鏈DNA和AuNPs之間的相互作用,使得AuNPs在高鹽濃度下不發(fā)生聚沉,不同濃度的avidin溶液,體系顏色不同,吸光度不同,實現(xiàn)對不同濃度的avidin定量檢測。

與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明利用高鹽濃度下會使AuNPs發(fā)生聚沉,溶液顏色由酒紅色變成灰藍色的原理,將biotin標(biāo)記在DNA單鏈上并和avidin結(jié)合對DNA單鏈起保護作用,由于單鏈DNA和AuNPs之間的相互作用,使得AuNPs在高鹽濃度下不發(fā)生聚沉,不同濃度的avidin溶液,顏色不同。基于此機理制備生物傳感器,線性范圍為10-180ng/mL,檢測限為0.004μg/mL。此傳感器實現(xiàn)了對avidin靈敏性、特異性、穩(wěn)定性的檢測。

附圖說明

圖1為基于高鹽濃度下AuNPs的聚沉和DNA的末端保護作用可視化檢測抗生物素蛋白avidin的實驗原理圖;

圖2為檢測avidin的可行性分析圖,曲線a為不存在avidin時溶液的紫外吸收曲線,曲線b為存在avidin時溶液的紫外吸收曲線;

圖3為NaCl濃度對本實驗的影響圖;

圖4為Exo I剪切酶對本實驗的影響圖;

圖5為avidin和biotin的反應(yīng)時間對本實驗的影響圖;

圖6為avidin和biotin的反應(yīng)溫度對本實驗的影響圖;

圖7為不同濃度的avidin對本實驗的影響圖;

從上到下濃度分別為10ng/mL,20ng/mL,40ng/mL,60ng/mL,80ng/mL,100ng/mL,120ng/mL,140ng/mL,160ng/mL,180ng/mL和200ng/mL的avidin的紫外光譜圖;

圖8為不同濃度下吸光度的線性關(guān)系;

圖9為該方法對lysozyme,trypase,thrombin,BSA和avidin的選擇性對比圖。

具體實施方式

實施例1

基于高濃度鹽溶液下金納米的聚沉構(gòu)建的化學(xué)生物傳感器的制備方法,包括以下步驟:

A、制備抗生素蛋白avidin溶液:將購買的抗生素蛋白avidin用二次水溶解,濃度為1μM,4℃下保存?zhèn)溆?;制備biotin-ssDNA溶液:將購買的biotin-ssDNA用二次水溶解,濃度為2μM,4℃下保存?zhèn)溆?;制備濃度?.05M PBS緩沖液濃度,4℃下保存?zhèn)溆茫?/p>

B、將30μL抗生素蛋白avidin溶液和30μL biotin-ssDNA溶液混合在40μL PBS緩沖液中,在37℃下反應(yīng)0.5h;

C、將10U Exo I剪切酶加入步驟1)培養(yǎng)后的溶液中,在37℃下反應(yīng)20min后,85℃熱水浴,熱水浴20min后拿出冷卻至室溫;

D、將200μL AuNPs加入步驟2)得到的冷卻后的反應(yīng)液中反應(yīng)10min,最后加入120μL NaCl溶液,利用AuNPs在高鹽濃度下發(fā)生聚沉而使溶液顏色變化,制備得到化學(xué)生物傳感器。

與實施例1相同的實驗條件下,不加入avidin溶液,分別測量2個體系的紫外吸收曲線,結(jié)果如圖2所示。

實施例2

利用上述制備的傳感器檢測avidin的濃度:

A、制備抗生素蛋白avidin溶液:將購買的抗生素蛋白avidin用二次水溶解,濃度為1μM,4℃下保存?zhèn)溆茫恢苽鋌iotin-ssDNA溶液:將購買的biotin-ssDNA用二次水溶解,濃度為2μM,4℃下保存?zhèn)溆?;制備濃度?.05M PBS緩沖液濃度,4℃下保存?zhèn)溆茫?/p>

B、分別將不同濃度的抗生素蛋白avidin溶液和30μL biotin-ssDNA溶液混合在40μL PBS緩沖液中,此時,抗生素蛋白avidin的濃度分別為10ng/mL,20ng/mL,40ng/mL,60ng/mL,80ng/mL,100ng/mL,120ng/mL,140ng/mL,160ng/mL,180ng/mL和200ng/mL,在37℃下反應(yīng)0.5h;

C、將10U Exo I剪切酶加入步驟1)培養(yǎng)后的溶液中,在37℃下反應(yīng)20min后,85~95℃熱水浴,熱水浴20min后拿出冷卻至室溫;

D、將200μL AuNPs加入步驟2)得到的冷卻后的反應(yīng)液中反應(yīng)10min,最后加入120μL NaCl溶液,利用AuNPs在高鹽濃度下發(fā)生聚沉而使溶液顏色變化,測得的吸光度與avidin濃度建立線性關(guān)系(圖7和圖8),然后相同條件下實驗,測量未知濃度的avidin體系的吸光度,根據(jù)建立的線性關(guān)系得avidin濃度。

實施例3

改變NaCl濃度,其他步驟同實施例1,NaCl濃度對本實驗的影如圖3;

改變Exo I剪切酶用量,其他步驟同實施例1,Exo I剪切酶用量度對本實驗的影如圖4;

改變avidin和biotin的反應(yīng)時間,其他步驟同實施例1,avidin和biotin的反應(yīng)時間對本實驗的影如圖5;

改變avidin和biotin的反應(yīng)溫度,其他步驟同實施例1,avidin和biotin的反應(yīng)溫度對本實驗的影如圖6;

實施例4

將檢測對象avidin分別改為lysozyme,trypase,thrombin,BSA,檢測條件不變,本發(fā)明檢測方法對lysozyme,trypase,thrombin,BSA和avidin的選擇性對比如圖9。

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