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一種用于動(dòng)物源樣品中痕量F?2毒素代謝分析的方法與流程

文檔序號(hào):12784711閱讀:398來源:國知局
一種用于動(dòng)物源樣品中痕量F?2毒素代謝分析的方法與流程

本發(fā)明屬于分析化學(xué)領(lǐng)域,具體涉及一種用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法。



背景技術(shù):

F-2毒素,又稱玉米烯酮(ZEN),是由禾谷鐮刀菌、三線鐮刀菌及串珠鐮刀菌等產(chǎn)生的一類真菌毒素,常見于糧食及動(dòng)物飼料中,可經(jīng)飲用水和食物對(duì)動(dòng)物健康造成影響,在動(dòng)物所有食用的樣品中不得檢出。

關(guān)于F-2毒素的檢測(cè),國內(nèi)外已建立了多種方法,主要為薄層色譜法、酶聯(lián)免疫測(cè)定法(ELISA)、高效液相色譜法(HPLC),主要集中于F-2毒素單組分檢測(cè)。AOAC于1995年發(fā)布了其官方的薄層色譜法(TLC)分析方法。在我國,1996年發(fā)布的行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)“出口糧谷中赤霉烯酮檢驗(yàn)方法”、2004年發(fā)布的國家標(biāo)準(zhǔn)“飼料中玉米赤霉烯酮的測(cè)定”以及2005年發(fā)布的國家標(biāo)準(zhǔn)“糧食衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)”均采用薄層色譜法。在免疫分析方面,基于生物素-鏈霉親和素的酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA),建立了玉米赤霉烯酮(ZEN)的ZEN-ELISA檢測(cè)方法。在液相色譜技術(shù)方面,我國對(duì)ZEN檢測(cè)的研究主要集中ZEN單組分特異性分析,國家標(biāo)準(zhǔn)“谷物中玉米赤霉烯酮的測(cè)定”中采用Vieam ZEN免疫親和柱進(jìn)行高效液相分析檢測(cè)。

在F-2毒素代謝分析方面,目前主要應(yīng)用液相色譜聯(lián)用質(zhì)譜分析技術(shù),采用梯度洗脫分離方式,聯(lián)用高分辨質(zhì)譜或串聯(lián)質(zhì)譜(MS-MS),采用乙酸銨水溶液與乙腈/甲醇在一定的濃度梯度下洗脫,通過改變流動(dòng)相中各溶劑組成的比例改變流動(dòng)相的極性,使每個(gè)流出的組分都有合適的容量因子k,并使樣品中的所有組分可在最短時(shí)間內(nèi)實(shí)現(xiàn)最佳分離,分離效果良好,但儀器要求較高。等度洗脫,流動(dòng)相的組成比例和流速恒定不變,洗脫操作簡單;熒光檢測(cè)靈敏度較高,技術(shù)要求較低,二者的聯(lián)用對(duì)于痕量F-2毒素的代謝分析具有良好的應(yīng)用前景。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的在于提供一種用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,該方法基于高效液相色譜技術(shù),集成了在柱富集、等度洗脫和熒光檢測(cè)等技術(shù),用于動(dòng)物樣品中痕量F-2毒素及代謝組分的快速分離、檢測(cè),流程簡便、操作簡單、靈敏度高。

為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:

一種用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,以液相色譜分離柱對(duì)動(dòng)物源樣品提取凈化液進(jìn)行在柱連續(xù)進(jìn)樣富集,以甲醇-乙腈-水三元混合溶液為流動(dòng)相,采用恒流等度洗脫和柱后熒光檢測(cè)模式,連續(xù)分離檢測(cè)動(dòng)物樣品中痕量F-2毒素及代謝組分,實(shí)現(xiàn)F-2毒素動(dòng)物體內(nèi)代謝反應(yīng)的痕量分析。

所述F-2毒素代謝中的組分包括β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素。

所述的色譜分離柱為十八烷基鍵合硅膠填充柱;

所述的甲醇-乙腈-水三元混合溶液體積比為55:13:32;

所述的熒光檢測(cè)模式的激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm。

所述用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,具體包括以下分析步驟:

所述用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,所述動(dòng)物源樣品為豬的肝臟、肌肉和血清。

所述用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,對(duì)于肝臟、肌肉組織樣品分析的具體包括以下步驟:

(1)提取:取1g均質(zhì)的組織樣品,均勻攪碎,置放于10 mL離心管中,加入2.0 mL乙酸鈉溶液、3.0 mL無水乙醚,4000r/min離心10min,轉(zhuǎn)移上清液;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈桑?/p>

殘?jiān)?.5mL三氯甲烷溶解,超聲2min,加入1.5mL 0.5mol/L的氫氧化鈉溶液,4000r/min離心10min,轉(zhuǎn)移上清液;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈桑霉腆w備用;

(2)凈化:在步驟(1)得到的固體中加入體積比1:4的磷酸-水溶液0.5mL,混勻后轉(zhuǎn)入PEP固相萃取柱中,先用1.0 mL水淋洗,棄去;采用3.0ml甲醇洗脫,洗脫液于40℃下氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)皿w積比為1:3的乙腈-水溶液1.0 mL溶解,過濾,取濾液待測(cè);

(3)在柱富集:以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱;在步驟(2)得到的濾液中加入體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL;

(4)等度洗脫分析:以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素代謝組分的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè)。

所述用于動(dòng)物源樣品中痕量F-2毒素代謝分析的方法,對(duì)于血清樣品分析的包括以下步驟:

(1)凈化:取 1mL 血清樣品于 10 mL 離心管中,加入 5.0 mL 乙酸乙酯,渦旋混勻 5min,3000r/min 離心 10 min 取上清液于 10 mL 玻璃離心管中,剩余殘?jiān)?4.0 mL 乙酸乙酯分兩次清洗,洗液轉(zhuǎn)入玻璃離心管中,40℃水浴氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)?1.0 mL 流動(dòng)相溶解,3000 r/min 離心 10min,取上清液過濾,濾液待測(cè);

(2)在柱富集:以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱;在步驟(1)得到的濾液中加入體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL;

(3)等度洗脫分析:以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素代謝組分的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè)。

本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)在于:

本發(fā)明集成了在柱富集、等度洗脫和熒光檢測(cè)等技術(shù),提出了一種用于動(dòng)物樣品中痕量F-2毒素及代謝組分的快速分離、靈敏檢測(cè)的便捷的新技術(shù)。針對(duì)傳統(tǒng)HPLC方法聯(lián)用質(zhì)譜分析雖然高分辨高靈敏,但是儀器復(fù)雜、操作技術(shù)要求高;常規(guī)紫外光譜檢測(cè)簡便,但檢測(cè)靈敏度低,不適用于痕量F-2毒素的檢測(cè)分析等問題,本發(fā)明引入在線大體積進(jìn)樣富集技術(shù),通過在柱高壓連續(xù)進(jìn)樣,通過調(diào)控有機(jī)相濃度,控制區(qū)帶擴(kuò)散,以實(shí)現(xiàn)F-2毒素及代謝組分的高效富集;以三元混合試劑為流動(dòng)相,采用恒流速等度洗脫方式,實(shí)現(xiàn)F-2毒素及代謝組分的快速連續(xù)分離;并聯(lián)用熒光檢測(cè),在線測(cè)定分離組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)動(dòng)物樣品中痕量F-2毒素及代謝組分的在柱富集和痕量分析。本發(fā)明方法流程連續(xù)、高效,無需復(fù)雜的儀器裝備,富集后熒光檢測(cè)的靈敏度最低可達(dá)0.05 ng/mL,適用于痕量F-2毒素及代謝組分的痕量分析。

附圖說明

圖1為實(shí)施例1中連續(xù)進(jìn)樣富集后F-2毒素代謝組分檢測(cè)限,1為β-玉米赤霉烯醇;

圖2為實(shí)施例2中豬肌肉中F-2毒素及代謝組分分析,1為β-玉米赤霉烯醇,2為F-2毒素;

圖3為實(shí)施例3中豬肝臟中F-2毒素及代謝組分分析,1為β-玉米赤霉烯醇,2為F-2毒素;

圖4為實(shí)施例4中豬血清中F-2毒素及代謝組分分析,1為β-玉米赤霉烯醇,2為F-2毒素。

具體實(shí)施方式

為了使本發(fā)明所述的內(nèi)容更加便于理解,下面結(jié)合具體實(shí)施方式對(duì)本發(fā)明所述的技術(shù)方案做進(jìn)一步的說明,但是本發(fā)明不僅限于此。

實(shí)施例1:

以體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL;以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定F-2毒素組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè),得到痕量β-玉米赤霉烯醇檢出圖,富集后熒光檢測(cè)的靈敏度最低可達(dá)0.05 ng/mL(圖1)。

實(shí)施例2:

取1g均質(zhì)的豬肌肉樣品,均勻攪碎,置放于10 mL離心管中,加入2.0 mL乙酸鈉溶液、3.0 mL無水乙醚,4000r/min離心10min,上清液轉(zhuǎn)移到另一離心管中;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈?;殘?jiān)?.5mL三氯甲烷溶解,超聲2min,加入1.5mL 0.5mol/L的氫氧化鈉溶液,4000r/min離心10min,轉(zhuǎn)移上清液;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈?,得固體備用。

在上述固體中加入體積比1:4的磷酸-水溶液0.5mL,混勻后轉(zhuǎn)入PEP固相萃取柱中,先用1.0 mL水淋洗,棄去;采用3.0ml甲醇洗脫,洗脫液于40℃下氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)皿w積比為1:3的乙腈-水溶液1.0 mL溶解,過濾,取濾液待測(cè)。

以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱;在上述濾液中加入體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL。以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素等組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素代謝組分的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè),得到肌肉中F-2毒素及代謝組分分析譜圖(圖2)。

實(shí)施例3:

取1g均質(zhì)的豬肝臟樣品,均勻攪碎,置放于10 mL離心管中,加入2.0 mL乙酸鈉溶液、3.0 mL無水乙醚,4000r/min離心10min,上清液轉(zhuǎn)移到另一離心管中;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈?;殘?jiān)?.5mL三氯甲烷溶解,超聲2min,加入1.5mL 0.5mol/L的氫氧化鈉溶液,4000r/min離心10min,轉(zhuǎn)移上清液;重復(fù)提取一次;合并提取液,40℃下氮?dú)獯蹈?,得固體備用。

在上述固體中加入體積比1:4的磷酸-水溶液0.5mL,混勻后轉(zhuǎn)入PEP固相萃取柱中,先用1.0 mL水淋洗,棄去;采用3.0ml甲醇洗脫,洗脫液于40℃下氮?dú)獯蹈桑瑲堅(jiān)皿w積比為1:3的乙腈-水溶液1.0 mL溶解,過濾,取濾液待測(cè)。

以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱;在上述濾液中加入體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL。以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素等組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素代謝組分的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè),得到肝臟中F-2毒素及代謝組分分析譜圖(圖3)。

實(shí)施例4:

取 1.0 mL 血清于 10 mL 離心管中,加入 5.0 mL 乙酸乙酯,渦旋混勻 5min,3000r/min 離心 10 min 取上清液于 10 mL 玻璃離心管中,剩余殘?jiān)?4.0 mL 乙酸乙酯分兩次清洗,洗液轉(zhuǎn)入玻璃離心管中,40℃水浴氮?dú)獯蹈?,殘?jiān)?1.0 mL 流動(dòng)相溶解,3000 r/min 離心 10min,取上清液過濾,濾液待測(cè)。

以十八烷基鍵合硅膠顆粒填充柱為分離柱;在上述濾液中加入體積比1:3的乙腈-水混合溶液配制樣品,在柱連續(xù)進(jìn)樣200μL。以甲醇、乙腈、水三元混合溶液為流動(dòng)相,以流速為1.0 mL/min進(jìn)行恒流等度洗脫;采用熒光檢測(cè)方式,激發(fā)波長為274 nm、發(fā)射波長為440 nm,在線測(cè)定β-玉米赤霉烯醇、F-2毒素等組分,實(shí)現(xiàn)對(duì)痕量F-2毒素代謝組分的色譜等度洗脫-熒光檢測(cè)(圖4)。

以上所述僅為本發(fā)明的較佳實(shí)施例,凡依本發(fā)明申請(qǐng)專利范圍所做的均等變化與修飾,皆應(yīng)屬本發(fā)明的涵蓋范圍。

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