本發(fā)明涉及植物分子生物學(xué)檢測(cè)領(lǐng)域,具體地說,涉及一種基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)的油菜檢測(cè)方法。
背景技術(shù):
HmgI/Y基因?yàn)橛筒吮旧砉逃谢?。利用油菜本身固有的基因HmgI/Y作為參照指示基因的檢測(cè)方法,主要集中在普通的定性及定量PCR方法和標(biāo)準(zhǔn),尚無關(guān)于檢測(cè)油菜特定基因位點(diǎn)的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光檢測(cè)技術(shù)的相關(guān)報(bào)道。
環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(Loop-mediated isothermal amplification method,LAMP)是Notomi等,于2000年發(fā)明的一種新型的恒溫核酸擴(kuò)增方法,其特點(diǎn)是針對(duì)靶基因的6個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)4-6條特異性引物,利用一種具有鏈置換活性的DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)在等溫條件下(60-65℃)反應(yīng),在1h內(nèi)即可完成核酸擴(kuò)增反應(yīng),目的片段可以擴(kuò)增109倍。該方法具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、擴(kuò)增效率高、省時(shí)、操作簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn),在核酸檢測(cè)方面具有明顯優(yōu)勢(shì)。目前環(huán)介導(dǎo)等溫檢測(cè)技術(shù)的產(chǎn)物檢測(cè)方法主要有濁度法、染料法、電泳法以及核酸試紙條,但是這些方法都容易引起交叉污染。
核酶是一種具有類過氧化物酶活性、富含鳥嘌呤的單鏈DNA分子,在特定的條件下能夠折疊成G4重結(jié)構(gòu),在H2O2存在下能夠催化無色底物2,2′-連氮基-雙-(3-乙基并二氫噻唑啉-6-磺酸)二價(jià)陰離子(ABTS2-)氧化成藍(lán)綠色物質(zhì)ABTS-·自由基。當(dāng)存在單鏈DNA分子的互補(bǔ)鏈時(shí),這種類過氧化物酶的活性降低甚至消失。將折中顯色/消光技術(shù)結(jié)合到環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)上,利用引物顯色,產(chǎn)物消光的手段,來驗(yàn)證目的片段的存在。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是提供一套用于檢測(cè)油菜的LAMP引物組合以及含有該引物組合的試劑盒。
本發(fā)明的另一目的是提供一種基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)的油菜檢測(cè)方法。
為了實(shí)現(xiàn)本發(fā)明目的,本發(fā)明首先提供一套用于檢測(cè)油菜的LAMP引物組合,所述引物組合根據(jù)油菜的外源基因--抗草甘膦基因Epsps設(shè)計(jì),包括(Seq ID No:1-4):
外側(cè)正向引物HmgI/Y-F3:5’-CTGGGAGGGAGGGAGGGCTAAGGCGAAAGGACCTTCC-3’;
外側(cè)反向引物HmgI/Y-B3:5’-CTGGGAGGGAGGGAGGGGCACCATCGCAGGCTTC-3’;以及
內(nèi)側(cè)正向引物HmgI/Y-FIP:5’-TTCGGCGGTCGTCCACGTGCTGGGAGGGAGGGAGGGTCGGAGGTGGAGACGAAAGT-3’;
內(nèi)側(cè)反向引物HmgI/Y-BIP:5’-CAGAAGACGGAATCCGAGGCGGCTGGGAGGGAGGGAGGGGCCCTCTCCGCTCCCCAGCC-3’。
本發(fā)明還提供含有上述LAMP引物組合用于檢測(cè)油菜的試劑盒。所述試劑盒還包括dNTPs、Bst DNA聚合酶、甜菜堿、ABTS顯色液、hemin工作液、H2O2溶液(優(yōu)選30%H2O2溶液)、Thermopol緩沖液、標(biāo)準(zhǔn)陽性模板等中的至少一種。
其中,所述ABTS顯色液的濃度為36mM,配制溶劑為1×DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配。
所述hemin工作液的組成如下:50μM hemin、10mM NaH2PO4、100mM KCl、2mM MgCl2和0.003%Triton X-100。
本發(fā)明中,Bst DNA聚合酶凍干在PCR管內(nèi)底部,于-20℃保存。dNTPs、ABTS顯色液、hemin工作液、ABTS粉劑、DMSO緩沖液、30%H2O2可常溫保存。反應(yīng)液需4℃保存。
本發(fā)明還提供所述LAMP引物組合或所述試劑盒在檢測(cè)油菜中的應(yīng)用。
本發(fā)明進(jìn)一步提供一種基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)的油菜檢測(cè)方法,包括以下步驟:
1)采集油菜籽,將樣品在液氮中研磨成粉末,稱100mg±10mg樣品,用CTAB法提取基因組,作為DNA模板;
2)顯色反應(yīng),并通過肉眼觀察反應(yīng)混合液的顏色,或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定反應(yīng)混合液在419nm處的OD值:
3)以步驟1)中提取的DNA為模板,利用所述LAMP引物組合,進(jìn)行環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng):
4)分析擴(kuò)增產(chǎn)物。
步驟1)可采用CTAB法提取待測(cè)樣品中的DNA。
步驟2)具體為:將hemin工作液與所述LAMP引物組合混合,35-45℃孵育20-30min,然后添加ABTS顯色液和H2O2,立即用肉眼觀察顏色或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定OD419nm值;
顯色反應(yīng)的反應(yīng)體系為:40-60μM hemin工作液90μL,10μM引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3各0.5μL,10μM引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP各3-4μL,30-40mM ABTS顯色液30μL,30%H2O2 1μL,用dd H2O補(bǔ)足至總體系130μL。
步驟3)具體為:向步驟2)顯色反應(yīng)所得混合液中添加16μL擴(kuò)增試劑,所述擴(kuò)增試劑包括1.8-3.0mM dNTP、6-9mM MgSO4、1-2M甜菜堿、3.6-10.0U Bst DNA聚合酶、1×Thermopol緩沖液和2μL DNA模板,配制反應(yīng)體系,然后60-65℃孵育40-60min,80-85℃放置2-3分鐘,最后冰上終止反應(yīng)。
步驟4)具體為:目測(cè)判定反應(yīng)前后反應(yīng)混合液顏色變化,或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定步驟3)所得反應(yīng)混合液在419nm處的OD值;若顏色由反應(yīng)前的藍(lán)色變成淺藍(lán)色或無色,或者反應(yīng)后OD419nm值變小,表明待測(cè)樣品中含有油菜成分。
本發(fā)明的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng)在水浴鍋或金屬浴內(nèi)進(jìn)行。
本發(fā)明通過對(duì)影響環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)的因素(dNTPs、甜菜堿、引物、Mg2+、Bst DNA聚合酶、溫度、反應(yīng)時(shí)間等)進(jìn)行優(yōu)化,最終確定了最佳的反應(yīng)體系及反應(yīng)條件。
在本發(fā)明的一個(gè)具體實(shí)施方式中,基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)的油菜檢測(cè)方法包括以下步驟:
①采集油菜籽,將樣品在液氮中研磨成粉末,稱100mg±10mg樣品,用CTAB法提取基因組,作為DNA模板(例如將提取的基因組DNA稀釋至50ng/μL作為模板);
②顯色反應(yīng):將hemin工作液與LAMP引物組合混合,40℃孵育30min,然后添加ABTS顯色液和H2O2,立即用肉眼觀察顏色或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定OD419nm值;
顯色反應(yīng)的反應(yīng)體系為:50μM hemin工作液90μL,10μM引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3各0.5μL,10μM引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP各4μL,36mM ABTS顯色液30μL,30%H2O2 1μL,用dd H2O補(bǔ)足至總體系130μL;
③環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng):向步驟②顯色反應(yīng)所得混合液中添加16μL擴(kuò)增試劑,所述擴(kuò)增試劑包括2.5mM dNTP、7.8mM MgSO4、1.6M甜菜堿、8.0U Bst DNA聚合酶、1×Thermopol緩沖液和2μL DNA模板,配制反應(yīng)體系,然后65℃孵育40min,85℃放置3分鐘,最后冰上終止反應(yīng);
④目測(cè)判定反應(yīng)前后反應(yīng)混合液顏色變化,或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定步驟③所得反應(yīng)混合液在419nm處的OD值;若顏色由反應(yīng)前的藍(lán)色變成淺藍(lán)色或無色,或者反應(yīng)后OD419nm值變小,表明待測(cè)樣品中含有油菜成分。
本發(fā)明利用環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)檢測(cè)油菜具有以下優(yōu)點(diǎn):
(一)反應(yīng)快速,一般情況下在15-30min即可有大量的擴(kuò)增產(chǎn)物產(chǎn)生,為了保證檢測(cè)準(zhǔn)確度,本發(fā)明優(yōu)選反應(yīng)時(shí)長(zhǎng)為40min,在此時(shí)間內(nèi)即可將模板擴(kuò)增109倍,該方法操作簡(jiǎn)便,適于核酸分子的快速檢測(cè)。
(二)特異性好,該方法對(duì)靶基因的6個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)引物,引物具有更高的特異性。
(三)靈敏度高,該方法反應(yīng)速度快,對(duì)于痕量目的基因可以達(dá)到很好的檢測(cè)效果,靈敏度比PCR方法高1~2個(gè)數(shù)量級(jí),該技術(shù)為油菜成分的監(jiān)測(cè)提供了技術(shù)支持。
(四)操作簡(jiǎn)單,適于基層使用。本發(fā)明開發(fā)設(shè)計(jì)出檢測(cè)油菜的試劑盒,操作簡(jiǎn)單,不需要專業(yè)人員操作,結(jié)果易于觀察,可供基層檢測(cè)使用。
附圖說明
圖1為本發(fā)明實(shí)施例2中環(huán)介導(dǎo)等溫消光擴(kuò)增反應(yīng)電泳結(jié)果;其中,泳道1為非轉(zhuǎn)基因油菜陽性擴(kuò)增,泳道2為轉(zhuǎn)基因油菜陽性擴(kuò)增,泳道3為陰性擴(kuò)增,M為D2000maker。
具體實(shí)施方式
以下實(shí)施例用于說明本發(fā)明,但不用來限制本發(fā)明的范圍。若未特別指明,實(shí)施例均按照常規(guī)實(shí)驗(yàn)條件,如Sambrook等分子克隆實(shí)驗(yàn)手冊(cè)(Sambrook J&Russell DW,Molecular Cloning:a Laboratory Manual,2001),或按照制造廠商說明書建議的條件。
實(shí)施例1用于檢測(cè)油菜的LAMP引物的設(shè)計(jì)與合成
通過日本榮巖株式會(huì)社環(huán)介導(dǎo)引物在線設(shè)計(jì)軟件PrimerExplorerV5(https://primerexplorer.jp/lampv5/index.html)針對(duì)油菜內(nèi)參基因HmgI/Y的部分區(qū)域(Seq ID No:5)設(shè)計(jì)引物,引物由上海英濰捷基有限公司合成,將引物稀釋至10μmol/L。引物序列如下:
外側(cè)正向引物HmgI/Y-F3:5’-CTGGGAGGGAGGGAGGGCTAAGGCGAAAGGACCTTCC-3’;
外側(cè)反向引物HmgI/Y-B3:5’-CTGGGAGGGAGGGAGGGGCACCATCGCAGGCTTC-3’;以及
內(nèi)側(cè)正向引物HmgI/Y-FIP:5’-TTCGGCGGTCGTCCACGTGCTGGGAGGGAGGGAGGGTCGGAGGTGGAGACGAAAGT-3’;
內(nèi)側(cè)反向引物HmgI/Y-BIP:5’-CAGAAGACGGAATCCGAGGCGGCTGGGAGGGAGGGAGGGGCCCTCTCCGCTCCCCAGCC-3’。
與普通LAMP引物相比,本發(fā)明的內(nèi)側(cè)引物由兩條引物以及DNAzyme序列構(gòu)成,要求F1c與F2之間不超過35bp,同理B1與B2c之間不超過35bp,否則,內(nèi)側(cè)引物則無法折疊成啞鈴狀結(jié)構(gòu)。
其中,外側(cè)正向引物HmgI/Y-F3與Seq ID No:5上的第459-478位堿基相匹配,外側(cè)反向引物HmgI/Y-B3與Seq ID No:5上的第640-656位堿基相匹配,內(nèi)側(cè)正向引物HmgI/Y-FIP分別與Seq ID No:5上的第479-498位堿基以及第525-543位堿基相匹配,內(nèi)側(cè)反向引物HmgI/Y-BIP分別與Seq ID No:5上的第548-569位堿基以及第601-620位堿基相匹配。
實(shí)施例2基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)檢測(cè)油菜的方法
1、實(shí)驗(yàn)方法
①采集油菜籽,將樣品在液氮中研磨成粉末,稱100mg±10mg樣品,用CTAB法提取基因組,作為DNA模板,將模板稀釋至50ng/μL;
②顯色反應(yīng):將hemin工作液與實(shí)施例1的LAMP引物組合混合,40℃孵育30min,然后添加ABTS顯色液和H2O2,立即用肉眼觀察顏色或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定OD419nm值;
顯色反應(yīng)的反應(yīng)體系為:50μM hemin工作液90μL,10μM引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3各0.5μL,10μM引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP各4μL,36mM ABTS顯色液30μL,30%H2O2 1μL,用dd H2O補(bǔ)足至總體系130μL;其中,配制ABTS顯色液的溶劑為1×DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配;所述hemin工作液的組成如下:50μM hemin、10mM NaH2PO4、100mM KCl、2mM MgCl2和0.003%Triton X-100;
③環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng):向步驟②顯色反應(yīng)所得混合液中添加16μL擴(kuò)增試劑,所述擴(kuò)增試劑包括2.5mM dNTP、7.8mM MgSO4、1.6M甜菜堿、8.0U Bst DNA聚合酶、1×Thermopol緩沖液和2μL DNA模板,配制反應(yīng)體系,然后65℃水浴鍋中孵育40min,85℃放置3分鐘,最后冰上終止反應(yīng);
④目測(cè)判定反應(yīng)前后反應(yīng)混合液顏色變化,或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定步驟③所得反應(yīng)混合液在419nm處的OD值;若顏色由反應(yīng)前的藍(lán)色變成淺藍(lán)色或無色,或者反應(yīng)后OD419nm值變小,表明待測(cè)樣品中含有油菜成分。
2、實(shí)驗(yàn)結(jié)果
顯色反應(yīng)液呈藍(lán)色,OD419nm值為0.71546,擴(kuò)增后反應(yīng)液接近無色,OD419nm值為0.10268,陰性對(duì)照(模板用ddH2O代替)反應(yīng)液呈藍(lán)色,OD419nm值為0.69387,由此判定樣品中含有油菜成分。
經(jīng)過上述環(huán)介導(dǎo)等溫消光擴(kuò)增,得到的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果如圖1所示,非轉(zhuǎn)基因油菜和轉(zhuǎn)基因油菜(例如轉(zhuǎn)基因油菜GT73)表現(xiàn)出典型的LAMP-PCR產(chǎn)物條帶。該結(jié)果表明本發(fā)明引物組合的特異性強(qiáng),且可直接用于油菜的檢測(cè)。
實(shí)施例3環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng)體系及反應(yīng)條件的優(yōu)化
為保證顯色體系最佳,本發(fā)明對(duì)下述各反應(yīng)因素進(jìn)行優(yōu)化。
1.顯色時(shí)間的優(yōu)化
配制試劑:10μM引物HmgI/Y-F3、HmgI/Y-B3、HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,40μM hemin工作液,30mM ABTS顯色液,30%H2O2。
實(shí)驗(yàn)方法:向90μL hemin工作液,添加0.5μL引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3以及4μL引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,35℃孵育20min。然后再添加30μL ABTS顯色液和1μL H2O2,利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定所得反應(yīng)混合液在0s、30s、1min、2min、5min、10min、30min的OD419nm值。陰性對(duì)照不添加引物,用ddH2O替代。根據(jù)表1結(jié)果可知,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),陽性和陰性的顯色都會(huì)顯著增加,通過陽性和陰性的比值發(fā)現(xiàn),測(cè)量時(shí)間越早越好,本發(fā)明采用顯色后立即測(cè)定OD值。
表1不同顯色時(shí)間下的顯色結(jié)果
2.孵育溫度和時(shí)間的優(yōu)化
配制試劑:10μM引物HmgI/Y-F3、HmgI/Y-B3、HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,40μM hemin工作液,30mM ABTS顯色液,30%H2O2。
實(shí)驗(yàn)方法:陽性反應(yīng)(+)向90μL hemin工作液,添加0.5μL引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3以及4μL引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,35-45℃孵育20-30min。然后再添加30μL ABTS顯色液和1μL H2O2,利用紫外分光光度計(jì)立即測(cè)定所得反應(yīng)混合液的OD419nm值。陰性對(duì)照(-)不添加引物,用ddH2O替代。根據(jù)表2結(jié)果可知,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),陽性和陰性的顯色都會(huì)逐漸增加,通過陽性和陰性的比值發(fā)現(xiàn),后期結(jié)果差異不大,本發(fā)明采用的孵育條件為40℃,30min。
表2不同孵育溫度及時(shí)間下的顯色結(jié)果(OD419nm值)
3.濃度的優(yōu)化
配制試劑:10μM引物HmgI/Y-F3、HmgI/Y-B3、HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,40-50μM hemin工作液,30-40mM ABTS顯色液,30%H2O2。
實(shí)驗(yàn)方法:向90μL hemin工作液,添加0.5μL引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3以及4μL引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP,40℃孵育30min。然后再添加30μL ABTS顯色液和1μL H2O2,利用紫外分光光度計(jì)立即測(cè)定所得反應(yīng)混合液的OD419nm值。陰性對(duì)照不添加引物,用ddH2O替代。根據(jù)表3結(jié)果可知,隨著hemin濃度的增加,陽性(+)的顯色都會(huì)逐漸增加,這是由于與核酶結(jié)合的量增加了;隨著ABTS濃度的增加,陽性的顯色逐漸增加,但是陰性(-)的顯色也會(huì)逐漸增加,這是由于顯色底物本身的顏色增加了,背景值的增加造成陽性和陰性的比值下降,本發(fā)明采用的孵育條件為hemin濃度50μM,ABTS濃度36mM。
表3不同hemin工作液及ABTS顯色液的顯色結(jié)果(OD419nm值)
實(shí)施例4基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光技術(shù)檢測(cè)油菜與普通PCR方法的比較
1、實(shí)驗(yàn)方法
①將樣品磨成粉末,稱100mg±10mg樣品,用CTAB法提取基因組,作為DNA模板,模板濃度稀釋到50ng/μL,然后按10倍稀釋至0.005pg/μL;
②顯色反應(yīng):將hemin工作液與實(shí)施例1的LAMP引物組合混合,40℃孵育30min,然后添加ABTS顯色液和H2O2,立即用肉眼觀察顏色或利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定OD419nm值;
顯色反應(yīng)的反應(yīng)體系為:50μM hemin工作液90μL,10μM引物HmgI/Y-F3和HmgI/Y-B3各0.5μL,10μM引物HmgI/Y-FIP和HmgI/Y-BIP各4μL,36mM ABTS顯色液30μL,30%H2O2 1μL,以dd H2O配制;
③環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增消光反應(yīng):向步驟②顯色反應(yīng)所得混合液130μL中添加16μL擴(kuò)增試劑,包括2.5mM dNTP、7.8mM MgSO4、1.6M甜菜堿、8.0U Bst DNA聚合酶、1×Thermopol緩沖液和2μL DNA模板,配制反應(yīng)體系,然后65℃水浴鍋中孵育40min,85℃放置3分鐘,最后冰上終止反應(yīng);
④利用紫外分光光度計(jì)測(cè)定步驟③所得反應(yīng)混合液在419nm處的OD值;若反應(yīng)后OD419nm值變小,表明待測(cè)樣品中含有水稻HmgI/Y成分。
2、實(shí)驗(yàn)結(jié)果
根據(jù)表4結(jié)果可知,實(shí)驗(yàn)組OD419nm值隨著基因組濃度的增加而降低,陰性對(duì)照OD419nm值與原OD值基本一致,為保證結(jié)果的準(zhǔn)確性,我們認(rèn)定陽性O(shè)D419nm/陰性O(shè)D419nm的值大于2的情況下證明有擴(kuò)增,由此判定本方法的最低檢測(cè)限為1pg,約1拷貝。根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道(Weng H,Yang L,Liu Z,et al.Novel reference gene,high-mobility-group protein I/Y,used in qualitative and real-time quantitative polymerase chain reaction detection of transgenic rapeseed cultivars[J].Journal of AOAC International,2005,88(2):577-584.),HmgI/Y基因可以作為油菜的內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因,用于轉(zhuǎn)基因油菜的對(duì)照檢測(cè),PCR方法檢測(cè)油菜的靈敏度為13pg,約為10拷貝。
表4不同DNA模板濃度下的顯色結(jié)果
雖然,上文中已經(jīng)用一般性說明及具體實(shí)施方案對(duì)本發(fā)明作了詳盡的描述,但在本發(fā)明基礎(chǔ)上,可以對(duì)之作一些修改或改進(jìn),這對(duì)本領(lǐng)域技術(shù)人員而言是顯而易見的。因此,在不偏離本發(fā)明精神的基礎(chǔ)上所做的這些修改或改進(jìn),均屬于本發(fā)明要求保護(hù)的范圍。