專利名稱:釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明涉及生物工程技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法。
背景技術(shù):
共軛亞油酸(Conjugated linoleic acid,以下簡稱CLA)是含有順式或反式共軛雙鍵的十八碳二烯酸,是必需脂肪酸亞油酸(Linoleic acid,以下簡稱LA)衍生而成的一組位置和構(gòu)象異構(gòu)體的總稱。許多微生物能利用自身的亞油酸異構(gòu)酶將亞油酸轉(zhuǎn)化成共軛亞油酸。但目前應(yīng)用的亞油酸異構(gòu)酶主要存在以下問題酶的重組表達方式一般是細胞內(nèi)表達和分泌表達,細胞內(nèi)表達時由于酶不能與細胞外底物接觸,從而極大地影響酶的催化效率,而且酶分子集聚在細胞內(nèi)形成反饋抑制,也影響表達效率;分泌表達的主要缺點是表達效率不高,而且也不能實現(xiàn)完全分泌表達,總有相當(dāng)一部分表達產(chǎn)物滯留于細胞內(nèi),從而也不能實現(xiàn)酶與細胞外底物的完全接觸。這兩種表達方式都導(dǎo)致酶的催化效率不高。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明提供一種用釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法,將亞油酸異構(gòu)酶展示在細胞壁上,可以直接接觸到底物,進而提高共軛亞油酸的轉(zhuǎn)化效率。一種釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法,包括將釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶加入到含有亞油酸的緩沖液中,振蕩反應(yīng);所述的釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶通過如下方法制備將攜帶重組質(zhì)粒的釀酒酵母K601,接種到Y(jié)PG培養(yǎng)基中,誘導(dǎo)培養(yǎng),離心收集菌體,洗滌,得到釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶;所述的重組質(zhì)粒包括原始載體pYES2和插入原始載體PYES2的目的基因,所述目的基因由依次連接的Mf α 1信號肽基因、亞油酸異構(gòu)酶基因、釀酒酵母α-凝集素基因C端錨定區(qū)基因組成,所述的Mf α 1信號肽基因插入到原始載體pYES2中GALl啟動子的下游。所述的亞油酸異構(gòu)酶基因Iai來源于植物乳桿菌(LactcAacillusplantarum) 1ρ15-2-1,其保藏號為CGMCC No. 3782,該菌株的分離、純化及鑒定方法已在中國專利申請 201010251108. X 中公開,GenBank 號為 HQ831447,堿基序列如 SEQ ID NO 1 所示;Mf α 1 酵母信號肽基因來自釀酒酵母,GenBank號為YPL187,堿基序列如SEQ ID NO 3 ;酵母α -凝集素C端錨定區(qū)基因sag的GenBank號為YJR004C,堿基序列如SEQ IDNO 2所示。所述的釀酒酵母K601為標(biāo)準試驗菌株,它可以商業(yè)購買或從保藏機構(gòu)獲得。所述的緩沖液為磷酸緩沖液。所述的緩沖液中亞油酸的濃度為3mg/ml。所述的振蕩反應(yīng)溫度為28 32°C。所述的振蕩反應(yīng)時間為6 80h。本發(fā)明通過將亞油酸異構(gòu)酶基因插入到載體pYES2中,導(dǎo)入到釀酒酵母K601中,攜帶重組質(zhì)粒的釀酒酵母K601經(jīng)誘導(dǎo)培養(yǎng)后,亞油酸異構(gòu)酶通過Mf α 1酵母信號肽分泌到細胞外,并利用亞油酸異構(gòu)酶下游的凝集素錨定蛋白錨定在釀酒酵母細胞壁上,使亞油酸異構(gòu)酶展示表達在釀酒酵母細胞外表面,直接與底物亞油酸接觸,提高共軛亞油酸的轉(zhuǎn)化效率,降低生成成本。
圖1是酵母細胞壁展示表達載體的結(jié)構(gòu)示意圖。圖2是PCR鑒定酵母轉(zhuǎn)化子的電泳結(jié)果圖。圖3是酵母細胞表面展示亞油酸異構(gòu)酶酶活測定圖。圖4酵母細胞表面展示亞油酸異構(gòu)酶轉(zhuǎn)化合成CLA的氣相色譜圖;A 陰性對照菌株(轉(zhuǎn)有空載體pYES》轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的氣相色譜圖;B:重組酵母菌菌株轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的氣相色譜圖;C :LA和CLA甲酯標(biāo)樣的氣相色譜圖,其中1為LA ;2為c9tlI-CLA ;3為tl0cl2_CLA。
具體實施例方式實施例1酵母展示重組質(zhì)粒的構(gòu)建分別以植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum) 1ρ15_2_1和釀酒酵母K601基因組DNA為模板,利用表1中的引物,進行PCR擴增,PCR反應(yīng)體系為10XPCR buffer(含 Mg2+)5y L,dNTPs(25mM)4y L,引物 1 禾口弓丨物 2 (10 μ Μ)各 1 μ L,基因組 DNA 1 μ g,ExTaqDNA 聚合酶1U,加無菌超純水至終體積50 μ L ;PCR反應(yīng)條件為94°C預(yù)變性5min ;94°C變性 30s,48°C退火30s (基因mf α 1) /50°C退火40s (亞油酸異構(gòu)酶基因Iai和酵母α -凝集素 C端含321aa的錨定區(qū)基因sag),72°C延伸lmin,反應(yīng)30個循環(huán);72°C延伸5min。得到信號肽基因mf al (SEQ ID NO :3)、亞油酸異構(gòu)酶基因Iai (SEQ ID NO=D和酵母α -凝集素 C端含321氨基酸的錨定區(qū)基因sag (SEQ ID NO 2)。表1所用引物序列
j丨物引物序列(下劃線部分為酶切位點)引物用途及酶切位點
MFa 1-5'CGAAGCTTATGAGATTTCCTTCAATTTTTACTGC擴增酵母信號肽 (/Λ>ζ(1ΙΙΙ )
MFa 1-3'CGGAATTCAGCTTCAGCCTCTCTTTTATCC擴增酵母信號肽 (EcoR I )SAGl-5,CGCTCGAGAGCGCCAAAAGCTCTTTTATC擴增酵母凝集素基因 sag (Λ7ζο I ) SAG 1-3'CGTCTAGATTAGAATAGCAGGTACGACAAAAGCAG擴增酵母凝集素基因 sag (J a I ) LAI-5,CGGAATTCATGGTTAAAAGTAAAGCAATTATGATTG擴增/α,·基因(£coRI )
LAI-3 ‘ CGCTCGAGGTCAAACATCTTCTTAGTTG_擴增 fa,·基因(Ζ/ζο I )_將PCR產(chǎn)物與克隆載體pMD 18_T simple (pMDS)連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5 α感受態(tài)細胞,得到質(zhì)粒pMDS-lai、pMDS-mf a 1和pMDS-sag。首先用HindIII和EcoR I雙酶切質(zhì)粒pMDS-mf α 1和空載體pYES2,回收基因片段mf α 1和載體pYES2并連接,構(gòu)建 pYES2-mf α 1 (ρYM)載體;再用EcoR I和Xho I雙酶切質(zhì)粒pMDS-lai和ρYM,回收Iai基因片段并將之插入載體PYM中,構(gòu)建pYES2-mf α 1-lai (pYML)載體;最后用Β ο I和)(baI 雙酶切質(zhì)粒pMDS-sag和pYML,回收基因片段sag和載體pYML并連接,構(gòu)建酵母展示表達載體pYES2-mf α 1-lai-sag (pYMLS)。結(jié)果如圖1所示,從N端到C端為GALl啟動子 +mf α l+lsii+sEig。實施例2重組酵母的獲得及篩選SD(尿嘧啶缺失型)固體篩選培養(yǎng)基(g/L) :SD+2%瓊脂粉
SD培養(yǎng)基成分(g/L) :16. 8g酵母氮源;0. 77g尿嘧啶缺失型氨基酸;2g半乳糖。載體pYES2上有URA基因,重組酵母菌能夠在缺失尿嘧啶的培養(yǎng)基上生長,因此選用SD固體篩選培養(yǎng)基篩選轉(zhuǎn)化子。將上述重組質(zhì)粒通過電擊法轉(zhuǎn)化到釀酒酵母細胞K601中,用Bio-Rad的基因電擊轉(zhuǎn)化儀(BTX),將電擊杯轉(zhuǎn)入電擊座中,進行電擊轉(zhuǎn)化,條件為電壓為1.5KV;電容25yF; 電阻200 Ω ;電擊時間k ;然后在SD固體篩選培養(yǎng)基上倒置培養(yǎng),30°C、培養(yǎng)48h,篩選得到轉(zhuǎn)化子;最后對獲得的轉(zhuǎn)化子進行亞油酸異構(gòu)酶基因的PCR擴增鑒定,結(jié)果如圖2所示,與陰性對照菌株(CK)相比,重組酵母菌菌株均能擴增出約1700bp的條帶,說明質(zhì)粒pYMLS已經(jīng)成功轉(zhuǎn)入到釀酒酵母K601中。實施例3重組酵母酶活測定及轉(zhuǎn)化產(chǎn)物分析YPG誘導(dǎo)培養(yǎng)基成分(g/L) :10g蛋白胨;5g酵母膏;IOg半乳糖。將上述獲得的重組酵母菌接種到Y(jié)PG誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,30°C培養(yǎng)4 后,離心 (3000r/min, IOmin,)收集菌體細胞,將收集的菌體細胞經(jīng)生理鹽水(0.9% ν/ν)洗滌兩次后,加入到含有3mg/ml亞油酸的磷酸緩沖液中(0. lmol/1, pH7. 0) ;30°C,180rpm條件下進行轉(zhuǎn)化反應(yīng),每隔6小時取樣測定亞油酸異構(gòu)酶的酶活,以攜帶空載體PYES2的酵母菌菌體細胞的轉(zhuǎn)化產(chǎn)物為對照,結(jié)果如圖3所示,由圖可知隨著培養(yǎng)時間的增加,重組酵母菌菌體細胞的酶活逐漸增加,在20h時達到最大,為40. 5U/ml,之后逐漸下降;而攜帶空載體pYES2 的酵母菌體細胞基本檢測不到亞油酸異構(gòu)酶酶活。將上述重組酵母菌的轉(zhuǎn)化20h時產(chǎn)物經(jīng)兩倍體積正己烷提取后,用氣相色譜檢測,如圖4所示,圖中A:陰性對照菌株(轉(zhuǎn)有空載體pYES2)轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的氣相色譜圖;B:重組酵母菌菌株轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的氣相色譜圖;C =LA和CLA甲酯標(biāo)樣的氣相色譜圖,其中1為LA ;2 為 c9tIl-CLA ;3 為 tl0cl2-CLA。LA和CLA甲酯標(biāo)樣的檢測表明LA的出峰時間為30. 46min,而CLA中的兩種異構(gòu)體c9t 11-CLA和t IOc 12-CLA得到了較好的分離,其保留時間分別為32. 62min和 32. 83min (圖4C);利用氣相色譜分析法分別對對照菌株和重組酵母菌菌株細胞合成的CLA 產(chǎn)物進行分析,結(jié)果如圖4中A和B。通過與圖4C中LA和CLA甲酯標(biāo)樣的保留時間比對, 轉(zhuǎn)有空載體PYES2的陰性對照菌株培養(yǎng)液催化LA后其產(chǎn)物中并沒有明顯的CLA產(chǎn)生(圖 4A);而含有酵母展示表達載體pYMLS的釀酒酵母工程菌株培養(yǎng)液催化LA后產(chǎn)物在保留時間為30. 28和32. 45min時出現(xiàn)典型峰(圖4B),比對圖4C中LA和CLA甲酯標(biāo)樣的保留時間得知,二者分別為LA和c9tlI-CLA0且剩余LA的峰面積為15682. 3,c9tIl-CLA的峰面積為5800. 3,不考慮產(chǎn)物提取及甲酯化過程中的LA損失,則約有27. 0%的LA轉(zhuǎn)化合成了 c9tll-CLA。
權(quán)利要求
1.一種釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法,包括將釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶加入到含有亞油酸的pH6. 0-7. 0的緩沖液中,振蕩反應(yīng);所述的釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶通過如下方法制備將攜帶重組質(zhì)粒的釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae) K601,接種到Y(jié)PG培養(yǎng)基中, 誘導(dǎo)培養(yǎng),離心收集菌體,洗滌,得到釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶;所述的重組質(zhì)粒包括原始載體PYES2和插入原始載體pYES2的目的基因,所述目的基因由依次連接的Mf α 1信號肽基因、亞油酸異構(gòu)酶基因、酵母α -凝集素C端錨定區(qū)基因組成,所述的Mfa 1信號肽基因插入到原始載體PYES2中GALl啟動子的下游。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的亞油酸異構(gòu)酶基因堿基序列如SEQ ID NO 1 所示。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的酵母α-凝集素C端錨定區(qū)基因堿基序列如SEQ ID NO 2所示。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的Mfα 1信號肽基因堿基序列如SEQ ID NO 3 所示。
5.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的緩沖液為磷酸緩沖液。
6.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的緩沖液中亞油酸的濃度為:3mg/ml。
7.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的振蕩反應(yīng)的溫度為^_32°C。
8.根據(jù)權(quán)利要求1所述的方法,其特征在于所述的振蕩反應(yīng)時間為6 80h。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催化合成共軛亞油酸的方法,將含有重組質(zhì)粒的釀酒酵母K601,接種到Y(jié)PG培養(yǎng)基中,誘導(dǎo)培養(yǎng),收集菌體,洗滌,得到釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶催;然后將得到的釀酒酵母展示亞油酸異構(gòu)酶加入到含有亞油酸的緩沖液中,振蕩反應(yīng)。本發(fā)明將亞油酸異構(gòu)酶展示表達在釀酒酵母細胞外表面,直接與底物亞油酸接觸,提高共軛亞油酸的轉(zhuǎn)化效率,降低生成成本。
文檔編號C12R1/865GK102206688SQ201110106809
公開日2011年10月5日 申請日期2011年4月27日 優(yōu)先權(quán)日2011年4月27日
發(fā)明者何國慶, 劉佩, 周倩, 阮暉 申請人:浙江大學(xué)