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溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基及制備方法與流程

文檔序號:11672698閱讀:359來源:國知局
溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基及制備方法與流程

本發(fā)明涉及微生物分離培養(yǎng)技術領域,尤其涉及溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基及制備方法。



背景技術:

昆蟲流行病害的發(fā)生需要具備三個重要因子:昆蟲、病原微生物以及適宜的環(huán)境條件,三者相互影響、相互制約。昆蟲疾病的流行主要取決于病原微生物的致病力、生存能力及感染力以及適宜的氣候條件,同時寄主昆蟲的種類、密度、抗病力也是主要影響因子。目前,針對生防菌流行病的研究,主要通過釋放生防菌的孢子,在靶標害蟲種群中流行,以降低蟲口率。流行病發(fā)生以后,生防菌會以較低的濃度在寄主和土壤中宿存,當環(huán)境條件適宜時會再次引發(fā)流行病。這種流行病的復蘇一般是不規(guī)則的,具有偶然性。

玫煙色棒束孢(isariafumosorosea)是一種重要的蟲生真菌。分布廣泛,能寄生同翅目、半翅目、雙翅目、鞘翅目和膜翅目等多種有害昆蟲。玫煙色棒束孢的分生孢子形成于昆蟲體表,容易脫落,且數(shù)量多,重量輕,容易隨風傳播,侵染有害靶標生物,在害蟲種群中形成流行病,是一種優(yōu)良的生防菌。當蟲害發(fā)生時,可通過人工增殖、釋放玫煙色棒束孢分生孢子進行生防控制。而通過監(jiān)測生防區(qū)域空氣中分生孢子數(shù)量與擴散分布情況,對于生防菌防治的評價和指導害蟲防治都具有重要意義。

在時間和空間上進行生防菌群體動態(tài)的分析研究中。其中一個重要內(nèi)容是涉及空氣微生物的采集與分離方法。目前,主要包括兩大類:一是利用微生物采樣器進行采樣檢測,二是通過自然沉降采樣進行檢測。在實驗室條件下玫煙色棒束孢可通過接種的方法可以在許多培養(yǎng)基上培養(yǎng),但是在溫室條件下,由于與外界環(huán)境交流,并無特殊過濾設施,微生物種類多,需要對靶標真菌的分生孢子采集和分離方法進行研究與改進。特別是需要一種能采集和培養(yǎng)玫煙色棒束孢的選擇性培養(yǎng)基,以檢測空氣中玫煙色棒束孢分生孢子的擴散情況。目前用于監(jiān)測空氣中玫煙色棒束孢分生孢子的方法尚未見報道。



技術實現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的在于提供一種溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基及制備方法。本發(fā)明提供的培養(yǎng)基能夠?qū)崿F(xiàn)玫煙色棒束孢分生孢子的采集與快速分離,通過檢測平板上的靶標菌落數(shù)量,對溫室防治區(qū)域的玫煙色棒束孢分生孢子擴散情況和數(shù)量情況進行檢測與定量評估。具有分離快速、檢測效率高的特征,為害蟲防治策略的制定提供科學依據(jù)。

本發(fā)明提供了一種溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基,包括以下質(zhì)量百分含量的組分:馬鈴薯15~20%,蔗糖1.5~2.0%,25~100ug/ml氨芐青霉素,25~100ug/ml潮霉素b,瓊脂1.0~3.0%,和余量的蒸餾水,ph值為7.0~10.0。

本發(fā)明還提供了上述技術方案所述培養(yǎng)基的制備方法,包括以下步驟:

1)將馬鈴薯與蒸餾水混合,煮沸后過濾,得到馬鈴薯濾液;

2)將所述馬鈴薯濾液與蔗糖和瓊脂混合,滅菌;

3)當所述滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,加入氨芐青霉和潮霉素b,再調(diào)節(jié)ph值,得到采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基。

優(yōu)選的是,所述步驟1)中煮沸的時間為20~30min。

優(yōu)選的是,所述步驟1)中過濾為紗布過濾。

優(yōu)選的是,所述步驟2)中滅菌的溫度為121℃,滅菌的時間為30min。

本發(fā)明還提供了上述技術方案所述培養(yǎng)基或上述技術方案所述方法制備的培養(yǎng)基的使用方法,包括以下步驟:

將培養(yǎng)基裝入檢測容器中,在溫室空氣中暴露后,將檢測容器轉(zhuǎn)移至無菌、黑暗環(huán)境中進行培養(yǎng),分離得到玫煙色棒束孢菌落。

優(yōu)選的是,所述培養(yǎng)的溫度為28~32℃。

優(yōu)選的是,所述培養(yǎng)的時間為2~3d。

優(yōu)選的是,所述在溫室空氣中暴露的時間為30~60min。

本發(fā)明提供了一種檢測、分離玫煙色棒束孢分生孢子用培養(yǎng)基。本發(fā)明提供的培養(yǎng)基中的馬鈴薯,蔗糖構(gòu)成了玫煙色棒束孢生長的必需營養(yǎng)成份,氨芐青霉素添加能夠抑制細菌和放線菌的生長,而潮霉素b添加能夠抑制非靶標真菌菌落擴散,從而避免了某些氣生性強的霉菌菌落的蔓延。同時提供的偏堿性條件可有效抑制細菌的生長速度,而較高的培養(yǎng)溫度使目標菌株的分生孢子得到有效萌發(fā)和快速的生長。培養(yǎng)2d后即可通過肉眼觀測比對以及后續(xù)的分子標記方法對防治區(qū)玫煙色棒束孢分生孢子擴散和數(shù)量情況進行檢測與定量評估,具有分離快速、檢測效率高的特征,為害蟲防治策略的制定提供科學依據(jù)。

附圖說明

圖1為本發(fā)明比較例1提供的溫室大棚分生孢子分離情況結(jié)果圖;

圖2為本發(fā)明比較例1提供的檢測、分離玫煙色棒束孢分生孢子的培養(yǎng)基分生孢子生長情況結(jié)果圖;

圖3為本發(fā)明比較例1提供的馬鈴薯培養(yǎng)基條件下,fz-01菌株分生孢子生長情況結(jié)果圖;

圖4為本發(fā)明比較例2提供的不同培養(yǎng)基對fz-01菌絲生長影響對比結(jié)果圖;

圖5為本發(fā)明比較例2提供的fz-01菌株在不同培養(yǎng)基培養(yǎng)4d的菌絲生長長度對比結(jié)果圖;

圖6為本發(fā)明比較例2提供的馬鈴薯培養(yǎng)基培養(yǎng)4d的菌絲生長結(jié)果圖;

圖7為本發(fā)明比較例3提供的酸堿度對fz-01菌株菌絲生長影響對比圖;

圖8為本發(fā)明比較例3提供的潮霉素b對fz-01菌株菌絲生長影響結(jié)果圖。

具體實施方式

本發(fā)明提供了一種溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基,包括以下質(zhì)量百分含量的組分:馬鈴薯15~20%,蔗糖1.5~2.0%,25~100ug/ml氨芐青霉素,25~100ug/ml潮霉素b,瓊脂1.0~3.0%,和余量的蒸餾水,ph值為7.0~10.0。

本發(fā)明的培養(yǎng)基包括質(zhì)量百分含量為15~20%的馬鈴薯,更優(yōu)選為20%。在本發(fā)明中,所述馬鈴薯的作用是為玫煙色棒束孢生長提供必要的碳源、氮源和微量元素。本發(fā)明對所述馬鈴薯的來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的馬鈴薯的常規(guī)市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明的培養(yǎng)基包括質(zhì)量百分含量為1.5~2.0%的蔗糖,更優(yōu)選為1.6%。在本發(fā)明中,所述蔗糖的作用是為玫煙色棒束孢生長提供易于分解利用的碳源。本發(fā)明對所述蔗糖的來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的常規(guī)蔗糖的市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明的培養(yǎng)基包括質(zhì)量百分含量為25~100ug/ml的氨芐青霉素,更優(yōu)選為50ug/ml。在本發(fā)明中,所述氨芐青霉素的作用是抑制培養(yǎng)基中細菌和放線菌的生長。本發(fā)明對所述氨芐青霉素的來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的常規(guī)氨芐青霉素的市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明的培養(yǎng)基包括質(zhì)量百分含量為25~100ug/ml的潮霉素b,更優(yōu)選為100ug/ml。在本發(fā)明中,所述潮霉素b的作用是抑制真核和原核生物的多肽合成,能有效抑制非靶標真菌以及細菌生長。本發(fā)明對所述潮霉素b的來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的潮霉素b的市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明的培養(yǎng)基包括質(zhì)量百分含量為1.0~3.0%的瓊脂,更優(yōu)選為2.0%。在本發(fā)明中,所述瓊脂的作用是為培養(yǎng)基提供最好的固體劑,便于經(jīng)常觀察研究。本發(fā)明對所述瓊脂的來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的常規(guī)瓊脂的市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明提供的培養(yǎng)基還包括余量的蒸餾水。蒸餾水的采用本領域技術人員熟知的蒸餾水即可。

本發(fā)明提供的培養(yǎng)基的ph值優(yōu)選為7.0~10.0,更優(yōu)選為8.0。在本發(fā)明中,所述ph值調(diào)節(jié),采用化學酸堿試劑naoh和hcl溶液進行調(diào)節(jié),本發(fā)明對所述naoh和hcl來源沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的常規(guī)naoh和hcl市售產(chǎn)品即可。

本發(fā)明還提供了上述技術方案所述培養(yǎng)基的制備方法,包括以下步驟:

1)將馬鈴薯與蒸餾水混合,煮沸后過濾,得到馬鈴薯濾液;

2)將所述馬鈴薯濾液與蔗糖和瓊脂混合,滅菌;

3)當所述滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,與氨芐青霉和潮霉素b素混合,再調(diào)節(jié)ph值,得到檢測、分離玫煙色棒束孢分生孢子的培養(yǎng)基。

本發(fā)明將馬鈴薯與蒸餾水混合,煮沸后過濾,得到馬鈴薯濾液。在本發(fā)明中,所述煮沸的時間為20~30min,更優(yōu)選為25min。在本發(fā)明中,所述過濾為紗布過濾,更優(yōu)選為雙層紗布過濾。

得到馬鈴薯濾液后,本發(fā)明將所述馬鈴薯濾液與蔗糖和瓊脂混合,滅菌。在本發(fā)明中,所述滅菌的溫度為121℃,滅菌的時間為30min。

滅菌后,本發(fā)明優(yōu)選在滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,與氨芐青霉和潮霉素b素混合,后調(diào)整培養(yǎng)基ph值,得到檢測、分離玫煙色棒束孢分生孢子的培養(yǎng)基。

在本發(fā)明中,所述培養(yǎng)基的ph值為7.0~10.0,通過naoh和hcl溶液來調(diào)節(jié)ph值,更優(yōu)選ph值為8.0。

本發(fā)明還提供了上述技術方案所述培養(yǎng)基或上述技術方案所述方法制備的培養(yǎng)基的使用方法,包括以下步驟:

將培養(yǎng)基裝入檢測容器中,在溫室空氣中暴露后,將檢測容器轉(zhuǎn)移至無菌、黑暗環(huán)境中進行培養(yǎng),分離得到玫煙色棒束孢菌落。

本發(fā)明所述檢測容器優(yōu)選放置在具有代表性位置的采樣點處,本發(fā)明對所述采樣點的數(shù)量和位置沒有特殊的限定,采樣點可依據(jù)具體采樣空間設置。具體地,在本發(fā)明實施例中,設置5個采樣點,即溫室內(nèi)墻角對角線交點為一采樣點,該交點與四墻角連線的中點為另外4個采樣點。

在本發(fā)明中,所述分離優(yōu)選通過每天觀察菌落情況,與標準樣品進行比對,人工分離出玫煙色棒束孢分生孢子。

本發(fā)明對所述檢測容器沒有特殊的限定,采用本領域技術人員熟知的細菌采集裝置即可,如玻璃培養(yǎng)皿等。

在本發(fā)明中,所述培養(yǎng)的溫度為28~32℃,更優(yōu)選為30℃。

在本發(fā)明中,所述培養(yǎng)的時間為2~3d,更優(yōu)選為2d。在本發(fā)明中,所述培養(yǎng)時間的限定有利于菌落更準確的觀察。

在本發(fā)明中,所述暴露在溫室空氣中的時間為30~60min,更優(yōu)選為30min。

本發(fā)明對檢測的玫煙色棒束孢沒有特殊的限定,檢測本領域技術人員熟知的玫煙色棒束孢即可,如福建農(nóng)科院植保所收藏的編號為fz-01的玫煙色棒束孢。

下面結(jié)合具體實施例對本發(fā)明提供的溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基及制備方法做進一步詳細的介紹,本發(fā)明的技術方案包括但不限于以下實施例。

實施例1

配方:馬鈴薯200g,蔗糖20g,潮霉素b100ug/ml,氨芐青霉素100ug/ml,瓊脂10g,加蒸餾水至1000ml

制備方法:

1)取新鮮的馬鈴薯,洗凈剝皮后,稱取配方所述質(zhì)量,加蒸餾水至990ml,煮沸20分鐘,雙層紗布過濾;

2)濾液中加入配方所述質(zhì)量的蔗糖、瓊脂,煮沸后補足蒸餾水量至990ml;

3)放入高壓火菌鍋中,溫度121℃,保持30分鐘后,自然冷卻;

4)滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,990ml培養(yǎng)基加入剛配制的相應質(zhì)量百分比濃度的氨芐青霉素和潮霉素b溶液各100ug/ml,調(diào)節(jié)ph值為7.0。

實施例2

配方:馬鈴薯150g,蔗糖16g,潮霉素b30ug/ml,氨芐青霉素30ug/ml,瓊脂10g,加蒸餾水至1000ml

制備方法:

1)取新鮮的馬鈴薯,洗凈剝皮后,稱取配方所述質(zhì)量,加蒸餾水至990ml,煮沸20分鐘,雙層紗布過濾;

2)濾液中加入配方所述質(zhì)量的蔗糖、瓊脂,煮沸后補足蒸餾水量至990ml;

3)放入高壓火菌鍋中,溫度121℃,保持30分鐘后,自然冷卻;

4)滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,990ml培養(yǎng)基加入剛配制的相應質(zhì)量百分比濃度的氨芐青霉素和潮霉素b溶液各30ug/ml,調(diào)節(jié)ph值為8.0。

實施例3

配方:馬鈴薯180g,蔗糖17g,潮霉素b50ug/ml,氨芐青霉素50ug/ml,瓊脂10g,加蒸餾水至1000ml

制備方法:

1)取新鮮的馬鈴薯,洗凈剝皮后,稱取配方所述質(zhì)量,加蒸餾水至990ml,煮沸20分鐘,雙層紗布過濾;

2)濾液中加入配方所述質(zhì)量的蔗糖、瓊脂,煮沸后補足蒸餾水量至990ml;

3)放入高壓火菌鍋中,溫度121℃,保持30分鐘后,自然冷卻;

4)滅菌后的培養(yǎng)基冷卻至55℃時,990ml培養(yǎng)基加入剛配制的相應質(zhì)量百分比濃度的氨芐青霉素和潮霉素b溶液各50ug/ml,調(diào)節(jié)ph值為10.0。

比較例1

溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基與馬鈴薯培養(yǎng)基分離效果對比:

1)培養(yǎng)基配比

a:溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基:(20%馬鈴薯+2%蔗糖+2%瓊脂+100ug/ml潮霉素b+100ug/ml氨芐青霉素,ph8.0)

b:馬鈴薯培養(yǎng)基:(20%馬鈴薯+2%蔗糖,+2%瓊脂,ph7.0);

c:對照培養(yǎng)基:(蔗糖3%+0.3%nano3+0.1%k2hpo3+0.05%kcl+0.05%mgso4+0.001%feso4+2%瓊脂+0.2%利福平,自然ph)

在構(gòu)建好的溫室空間內(nèi),設置具有代表性的5個位點作為空氣分生孢子檢測的采樣點,即室內(nèi)墻角對角線交點為一采樣點,該交點與四墻角連線的中點為另外4個采樣點,將3種培養(yǎng)基平板豎直放置,以免露水濺入。本實驗在通風處掛置風扇,地面采樣點設置5個。將用大麥培養(yǎng)基培養(yǎng)好長滿分生孢子的玫煙色棒束孢放在風扇前,打開風扇5分鐘,將分生孢子釋放到該溫室大棚中,放置采集菌類孢子時間為30min,然后收回,重復2次。轉(zhuǎn)入生化培養(yǎng)箱30℃,黑暗條件培養(yǎng)。每隔12h觀察一次,在溫室采集分離用玫煙色棒束孢分生孢子培養(yǎng)基上,棒束孢開始生產(chǎn)速度較快,24h即可形成1~2mm/d的菌落,由于兩種抗生素聯(lián)合作用,這時其他雜菌尚未形成肉眼看清的菌落,48h后可清楚地對靶標棒束孢菌落進行計數(shù)(見圖1-1),從而達到快速分離,定量評估大棚棒束孢分生孢子密度的作用。馬鈴薯培養(yǎng)基上,由于缺乏抗生素的作用,非靶標雜菌一開始萌發(fā)生長,生長速度超過靶標的棒束孢,48h已經(jīng)無法對棒束孢進行分離鑒定(見圖1-2)。而對照培養(yǎng)基上,由于利福平的作用,具有一定的選擇效果,但對靶標棒束孢分離效果依然不明顯,24h后已有白色雜菌生成,48h也無法對棒束孢進行分離鑒定(見圖1-3)。培養(yǎng)4-5d以后,對照選擇培養(yǎng)基上非靶標雜菌大量生長,特別是抗性較強的競爭性放線菌、青霉類,容易侵染棒束孢,已無法對棒束孢進行有效鑒定(見圖2)。普通馬鈴薯培養(yǎng)基由于一開始有大量雜菌滋生,包括青霉、木霉、曲霉、鏈孢霉、毛霉和根霉等,還有細菌類,培養(yǎng)4-5d后根本無法對靶標棒束孢進行分離與鑒定(見圖3)。

比較例2

不同培養(yǎng)基對玫煙色棒束孢fz-01的影響

所用菌株玫煙色棒束孢為福建農(nóng)科院植保所收藏(編號fz-01)。打孔器取直徑4mm菌塊至含至不同平板培養(yǎng)基(設5種不同固體培養(yǎng)基,重復3次)。

1)培養(yǎng)基配比

a:馬鈴薯培養(yǎng)基(20%馬鈴薯+2%蔗糖+2%瓊脂,ph7.0);

b:黑麥培養(yǎng)基(50%黑麥+2%瓊脂,ph7.0);

c:胡蘿卜培養(yǎng)基(20%胡蘿卜+2%瓊脂,ph7.0);

d:牛肉膏培養(yǎng)基(0.3%牛肉膏+1%蛋白胨+0.5%氯化鈉+2%瓊脂,ph7.0);

e:薩氏培養(yǎng)基(1%蛋白胨+1%葡萄糖+2%瓊脂,ph7.0);

f:對照培養(yǎng)基(蔗糖3%+0.3%nano3+0.1%k2hpo3+0.05%kcl+0.05%mgso4+0.001%feso4+2%瓊脂,自然ph)

按配比稱取原料,121℃高壓蒸汽滅菌30分鐘備用。打孔器取直徑4mm菌塊至含至不同平板培養(yǎng)基,30℃,黑暗條件培養(yǎng),每天將培養(yǎng)物取出觀察、描述。培養(yǎng)結(jié)果發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)24h后,玫煙色棒束孢均能在6種培養(yǎng)基生長,其中馬鈴薯和黑麥培養(yǎng)基生長恢復速度快,比對照培養(yǎng)基要更好,較其它3種培養(yǎng)基菌落恢復速度要快12小時左右(圖4),4d后馬鈴薯培養(yǎng)基的菌落長勢最好,菌絲生長速度明顯優(yōu)于其它培養(yǎng)基,菌落直徑平均可達50~60mm(圖5),圖6為4d后馬鈴薯培養(yǎng)基培養(yǎng)結(jié)果圖。根據(jù)實驗結(jié)果,選擇出最適宜的檢測棒孢束分生孢子的培養(yǎng)基為馬鈴薯培養(yǎng)基。

比較例3

不同酸堿度(ph值)對玫煙色棒束孢fz-01的影響

所用菌株玫煙色棒束孢為福建農(nóng)科院植保所收藏(編號fz-01)。馬鈴薯培養(yǎng)基酸堿度分別調(diào)至ph值為3~11共9個梯度121℃高壓蒸汽滅菌30分鐘備用,打孔器取直徑4mm菌塊至培養(yǎng)基,重復3次。30℃,黑暗條件培養(yǎng)4天,將培養(yǎng)物取出觀察、描述。

將空氣采集后的培養(yǎng)皿培養(yǎng)天后進行觀察,培養(yǎng)基ph值為3~11。當分ph為3.0,4.0,11.0時幾乎沒有微生物生長,說明這幾種ph值對真菌的生長具有明顯抑制作用,而ph值為5~10時,都檢測到了真菌菌落,雜菌有青霉、曲霉、根霉,以及細菌類等。根據(jù)前人的經(jīng)驗和資料,我們知道培養(yǎng)基ph為為堿性時,細菌類生長還是受到一定抑制。而實驗結(jié)果表明棒束孢在偏堿性環(huán)境時,生長基本不受影響。根據(jù)實驗結(jié)果,為了使培養(yǎng)基有更好的選擇分離效果,我們選擇出最適宜的檢測棒孢束分生孢子的培養(yǎng)基ph值為8.0。實驗結(jié)果如圖7所示。

比較例4

不同濃度潮霉素b對菌絲生長影響

所用菌株玫煙色棒束孢為福建農(nóng)科院植保所收藏(編號fz-01)。馬鈴薯培養(yǎng)基121℃高壓蒸汽滅菌30分鐘備用,加入潮霉素b分別調(diào)至共6個梯度為0,10,100,200,300,500ug/ml。打孔器取直徑4mm菌塊至培養(yǎng)基,重復3次。30℃,黑暗條件培養(yǎng)4天,將培養(yǎng)物取出觀察、描述。實驗結(jié)果如圖8所示。將空氣采集后的培養(yǎng)皿培養(yǎng)2d后進行觀察,當培養(yǎng)基潮霉素b為100ug/ml以上時幾乎沒有其它微生物生長,說明這種濃度潮霉素b對非靶標真菌的生長具有明顯抑制性,但棒束孢生長基本不受影響。而濃度為10ug/ml時,可檢測到了非靶標真菌。根據(jù)實驗結(jié)果,選擇出最適宜的檢測棒孢束分生孢子的培養(yǎng)基潮霉素b濃度為100ug/ml。

以上所述僅是本發(fā)明的優(yōu)選實施方式,應當指出,對于本技術領域的普通技術人員來說,在不脫離本發(fā)明原理的前提下,還可以做出若干改進和潤飾,這些改進和潤飾也應視為本發(fā)明的保護范圍。

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