本發(fā)明屬于分子生物學(xué)領(lǐng)域,涉及一種溝葉結(jié)縷草全長cDNA文庫構(gòu)建的方法。
背景技術(shù):
cDNA文庫是以某種生物在特定時(shí)期、特定組織或特定處理下所表達(dá)的全部mRNA為模板,經(jīng)反轉(zhuǎn)錄形成的混合cDNA與適當(dāng)?shù)妮d體進(jìn)行連接或重組后,轉(zhuǎn)化受體菌獲得包括所有mRNA信息的cDNA克隆集合;近些年,cDNA文庫成為基因挖掘或分子生物學(xué)研究的重要基礎(chǔ),如通過cDNA文庫獲取大量的EST序列,采用cDNA表達(dá)文庫篩選獲得優(yōu)異的抗逆基因,利用cDNA酵母雙雜文庫篩選獲得互作蛋白。
溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)屬禾本科(Gramineae)畫眉草亞科(Chloridoideae)結(jié)縷草屬植物,是優(yōu)異的多年生暖季型草坪草,在世界范圍內(nèi)廣泛應(yīng)用,具有較高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值和生態(tài)效應(yīng);同時(shí),溝葉結(jié)縷草為鹽生植物,是鹽堿地寶貴的生物基因資源,其鹽脅迫下cDNA文庫構(gòu)建的研究未見報(bào)道。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明提供了一種溝葉結(jié)縷草全長cDNA文庫的構(gòu)建方法,本發(fā)明的技術(shù)問題可通過如下技術(shù)方案解決:
1.采用Trizol 法提取總RNA,通過mRNA純化試劑盒獲得高質(zhì)量mRNA;
2.將步驟1的mRNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,RNA消化,純化獲得高質(zhì)量第一鏈cDNA;
3.采用cap-antibody磁珠富集步驟2中帶5’帽子結(jié)構(gòu)的第一鏈cDNA;
4.給步驟3中的cDNA加上5’接頭后純化,合成cDNA第二鏈,形成雙鏈cDNA;
5.對步驟4中的雙鏈cDNA進(jìn)行分級分離及收集,獲得高純度的雙鏈cDNA;
6.步驟5獲得的雙鏈cDNA與文庫載體pDONR/Zeocin進(jìn)行BP重組,電轉(zhuǎn)大腸桿菌DH10B,即完成溝葉結(jié)縷草全長未剪切cDNA文庫的構(gòu)建。
有益效果:
1.本發(fā)明提供的溝葉結(jié)縷草全長cDNA表達(dá)文庫,可直接用于測序、功能基因組學(xué)研究,用于優(yōu)異基因的規(guī)模化篩選;
2.本發(fā)明提供的文庫構(gòu)建的方法,可為其他植物文庫構(gòu)建提供參考。
附圖說明
圖1 為具體實(shí)施方式1中提取的溝葉結(jié)縷草植株(包括根莖葉)的總RNA(a)及mRNA純化(b)檢測的電泳圖及濃度檢測圖;
圖2 為具體實(shí)施方式7中的文庫濃度檢測及PCR檢測,a:取電轉(zhuǎn)化菌液10μL按照1:100稀釋取50μL涂布平板后,長出的克??;b:隨機(jī)挑選32個(gè)克隆,PCR檢測其插入片段大小。
具體實(shí)施方式
1. RNA提取與mRNA純化。
采用水培法進(jìn)行鹽處理,取300 mM NaCl的Hoagland 營養(yǎng)液處理10 d后的溝葉結(jié)縷草植株,采用Trizol RNA試劑盒(Invitrogen)提取根、莖、葉的總RNA,采用1%凝膠電泳檢測RNA條帶清晰,Thermo nanodrop 核酸分析儀定量結(jié)果表明(圖1a),RNA濃度為884.6ng/μL,A260/A280為1.93,總體積600μL,RNA總量達(dá)到520μg。采用Dynabeads? mRNA Purification Kit(Invitrogen)分離純化mRNA,檢測結(jié)果表明(圖1b),mRNA在1-5kb呈現(xiàn)彌散條帶,mRNA濃度達(dá)到12.8 ng/μL,A260/A280為2.17,總體積400μL,mRNA總量達(dá)到5.12μg。這些結(jié)果均達(dá)到文庫構(gòu)建的要求。
2. 第一鏈cDNA合成及RNA消化。
取實(shí)施方式1中得到的mRNA,經(jīng)乙醇沉淀,溶于22.5 μL DEPC水中,按下表在0.2ml RNase free tube中配置引物反應(yīng)體系:
70℃處理7min,然后在15min內(nèi)緩慢降至45℃;按下表依次加入:
混勻后并運(yùn)行以下程序:45℃ 20min,50℃ 20min,55℃ 20min。然后經(jīng)乙醇沉淀,溶于179μL DEPC水中。按下列體系進(jìn)行RNA消化處理:
37℃孵育30min;然后經(jīng)酚抽提和乙醇沉淀,最后用300μL TEN buffer重懸cDNA沉淀,獲得高質(zhì)量cDNA第一鏈。
3. 富集帶5’帽子結(jié)構(gòu)的一鏈cDNA。
① 取充分混勻的cap-antibody(Invitrogen)磁珠300μl,于磁架上靜置2min、去上清,用300μL的TEN buffer(10 mM Tris-HCl,pH 7.5;0.1 mM EDTA;25 mM NaCl)重懸洗滌2次,去上清后,加入300μL的TEN buffer和20μg的酵母tRNA重懸磁珠,置于室溫孵育10min。
② 重懸①的磁珠,加入實(shí)施方式2中獲得的300μL高質(zhì)量cDNA第一鏈,室溫孵育60min,每隔20min混勻一次;然后于磁架上靜置2min、去上清;用300μl的TEN buffer重懸洗滌2次,去上清后,加入300μL的TENG buffer(10 mM Tris-HCl,pH 7.5;0.1 mM EDTA;25 mM NaCl;1 mM GDP)重懸cap-antibody磁珠并轉(zhuǎn)入新的1.5ml離心管中,靜置,去上清。
③ 加入100μL的50 mM NaOH重懸②的磁珠,于37℃孵育10min,靜置、取上清置于新的離心管中,即為洗脫的cDNA;然后加入100μL的1M Tris-Hcl(pH7.0)中和cDNA中的NaOH。重復(fù)兩次,最后收集的洗脫液管中溶液總體積為400μL。
④ 采用DNA柱純化試劑盒,純化400μL洗脫液,用22μL的DEPC水過柱洗滌獲得全長篩選富集的cDNA第一鏈溶液。
4. 加5’接頭及雙鏈cDNA合成。
加入以下產(chǎn)物置于PCR儀上,95℃ 10分鐘,立即從PCR儀上取出,置于室溫,放置30分鐘,合成attB1 adapter接頭;
將具體實(shí)施方式3中獲得的22μL的cDNA第一鏈溶液中依次加入以下試劑
用槍混勻后置于16℃孵育24小時(shí),然后采用DNA柱純化試劑盒純化,用80μL的DEPC水過柱洗滌獲得帶接頭的cDNA第一鏈溶液;
按照以下體系合成cDNA第二鏈,形成雙鏈cDNA溶液
68℃ 20 min,72℃ 20 min,置于冰上待用。
5. cDNA分級分離及收集。
向具體實(shí)施方式3中獲得的100μl的雙鏈cDNA中加入50μL的TEN buffer,混勻后加入分級柱(Invitrogen)中,收集全部濾過液到1號(hào)收集管;然后向分級柱中加入250μL的TEN buffer,收集全部濾過液到2號(hào)收集管;向分級柱中加入50μL的TEN buffer,收集全部濾過液到3號(hào)收集管;向分級柱中加入100μL的TEN buffer,收集全部濾過液到4號(hào)收集管;向分級柱中加入100μL的TEN buffer,收集全部濾過液到5號(hào)收集管;取2號(hào)收集管的產(chǎn)物,經(jīng)乙醇沉淀,用14μL溶解cDNA雙鏈,用于下一步反應(yīng)。
6.BP重組及電轉(zhuǎn)化。
按下表加入各成分:
混勻后置于25℃,20小時(shí)。然后加入2μL的ProreinaseK,37℃,15min;75℃,10min。再經(jīng)乙醇沉淀,用8μL的TE Buffer溶解cDNA;將純化的2uL重組產(chǎn)物和50μL電轉(zhuǎn)感受態(tài)細(xì)胞DH10B混合加入預(yù)冷電轉(zhuǎn)杯,冰上置45min;于TX ECM 630電轉(zhuǎn)化儀上電擊轉(zhuǎn)化,其條件設(shè)置為:
電擊后迅速向電轉(zhuǎn)杯中加入SOC培養(yǎng)基1mL,將電轉(zhuǎn)物取入到新的15mL離心管,置于37℃,225-250rpm搖床培養(yǎng)1小時(shí);培養(yǎng)結(jié)束后,此即為全長未剪切cDNA文庫菌液。
7.文庫質(zhì)量檢測。
取菌液10μL按照1:100稀釋取50μL涂布平板用于庫容量鑒定、插入片段大小評價(jià)及測序檢測;經(jīng)檢測(圖2a),轉(zhuǎn)化平板的菌液濃度為:CFU/ml= 500/50μL ×100 × 1000μL=1×106cfu/mL,共電轉(zhuǎn)3次,共獲得3mL菌液,總克隆數(shù)CFU達(dá)到3×106 個(gè);
隨機(jī)挑選32個(gè)克隆進(jìn)行PCR擴(kuò)增檢測,其檢測體系為:
其PCR擴(kuò)增條件為:
其檢測結(jié)果如圖2b,重組率達(dá)到100%,平均插入片段大小為1.59kb。另外,也通過測序,BLASTX分析表明,16個(gè)克隆序列(SEQ ID NO. 6-21)中均包括了預(yù)測的起始密碼子序列,全長率達(dá)到100%。
綜上所述,本發(fā)明成功構(gòu)建了高質(zhì)量的溝葉結(jié)縷草全長cDNA文庫,不僅為開展溝葉結(jié)縷草功能基因組學(xué)研究奠定了新思路,同時(shí)也為其它植物文庫構(gòu)建提供了新方法。
<110> 江蘇省中國科學(xué)院植物研究所
<120> 一種溝葉結(jié)縷草全長cDNA文庫構(gòu)建的方法
<160> 21
<210> 1
<211> 53
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 第一鏈cDNA合成引物序列Biotin-attB2-Oligo(dT) Primer
<400> 1
ggcggccgca caactttgta caagaaagtt gggttttttt tttttttttt ttt 53
<210> 2
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 5’接頭合成引物attB1-adapter-F
<400> 2
tcgtcgggga caactttgta caaaaaagtt gg 32
<210> 3
<211> 27
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 5’接頭合成引物attB1-adapter-R
<400> 3
cccctgttga aacatgtttt ttcaacc 27
<210> 4
<211> 36
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 文庫質(zhì)量檢測的PCR反應(yīng)引物pDONR222F
<400> 4
tcccagtcac gacgttgtaa aacgacggcc agtctt 36
<210> 5
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 文庫質(zhì)量檢測的PCR反應(yīng)引物pDONR222R
<400> 5
agagctgcca ggaaacagct atgaccatgt aatacgactc 40
<210> 6
<211> 96
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 6
1 tgaaaggagacgagtcgagagaagcggcggcggcagcgacccgatccgccaccgccaccg
61 ccggcgacgataccctgctaacaagagaagatggca
<210> 7
<211> 96
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 7
1 caccaccgcaaatctcctcgtcgcattcgcagaggtgccgccgattcgaccagggatggc
61 g
<210> 8
<211> 294
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 8
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<210> 9
<211> 128
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 9
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<210> 10
<211> 63
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
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<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
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61 ggc
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<211> 134
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
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<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
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1 gcttgattccagtcagaatcggtggctgtcgctgagcttcgtcgttcgctcctccagatc
61 cggcagcacggacaggttgcggagttgattccgtcttgctggagtagagacgtgtgcttc
121 ttgttgtcatggag
<210> 12
<211> 19
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
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<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 12
1 gcggcacatcggaatgcat
<210> 13
<211> 167
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 13
1 ggcgcgggagcaccagaaaggaaacccgaggcgaggcggccgtgtggcttcgcccaccac
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<210> 14
<211> 71
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 14
1 ctccccactccacacacaccaacgcaaacagccactcctcacctcccccaccctccctcc
61 ggttcatgtcc
<210> 15
<211> 54
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 15
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<210> 16
<211> 96
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 16
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<210> 17
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<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
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<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
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<210> 18
<211> 111
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 18
1 gtgtcctcggcttcctcccaagtcccaccccccactcccctctcccgtccttcctgcctg
61 ccgcctgccggagctccggctctcgatctcgcatcgcagacgaaaatgcag
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<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
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<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 19
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<210> 20
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<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 20
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61 ggcg
<210> 21
<211> 157
<212> DNA
<213> 溝葉結(jié)縷草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 溝葉結(jié)縷草文庫基因ATG上游啟動(dòng)子序列
<400> 21
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