本發(fā)明涉及生物技術(shù)領(lǐng)域中鑒定大豆籽粒密度的方法及與大豆籽粒密度相關(guān)的QTL。

背景技術(shù)：

粒重是產(chǎn)量構(gòu)成因素之一，其主要受籽粒體積和密度的影響。籽粒體積的變異程度較大，較易被育種家利用，以期通過(guò)增加籽粒體積來(lái)提高粒重，所以籽粒大小及粒形相關(guān)研究較多。但是隨著籽粒體積的增大，往往會(huì)引起籽粒外觀和加工品質(zhì)的下降。因此，籽粒密度即是產(chǎn)量構(gòu)成因子之一，也是衡量種子質(zhì)量的重要指標(biāo)，影響了加工品質(zhì)及種子活力。近年來(lái)，籽粒物理性狀(粒重、粒長(zhǎng)、粒寬、粒厚、體積、密度等)越來(lái)越受到育種家和遺傳學(xué)者的關(guān)注。這些性狀均屬于多基因控制的數(shù)量性狀，不僅遺傳基礎(chǔ)復(fù)雜，還受到環(huán)境條件等因素的影響。

在玉米中，張麗等通過(guò)對(duì)多個(gè)優(yōu)異玉米品種授粉后玉米籽粒的干比重、鮮比重等測(cè)定，探討玉米籽粒比重在籽粒灌漿過(guò)程中的建成動(dòng)態(tài)及其與籽粒灌漿特性的關(guān)系，發(fā)現(xiàn)籽粒灌漿快增持續(xù)期是干比重形成的關(guān)鍵時(shí)期，該時(shí)期影響籽粒灌漿會(huì)顯著影響干比重的大小。白光紅等以綜3和87-1構(gòu)建的294個(gè)玉米F9∶10家系為材料，研究了玉米籽粒比重的遺傳變異情況，并采用復(fù)合區(qū)間作圖法在兩年中共檢測(cè)到了籽粒比重相關(guān)QTL位點(diǎn)7個(gè)。黃婧等對(duì)雜交水稻籽粒比重與其他穗粒性狀的相關(guān)性和遺傳進(jìn)行了分析，認(rèn)為基于籽粒比重選擇的雜交水稻育種方法具有巨大潛力和可行性。小麥中，董連生等利用由和尚麥和豫麥8679雜交后代構(gòu)建的RIL群體(包括129個(gè)家系)為材料，研究了調(diào)控油菜素內(nèi)酯活性的關(guān)鍵基因BAS1和小麥千粒重、籽粒密度兩個(gè)產(chǎn)量性狀的關(guān)系。BAS1位點(diǎn)等位變異分別與千粒重和籽粒密度呈顯著(0.178*)和極顯著(0.327***)正相關(guān)，揭示了BAS1基因位點(diǎn)等位變異與小麥粒重、籽粒密度間的密切聯(lián)系。馬曉紅等研究了不同來(lái)源的大豆比重差異，并研究發(fā)現(xiàn)大豆的百粒重與體積呈顯著的正相關(guān)；子粒比重與百粒重呈不顯著負(fù)相關(guān)；子粒比重和體積呈顯著和不顯著的負(fù)相關(guān)，體積大的品種，其比重則較輕，干物質(zhì)積累少，種子的質(zhì)量不如小粒大豆。

而限于測(cè)量手段、測(cè)量效率、結(jié)果準(zhǔn)確性等因素，有關(guān)大豆子粒比重的研究較少，未有相關(guān)QTL位點(diǎn)的報(bào)道。

技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素：

本發(fā)明所要解決的技術(shù)問(wèn)題是如何鑒定大豆籽粒密度。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明首先提供了鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法。

本發(fā)明所提供的鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法，包括：分別以待鑒定大豆、冀豆12和黑豆ZDD03651的基因組DNA為模板，用名稱為X1的PCR引物對(duì)進(jìn)行PCR擴(kuò)增，通過(guò)電泳檢測(cè)所得到的PCR產(chǎn)物，按照下述方法確定所述待鑒定大豆籽粒密度：

將冀豆12的PCR產(chǎn)物的帶型命名為A，將黑豆ZDD03651的PCR產(chǎn)物的帶型命名為B，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為所述B，所述待鑒定大豆籽粒密度小于或候選小于冀豆12，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為所述A，所述待鑒定大豆籽粒密度大于或候選大于黑豆ZDD03651，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為H帶型，所述H帶型為含有所述A帶型和所述B帶型的帶型，所述待鑒定大豆籽粒密度處于或候選處于黑豆ZDD03651與冀豆12之間；

所述X1由P1和P2組成；

所述P1為如下a1)至a4)中的任一種單鏈DNA：

a1)序列表中SEQ ID No.1所示的單鏈DNA；

a2)在a1)的5′端和/或3′端添加一個(gè)或幾個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA；

a3)與a1)或a2)限定的單鏈DNA具有85％以上的同一性的單鏈DNA；

a4)在嚴(yán)格條件下與a1)或a2)限定的單鏈DNA雜交的單鏈DNA；

所述P2為如下b1)至b4)中的任一種單鏈DNA：

b1)序列表中SEQ ID No.2所示的單鏈DNA；

b2)在b1)的5′端和/或3′端添加一個(gè)或幾個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA；

b3)與b1)或b2)限定的單鏈DNA具有85％以上的同一性的單鏈DNA；

b4)在嚴(yán)格條件下與b1)或b2)限定的單鏈DNA雜交的單鏈DNA。

a2)所述在a1)的5′端和/或3′端添加一個(gè)或幾個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA可為在SEQ ID No.1所示的單鏈DNA的5′端和/或3′端添加一至十個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA。b2)所述在b1)的5′端和/或3′端添加一個(gè)或幾個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA可為在SEQ ID No.2所示的單鏈DNA的5′端和/或3′端添加一至十個(gè)核苷酸得到的單鏈DNA。

這里使用的術(shù)語(yǔ)“同一性”指與天然核酸序列的序列相似性?！巴恍浴卑ㄅc本發(fā)明的SEQ ID No.1或SEQ ID No.2所示的核苷酸序列具有85％或更高，或90％或更高，或95％或更高同一性的核苷酸序列。同一性可以用肉眼或計(jì)算機(jī)軟件進(jìn)行評(píng)價(jià)。使用計(jì)算機(jī)軟件，兩個(gè)或多個(gè)序列之間的同一性可以用百分比(％)表示，其可以用來(lái)評(píng)價(jià)相關(guān)序列之間的同一性。

所述嚴(yán)格條件是在2×SSC，0.1％SDS的溶液中，在68℃下雜交并洗膜2次，每次5min，又于0.5×SSC，0.1％SDS的溶液中，在68℃下雜交并洗膜2次，每次15min；或，0.1×SSPE(或0.1×SSC)、0.1％SDS的溶液中，65℃條件下雜交并洗膜。

上述85％以上同一性，可為85％、90％或95％以上的同一性。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了檢測(cè)大豆基因型的方法。

本發(fā)明所提供的檢測(cè)大豆基因型的方法，所述基因型為AA基因型、BB基因型和AB基因型，所述方法包括：

分別以待鑒定大豆、冀豆12和黑豆ZDD03651的基因組DNA為模板，用所述P1和所述P2進(jìn)行PCR擴(kuò)增，通過(guò)電泳檢測(cè)所得到的PCR產(chǎn)物，按照下述方法確定所述待鑒定大豆的基因型：

將冀豆12的PCR產(chǎn)物的帶型命名為A，將黑豆ZDD03651的PCR產(chǎn)物的帶型命名為B，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為所述A，所述待鑒定大豆為AA基因型大豆，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為所述B，所述待鑒定大豆為BB基因型大豆，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為H帶型，所述H帶型為含有所述A帶型和所述B帶型的帶型，所述待鑒定大豆為AB基因型大豆。

其中，所述AA基因型大豆的籽粒密度分別大于所述AB基因型大豆和所述BB基因型大豆，所述BB基因型大豆的籽粒密度分別小于所述AB基因型大豆和所述AA基因型大豆。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，所述電泳均可為非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳。所述非變性聚丙烯酰胺凝膠的濃度具體可為6％。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，所述PCR擴(kuò)增中的引物退火溫度均可為55℃。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，所述PCR擴(kuò)增中的引物退火條件均可為55℃，30s。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，所述PCR擴(kuò)增的條件具體可為：94℃5min；94℃30s，55℃30s，72℃30s，35個(gè)循環(huán)；72℃5min；4℃保存。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，進(jìn)行所述PCR擴(kuò)增的體系中所述P1和所述P2的濃度均可為0.15μM。所述體系可含有dNTP、DNA聚合酶和/或PCR緩沖液。所述PCR緩沖液具體可為10×PCR Buffer。所述DNA聚合酶具體可為rTap酶。所述體系具體可含有所述P1、所述P2、10×PCR Buffer、dNTPs、rTap酶、所述待鑒定大豆基因組DNA和水。所述體系具體可為：所述P1(10μM)0.3μL、所述P2(10μM)0.3μL、10×PCR Buffer 2μL、dNTPs(2.5mM)1.5μL、rTap酶(5U/μL)0.2μL、模板DNA(20ng/μL)5μL和ddH₂O 10.7μL。其中，10×PCR Buffer、rTap酶和dNTPs均可為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品。

上述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法和檢測(cè)大豆基因型的方法中，所述待鑒定大豆均可選自冀豆12×黑豆ZDD03651的雜種后代中的F2及其以后世代的家系。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的引物對(duì)。

本發(fā)明所提供的鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的引物對(duì)，為所述X1。

其中，所述P1和所述P2獨(dú)立包裝。所述P1和所述P2的摩爾比可為1:1。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的系統(tǒng)。

本發(fā)明所提供的鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的系統(tǒng)，包括所述X1。

上述系統(tǒng)可包括所述X1、進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的試劑和/或儀器、和/或進(jìn)行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳所需的試劑和/或儀器。

所述進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的試劑可為dNTP、DNA聚合酶和/或PCR緩沖液。所述PCR緩沖液具體可為10×PCR Buffer。所述DNA聚合酶具體可為rTap酶。10×PCR Buffer、rTap酶和dNTPs均可為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品。所述進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的儀器可為PCR儀。

上述系統(tǒng)中，所述X1、所述進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的試劑以及進(jìn)行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳所需的試劑均可獨(dú)立包裝。所述X1的兩條單鏈DNA均可獨(dú)立包裝。進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的各試劑和進(jìn)行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳所需的各試劑均可獨(dú)立包裝。

上述系統(tǒng)也可為僅含有所述X1、所述進(jìn)行PCR擴(kuò)增所需的試劑和/或所述進(jìn)行非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳所需的試劑的試劑或試劑盒。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了與大豆籽粒密度相關(guān)的主效數(shù)量性狀位點(diǎn)qSD-8-1。

本發(fā)明所提供的與大豆籽粒密度相關(guān)的主效數(shù)量性狀位點(diǎn)qSD-8-1，定位于第8號(hào)染色體上，為Sat_215。

其中，所述P1和P2分別為可特異識(shí)別所述分子標(biāo)記為Sat_215的上游和下游引物序列。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了下述任一應(yīng)用：

M1、所述鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的方法或所述檢測(cè)大豆基因型的方法在下述1)或2)或3)中的應(yīng)用：

1)大豆育種；

2)預(yù)測(cè)或輔助預(yù)測(cè)大豆籽粒密度；

3)鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度；

M2、所述X1，或所述的系統(tǒng)，或所述與大豆籽粒密度相關(guān)的主效數(shù)量性狀位點(diǎn)qSD-8-1在下述a)、b)、c)或d)中的應(yīng)用：

a)大豆育種；

b)預(yù)測(cè)或輔助預(yù)測(cè)大豆籽粒密度；

c)制備鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的產(chǎn)品；

d)鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度；

M3、所述與大豆籽粒密度相關(guān)的主效數(shù)量性狀位點(diǎn)qSD-8-1在制備鑒定或輔助鑒定大豆籽粒密度的分子標(biāo)記中的應(yīng)用。

為解決上述技術(shù)問(wèn)題，本發(fā)明還提供了大豆育種方法。

本發(fā)明所提供的大豆育種方法，包括按照所述檢測(cè)大豆基因型的方法鑒定大豆的基因型，選擇AA或AB基因型的大豆作為親本進(jìn)行育種。

本發(fā)明中，所述大豆可選自冀豆12×黑豆ZDD03651的雜種后代中的F2及其以后世代的家系。所述育種可為分子標(biāo)記輔助育種。

實(shí)驗(yàn)證明，在2011年，186個(gè)家系中AA基因型大豆的籽粒密度為1.223-1.355g/ml,平均為1.291g/ml，BB基因型大豆的籽粒級(jí)別為1.202-1.340g/ml，平均級(jí)別為1.272g/ml，AB基因型大豆的籽粒密度為1.244-1.301g/ml，平均級(jí)別為1.282g/ml；在2013年，186個(gè)家系中AA基因型大豆的籽粒密度為1.216-1.379g/ml，平均為1.315g/ml，BB基因型大豆的籽粒密度為1.209-1.371，平均為1.299，AB基因型大豆的籽粒密度為1.279-1.332g/ml，平均為1.304g/ml。表明，AA基因型大豆的籽粒密度大于BB基因型大豆，AB基因型大豆的籽粒密度位于AA基因型大豆與BB基因型大豆之間。表明，大豆的AA基因型、BB基因型和AB基因型與大豆的籽粒密度相關(guān)，可通過(guò)檢測(cè)大豆的基因型檢測(cè)大豆籽粒密度。

本發(fā)明以高世代重組自交系為材料，通過(guò)不同濃度蔗糖水溶液配置的密度梯度，將各家系材料按照籽粒密度大小分級(jí)，研究籽粒密度的遺傳和變異，并定位到籽粒密度相關(guān)QTL位點(diǎn)，為分子標(biāo)記輔助育種提供指導(dǎo)。

附圖說(shuō)明

圖1為大豆籽粒密度測(cè)定示意圖。

圖2為F6:8(2011年)和F6:9(2013年)各家系表型分布。

圖3為F6:8(2011年)和F6:9(2013年)大豆籽粒密度QTL qSD-8-1似然比圖譜。

圖4為冀豆12×黑豆ZDD03651后代材料PCR產(chǎn)物檢測(cè)結(jié)果。

具體實(shí)施方式

下面結(jié)合具體實(shí)施方式對(duì)本發(fā)明進(jìn)行進(jìn)一步的詳細(xì)描述，給出的實(shí)施例僅為了闡明本發(fā)明，而不是為了限制本發(fā)明的范圍。

下述實(shí)施例中的實(shí)驗(yàn)方法，如無(wú)特殊說(shuō)明，均為常規(guī)方法。

下述實(shí)施例中所用的材料、試劑等，如無(wú)特殊說(shuō)明，均可從商業(yè)途徑得到。

下述實(shí)施例中的黑豆(ZDD03651)，記載于“陳強(qiáng),閆龍,馮燕，等.大豆百粒重QTL定位及多樣性評(píng)價(jià).中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2016年09期”公眾可從申請(qǐng)人處獲得該生物材料，該生物材料只為重復(fù)本發(fā)明的相關(guān)實(shí)驗(yàn)所用，不可作為其它用途使用。黑豆(ZDD03651)為陜西省地方品種，在石家莊的百粒重為7g。

下述實(shí)施例中的大豆品種冀豆12：記載于“陳強(qiáng),閆龍,楊春燕，等.冀豆12遺傳背景下3個(gè)回交組合高低蛋白含量后代品系SSR標(biāo)記分析.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2014年02期”，公眾可從申請(qǐng)人處獲得該生物材料，該生物材料只為重復(fù)本發(fā)明的相關(guān)實(shí)驗(yàn)所用，不可作為其它用途使用。冀豆12是河北省農(nóng)林科學(xué)院糧油作物研究所育成的大粒品種，在石家莊的百粒重為22g。

下述實(shí)施例中所用到的已知的SSR標(biāo)記名稱及其引物的序列信息來(lái)自數(shù)據(jù)庫(kù)www.soybase.org。

實(shí)施例1、大豆籽粒密度的鑒定及與大豆籽粒密度相關(guān)的QTL

1、實(shí)驗(yàn)材料

本研究以冀豆12×黑豆ZDD03651得到的重組自交系為材料。將冀豆12×黑豆ZDD03651得到F8代和F9代各188個(gè)重組自交系(即188個(gè)家系)分別于2011年和2013年播種于石家莊，田間采用3m行長(zhǎng)，3行區(qū)，隨機(jī)區(qū)組試驗(yàn)設(shè)計(jì)，行距50cm，株距10cm。材料自然成熟后脫粒，并通風(fēng)晾干到籽粒含水量約為13％時(shí)測(cè)定籽粒密度。

2、籽粒密度測(cè)定劃分方法如下：

按表1中配制8個(gè)不同濃度的蔗糖水溶液，100ml水中加入蔗糖分別為45-80g，對(duì)應(yīng)蔗糖水溶液的密度為1.202-1.412g/ml。每家系隨機(jī)選取籽粒，每5粒一組分別置于不同濃度蔗糖水溶液中，觀察籽粒懸浮情況，確定籽粒的密度，每個(gè)家系重復(fù)測(cè)定三次。確定籽粒密度的方法如下：如籽粒在編號(hào)為n-1的蔗糖水溶液中全部沉于溶液底部(圖1中①)，且在編號(hào)為n+1的蔗糖水溶液中全部浮于溶液表面(圖1中③)，則籽粒的密度為編號(hào)為n的蔗糖水溶液的密度，n為2-7中的一個(gè)自然數(shù)。

表1、蔗糖水溶液密度表

兩年中，各家系籽粒密度表型變異及分布見表2和圖2。雙親間籽粒密度差異較大，冀豆12籽粒密度較大，為1.363-1.368g/ml，黑豆ZDD03651籽粒密度較小，為1.253-1.262g/ml。群體各家系籽粒密度變異范圍較大，2011年變異范圍為1.202-1.379g/ml，2013年為1.202-1.379g/ml，雙因素方差分析顯示其受環(huán)境影響極顯著(P＜0.01)。籽粒密度的廣義遺傳力為77.66％。兩年中群體表型均為正態(tài)分布。

表2、雙親及群體各家系籽粒密度(g/ml)變異分析

^aSD標(biāo)準(zhǔn)差

采用WinQTL Cartographer V.2.5軟件的復(fù)合區(qū)間作圖法(CIM)對(duì)各環(huán)境下百粒重相關(guān)QTL進(jìn)行檢測(cè)，經(jīng)300次Permutation計(jì)算，選用全基因組顯著性水平P＜0.05為閾值，檢測(cè)每個(gè)環(huán)境下的QTL效應(yīng)，臨近位點(diǎn)間圖距小于5cM，認(rèn)定是同一個(gè)QTL。采取MCCOUCH等方式進(jìn)行QTL命名。結(jié)果顯示，將與大豆籽粒密度相關(guān)的主效QTL(命名為qSD-8-1)定位到8號(hào)染色體Satt424-Satt341分子標(biāo)記區(qū)間內(nèi)，為Sat_215。該QTL在2011年和2013年兩年中貢獻(xiàn)率分別為8.60％和7.23％，家性效應(yīng)分別為0.34和0.33，增效基因來(lái)自于冀豆12(表3)。大豆籽粒密度QTL qSD-8-1似然比圖譜如圖3所示。

表3、籽粒密度相關(guān)QTL位點(diǎn)信息

3、基因型鑒定

按照如下方法分別測(cè)定冀豆12、黑豆ZDD03651以及F6:8(2011年)的186個(gè)家系與F6:9(2013年)的186個(gè)家系的基因型：

提取大豆基因組DNA，以大豆基因組DNA為模板，用鑒定大豆籽粒密度的引物對(duì)X1進(jìn)行PCR擴(kuò)增，X1為分子標(biāo)記Sat_215，由P1和P2組成，P1為序列表中SEQ ID No.1所示的單鏈DNA，P2為序列表中SEQ ID No.2所示的單鏈DNA。

PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系如表4所示。

表4、PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系

PCR擴(kuò)增的反應(yīng)條件為：94℃5min；94℃30s，55℃30s，72℃30s，35個(gè)循環(huán)；72℃5min；4℃保存。

用6％非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳對(duì)PCR反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行電泳，按照下述方法確定大豆基因型：

將冀豆12的PCR產(chǎn)物的帶型命名為A(圖4)，將黑豆ZDD03651的PCR產(chǎn)物的帶型命名為B(圖4)，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為A，待鑒定大豆為AA基因型大豆，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為B，待鑒定大豆為BB基因型大豆，如果待鑒定大豆的PCR產(chǎn)物在電泳中的帶型為H帶型(圖4)，H帶型為含有A帶型和B帶型的帶型，待鑒定大豆為AB基因型大豆。

依據(jù)步驟2的方法測(cè)得的大豆的籽粒密度與依據(jù)步驟3的方法測(cè)得的大豆的基因型如表5所示。

表5、大豆基因型與籽粒密度的關(guān)系

結(jié)果顯示，在2011年，186個(gè)家系中AA基因型大豆的籽粒密度為1.223-1.355g/ml,平均為1.291g/ml，BB基因型大豆的籽粒級(jí)別為1.202-1.340g/ml，平均級(jí)別為1.272g/ml，AB基因型大豆的籽粒密度為1.244-1.301g/ml，平均級(jí)別為1.282g/ml；在2013年，186個(gè)家系中AA基因型大豆的籽粒密度為1.216-1.379g/ml，平均為1.315g/ml，BB基因型大豆的籽粒密度為1.209-1.371g/ml，平均為1.299g/ml，AB基因型大豆的籽粒密度為1.279-1.332g/ml，平均為1.304g/ml。表明，AA基因型大豆的籽粒密度大于BB基因型大豆，AB基因型大豆的籽粒密度位于AA基因型大豆與BB基因型大豆之間。表明，大豆的AA基因型、BB基因型和AB基因型與大豆的籽粒密度相關(guān)，可通過(guò)檢測(cè)大豆的基因型檢測(cè)大豆籽粒密度。

<110> 河北省農(nóng)林科學(xué)院糧油作物研究所

<120> 鑒定大豆籽粒密度的方法及與大豆籽粒密度相關(guān)的QTL

<160> 2

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 24

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<223>

<400> 1

gcgtagcaac aaagcaatct acag 24

<210> 2

<211> 29

<212> DNA

<213> 人工序列

<220>

<223>

<400> 2

gcgtcccatt ttattccaca ctatgtaat 29