本發(fā)明涉及一株分離的能夠產(chǎn)生桉葉油素的環(huán)紋炭團(tuán)菌(Annulohypoxylon)菌株,本發(fā)明還涉及所述菌株在生產(chǎn)桉葉油素中的應(yīng)用,屬于產(chǎn)桉葉油素菌株的分離及應(yīng)用領(lǐng)域。
背景技術(shù):
生物質(zhì)能因其可再生、可循環(huán)、來源廣泛、效益顯著等特征而成為替代化石能源的主要選擇。許多國家對生物質(zhì)進(jìn)行處理作為生物燃料利用方式的研究逐漸深入,其中最直接的是將植物油用于柴油機(jī)上,其熱效率可接近礦質(zhì)柴油。如果將植物油等進(jìn)行單酯化處理,使其成為單酯類,會更適合于在內(nèi)燃機(jī)上使用。其中,桉葉油素(1,8-cineole,C10H18O)是一種辛烷衍生單萜類化合物,無色液體,有類似樟腦氣味。這種油即為“生物柴油”,目前在許多國家已經(jīng)商品化生產(chǎn)。中國也有人對桉葉油素作為燃料進(jìn)行研究分析。肖正春等(肖正春,張衛(wèi)明,張廣倫,等.生物柴油植物桉樹類葉油的開發(fā)利用[J].中國野生植物資源,2008,27(2):19-20.)證明桉葉油素在內(nèi)燃機(jī)中可以很好的使用,并發(fā)現(xiàn)藍(lán)桉和大葉桉如果人工栽培,加強(qiáng)管理,l株7-8年生樹每年可砍伐400kg鮮枝葉用于蒸油,估計人工栽培l(xiāng)hm2桉樹每年可產(chǎn)桉樹油20-40噸。管朝旭等(管朝旭,施彬,曾德賢,等.史密斯桉無性系桉葉出油率及成分分析[J].桉樹科技,2013(4):15-18.)對中國的史密斯桉無性系桉葉具有燃料性質(zhì)的桉葉油素的產(chǎn)量進(jìn)行分析,最高產(chǎn)量為2.92%。
近些年來,如炭團(tuán)菌(Hypoxylon sp.),莖點(diǎn)霉(Phoma sp.)和多節(jié)孢屬真菌(Nodulisporium sp.)等真菌的揮發(fā)性代謝產(chǎn)物中都含有桉葉油素,這是除植物組織以外桉葉油素的另一種新的生物來源。其中,Tomsheck在2010年發(fā)表的文章中提及的炭團(tuán)菌(Hypoxylon sp),在PDA上培養(yǎng)6天時產(chǎn)生的1,8-cineole為總的揮發(fā)性產(chǎn)物的0.5%,即為0.725ppmv(Tomsheck A R,Strobel G A,Booth E,et al.Hypoxylon sp.an Endophyte of Persea indica,Producing 1,8-Cineole and Other Bioactive Volatiles with Fuel Potential[J].Microbial Ecology,2010,60(4):903-14.)。
桉葉油素還具有燃料添加劑的潛在價值,作為乙醇汽油混合燃料的添加劑,可以提高辛烷值,這樣就彌補(bǔ)了乙醇的能量密度差的問題;桉葉油素與其他未經(jīng)酯化處理的植物油脂相比,直接作為內(nèi)燃機(jī)燃料使用有很大優(yōu)勢,即使全部使用1,8-cineole也是可行的。相對于以大體積的糧食谷物為原料的生物質(zhì)能而言,以農(nóng)林廢棄物為基質(zhì)產(chǎn)生具有燃料潛能物質(zhì)的微生物更有利用前景。但是,并不是所有能產(chǎn)生桉葉油素的菌株都能很好的利用纖維素基質(zhì),已有研究表明將纖維素降解基因克隆到菌株內(nèi)從而可以很好地降解利用纖維素基質(zhì)。
因此,分離出新的能夠產(chǎn)生桉葉油素的真菌,利用其揮發(fā)性產(chǎn)物以及通過研究該類菌株產(chǎn)生桉葉油素的基因及其表達(dá),利用遺傳改良手段優(yōu)化菌株等,將對第二代生物質(zhì)能源轉(zhuǎn)化利用具有非常重要的推動意義。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明所要解決的第一個技術(shù)問題是提供一株分離的產(chǎn)桉葉油素的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株;
本發(fā)明所要解決的第二個技術(shù)問題是將所述環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株應(yīng)用于生產(chǎn)桉葉油素。
為解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明所采取的技術(shù)方案是:
本發(fā)明從海南尖峰嶺樟科植物樹枝中分離、純化得到一株菌株,通過對該菌株4個基因位點(diǎn)(包括ITS、Actin、β-tubulin和EF-1α)的PCR序列在NCBI中blast的結(jié)果,確定了該菌株的OTU種為Annulohypoxylon。本發(fā)明將分離的菌株命名為環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)。
本發(fā)明通過GC-MS對該環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)的揮發(fā)性產(chǎn)物進(jìn)行定性分析,結(jié)果表明該環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株能夠產(chǎn)生2種特殊揮發(fā)性成分,分別為桉葉油素(1,8-cineole)和3-甲基-1-丁醇(1-Butanol,3-methyl)。本發(fā)明進(jìn)一步對揮發(fā)性成分定量分析的結(jié)果表明,該環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株在生長6天時產(chǎn)生桉葉油素(1,8-cineole)為0.764ppmv。
本發(fā)明將分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)提交專利認(rèn)可的機(jī)構(gòu)進(jìn)行保藏,其微生物保藏編號為:CGMCC No.12771;分類命名為:炭團(tuán)菌Annulohypoxylon sp.。保藏單位:中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心;保藏時間是2016年07月07日;保藏地址:北京市朝陽區(qū)北辰西路1號院3號,中國科學(xué)院微生物研究所。
本發(fā)明所分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)能夠在主要以農(nóng)林廢棄物為成分的培養(yǎng)基上進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)生產(chǎn)桉葉油素。
本發(fā)明進(jìn)一步公開了一種利用所述的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)生產(chǎn)桉葉油素的方法,包括以下步驟:(1)培養(yǎng)所述的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株;(2)采用固相微萃取方法從菌株所產(chǎn)生的揮發(fā)性氣體中萃取桉葉油素。
其中,步驟(1)培養(yǎng)環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株的培養(yǎng)基可以為PDA培養(yǎng)基,或者以農(nóng)林廢棄物的粉碎物作為主要成分的培養(yǎng)基;其中所述農(nóng)林廢棄物包括玉米秸稈、小麥秸稈、水稻秸稈、楊樹木屑或松樹木屑中的任意一種或多種,優(yōu)選為楊樹木屑。本發(fā)明對所述楊樹木屑的楊樹品種沒有特殊限制。本發(fā)明所述的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株在農(nóng)林廢棄物上能快速生長并產(chǎn)生桉葉油素。
步驟(1)所述培養(yǎng)的溫度為室溫,所述的室溫可以為15-30℃,優(yōu)選為25℃;所述培養(yǎng)的時間可以為24-240小時;優(yōu)選的,所述培養(yǎng)的時間120h-240h,更優(yōu)選為120h-168h。
步驟(2)所述萃取的時間可以為5-120min,優(yōu)選為40-120min,更優(yōu)選為60-120min,特別優(yōu)選為60-90min,最優(yōu)選為60min。
其中,所述的固相微萃取方法在室溫下進(jìn)行。所述固相微萃取方法所采用的萃取頭可以為纖維萃取頭,本發(fā)明對所述纖維萃取頭的型號沒有特殊限制。作為參考,所述纖維萃取頭可以為50/30μm,DVB/CAR/PDMS,Supelco。
本發(fā)明通過在玉米秸稈,小麥秸稈,楊樹木屑,水稻秸稈和松樹木屑5種農(nóng)林廢棄物等天然木質(zhì)纖維上接種所述的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050),通過GC-MS分析,最優(yōu)的天然木質(zhì)纖維為楊樹木屑。
本發(fā)明對環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)不同培養(yǎng)時間下桉葉油素的產(chǎn)量變化分析結(jié)果表明,在培養(yǎng)24-240小時的范圍內(nèi),環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株在培養(yǎng)120h-168h之間桉葉油素的產(chǎn)量達(dá)到最高。
本發(fā)明在相同進(jìn)樣條件下,對環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)所產(chǎn)生揮發(fā)性物質(zhì)的萃取時間進(jìn)行優(yōu)化篩選,分別采用5-120min等9種不同的萃取時間進(jìn)行萃取,結(jié)果發(fā)現(xiàn)隨著萃取時間的逐步升高,所檢測到桉葉油素的產(chǎn)量逐漸提高;其中,當(dāng)萃取時間為60min時,桉葉油素的產(chǎn)量達(dá)到最高,當(dāng)萃取時間超過60min后,桉葉油素的產(chǎn)量不再增長并呈略微下降的趨勢。因此,本發(fā)明的萃取時間最優(yōu)選為60min。本發(fā)明通過對所分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株的培養(yǎng)條件及揮發(fā)性產(chǎn)物的萃取時間進(jìn)行優(yōu)化,使所生產(chǎn)的桉葉油素量達(dá)到最高。
本發(fā)明技術(shù)方案與現(xiàn)有技術(shù)相比,具有以下有益效果:
本發(fā)明從海南尖峰嶺樟科植物樹枝中分離純化得到一株環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株,該菌株的揮發(fā)性產(chǎn)物中含有桉葉油素,而且在培養(yǎng)6天時產(chǎn)生桉葉油素的濃度達(dá)到0.764ppmv。本發(fā)明所分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株的桉葉油素產(chǎn)量高,該菌株能很好的降解利用纖維素基質(zhì),對于生物質(zhì)能源轉(zhuǎn)化利用將具有重要的應(yīng)用前景。
附圖說明
圖1為環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)的特殊揮發(fā)性成分分析的質(zhì)譜圖;
圖2為不同萃取時間下產(chǎn)生的桉葉油素的峰面積折線圖;
圖3為不同培養(yǎng)時間下1,8-cineole(桉葉油素)的產(chǎn)量變化;
圖4為以As/Ai(標(biāo)樣面積/內(nèi)標(biāo)面積)為橫坐標(biāo),Vs/Vi(標(biāo)樣體積/內(nèi)標(biāo)體積)為縱坐標(biāo)繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線;
圖5為環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)在楊樹木屑培養(yǎng)下?lián)]發(fā)性成分分析的質(zhì)譜圖。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合具體實(shí)施例來進(jìn)一步描述本發(fā)明,本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)和特點(diǎn)將會隨著描述而更為清楚。但是應(yīng)理解所述實(shí)施例僅是范例性的,不對本發(fā)明的范圍構(gòu)成任何限制。本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)該理解的是,在不偏離本發(fā)明的精神和范圍下可以對本發(fā)明技術(shù)方案的細(xì)節(jié)和形式進(jìn)行修改或替換,但這些修改或替換均落入本發(fā)明的保護(hù)范圍。
實(shí)施例1環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)的分離及鑒定
1、材料與方法
1.1菌株來源
海南尖峰嶺樟科植物樹枝。
1.2菌株的分離與鑒定
將采集到的樹枝表皮去掉,剪成2mm2大小的組織塊,用2%次氯酸鈉和75%的乙醇對組織進(jìn)行表面消毒,將已消毒的組織塊放入無菌水中清洗后接種到提前準(zhǔn)備好的水瓊脂培養(yǎng)基中;將分離得到的菌株在PDA培養(yǎng)基上進(jìn)行純化培養(yǎng),純化后的菌株進(jìn)行菌種保藏;將長有菌絲的培養(yǎng)基切成5mm2的小塊,然后放入經(jīng)過三次高壓滅菌的盛有無菌水的冷藏管中,密封,放入4℃保存。
用改進(jìn)后的CTAB法提取得到菌株的DNA:將培養(yǎng)基上的菌絲刮下來放入無菌的1.5mL離心管中放入-20℃冷藏,然后在拿出來解凍,反復(fù)凍融3-5次;用真菌通用引物ITS1/4(引物序列見White T J,Bruns T,Lee S,et al.Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics[J].PCR Protocols:a Guide to Methods and Applications,1990,18:315-322.)、EF1-983F/EF1-2218R(Rehner S A,Buckley E.A Beauveria phylogeny inferred from nuclear ITS and EF1-alpha sequences:evidence for cryptic diversification and links to Cordyceps teleomorphs.[J].Mycologia,2005,97(1):84-98.)、β-tubulin(O'Donnell K,Cigelnik E.Two divergent intragenomic rDNA ITS2types within a monophyletic lineage of the FungusFusariumAre nonorthologous[J].Molecular phylogenetics and evolution,1997,7(1):103-116.)、Actin-512F/783R(Glass N L,Donaldson G C.Development of primer sets designed for use with the PCR to amplify conserved genes from filamentous ascomycetes[J].Applied and Environmental Microbiology,1995,61(4):1323-1330.)4對引物來進(jìn)行PCR擴(kuò)增,將PCR產(chǎn)物送到測序公司測序;利用測序后得到的序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定菌株的分類地位。
1.3揮發(fā)性產(chǎn)物定性分析
將菌種接種到PDA培養(yǎng)基上,每個菌種重復(fù)三次;放在恒溫培養(yǎng)箱里,培養(yǎng)時間為5-10天。
GC-MS檢測揮發(fā)性氣體,用HP-5MS型毛細(xì)管柱(涂層:(5%苯基)-甲基聚硅氧烷,30.0m×0.25mm,涂層厚度:0.25μm)來分離揮發(fā)性氣體,氮?dú)鉃檩d氣。毛細(xì)管柱升溫程序如下:33℃維持2min,再以7℃/min的速率升溫至220℃維持7min。質(zhì)譜掃描速率為:5.0000scans/s。質(zhì)譜范圍41-560amu(原子質(zhì)量單位,atomic mass unit)。通過比較質(zhì)譜儀中NIST MS Search 2.0數(shù)據(jù)庫來鑒定揮發(fā)性物質(zhì)。
萃取步驟:萃取頭老化(氣相法),老化的溫度分別為柱溫150℃,后進(jìn)樣口250℃,前檢測器200℃,老化時間10min;萃取:用電鉆在培養(yǎng)皿的側(cè)面打孔,放在支架上,將老化后的萃取針平行插入,將萃取頭調(diào)出,萃取時間為40min;進(jìn)樣:當(dāng)離子元溫度為150℃,壓力為70時就可以進(jìn)樣,將萃取頭調(diào)回,從頂空瓶中取出,插入進(jìn)樣孔中,然后將萃取頭調(diào)出,停留大概40s后拔出萃取頭;將分析的結(jié)果保存。
1.4定量分析
1.4.1菌株培養(yǎng)
用打孔器取同心圓上的菌塊(直徑為0.5mm),接種在有10ml PDA(sigma)培養(yǎng)基9cm的培養(yǎng)皿中,在黑暗條件下25℃下培養(yǎng)5天。
1.4.2GC-FID定量分析參數(shù)設(shè)置
Agilent 7980GC-FID用HP-5MS型毛細(xì)管柱(涂層:(5%苯基)-甲基聚硅氧烷,30.0m×0.25mm,涂層厚度:0.25μm)來分離揮發(fā)性氣體。汽化溫度220℃恒壓20psi,不分流。柱溫35℃,保持2min,7℃/min升到220℃,保持7min;FID檢測器溫度250℃,H2:O2為40:400mL/min。
1.4.3標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
配置標(biāo)樣1,8-cineole(相對分子質(zhì)量154.24g/mol,密度為0.9267g/ml)和內(nèi)標(biāo)linalool(相對分子質(zhì)量154.25g/mol,密度為0.87g/ml)的混合液,用正己烷稀釋成5個不同濃度,但內(nèi)標(biāo)濃度不變,如下表1。用GC-FID做標(biāo)準(zhǔn)曲線,取混合液,進(jìn)樣1μL,每個樣重復(fù)三次。將實(shí)驗(yàn)得出每個樣中的峰面積取均值,以As/Ai為橫坐標(biāo),Vs/Vi為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并計算相對校正因子F。
表1 待測混合液的稀釋濃度
1.4.4測定樣品中1,8-cineole(桉葉油素)的含量
用電鉆在有樣品菌株的培養(yǎng)皿側(cè)面打孔,取濃度為0.0005μL/μL的linalool 1μL注射進(jìn)培養(yǎng)皿中,用封口膜封好口,將加入內(nèi)標(biāo)的培養(yǎng)皿放入25℃恒溫培養(yǎng)箱中1h,然后用纖維萃取頭(50/30μm DVB/CAR/PDMS,Supelco)在室溫下萃取60min,進(jìn)樣1min。每個菌株三個重復(fù)。根據(jù)繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣品中1,8-cineole的含量。
2、實(shí)驗(yàn)結(jié)果
2.1分類地位鑒定
由于菌株不產(chǎn)生孢子,因此只能通過分子手段確定其分類地位。通過4個基因位點(diǎn)的PCR序列在NCBI中blast的結(jié)果如表2所示,確定了菌株的OTU種,為Annulohypoxylon。本發(fā)明將分離的菌株命名為環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050(Annulohypoxylon sp.FPYF3050)。
表2 測序結(jié)果
2.2揮發(fā)性成分定性分析
2.2.1定性分析
通過GC-MS分析了環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050的特殊揮發(fā)性成分,從質(zhì)譜圖(圖1)中可以看到4種有效成分如表3,其中8.01和9.89這兩個保留時間的成分也存在空白對照中。
表3 有效揮發(fā)性成分
注:*表示該成分在空白對照中有存在。
本發(fā)明將分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050(Annulohypoxylon sp.FPYF3050),提交中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心進(jìn)行保藏,其微生物保藏編號為:CGMCC No.12771。
2.2.2最優(yōu)萃取時間
在相同的進(jìn)樣條件下,分別通過5min、10min、20min、30min、40min、50min、60min、90min、120min 9種不同的萃取時間進(jìn)行了最優(yōu)萃取時間篩選,結(jié)果見圖2。
從圖2的實(shí)驗(yàn)結(jié)果可見,分別采用5min、10min、20min、30min、40min、50min、60min、90min以及120min這9種不同的萃取時間進(jìn)行萃取,隨著萃取時間的逐步升高,所檢測到的桉葉油素的產(chǎn)量逐漸提高,其中,經(jīng)比較得出最優(yōu)且適合的萃取時間為60min。
2.2.3不同培養(yǎng)時間下桉葉油素的產(chǎn)量變化
通過在最優(yōu)的萃取時間檢測了環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050在1到10天培養(yǎng)下1,8-cineole(桉葉油素)的產(chǎn)量變化,結(jié)果顯示菌株的培養(yǎng)時間在120h和168h之間,1,8-cineole的產(chǎn)量達(dá)到最高,如圖3所示。
2.3揮發(fā)性成分定量分析
2.3.1環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050產(chǎn)生氣體的體積
培養(yǎng)皿的直徑為8.4cm,高為1.1cm,PDA培養(yǎng)基占用的體積為10mL,計算得到除菌絲及培養(yǎng)基外剩余的空間體積約為50mL。
2.3.2標(biāo)準(zhǔn)曲線和相對校正因子的計算
通過GC-FID檢測得到標(biāo)樣和內(nèi)標(biāo)的面積,已知加入標(biāo)樣和內(nèi)標(biāo)的質(zhì)量,以As/Ai(標(biāo)樣面積/內(nèi)標(biāo)面積)為橫坐標(biāo),Vs/Vi(標(biāo)樣體積/內(nèi)標(biāo)體積)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖4所示。
R稱為線性相關(guān)系數(shù),R值為0.9995表示X和Y之間的線性相關(guān)程度為99.95%,說明該線性關(guān)系可以來對樣品中的桉葉油素定量。
F校正因子計算公式為F=(Ai*Vs)/(As*Vi),本次檢測中F值為0.85。
2.3.3菌株產(chǎn)生的1,8-cineole(桉葉油素)的含量
根據(jù)GC-FID中得到的線性回歸方程和質(zhì)量相對校正因子,通過線性回歸方程得到質(zhì)量再與相對校正因子相乘得到環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050在生長6天時產(chǎn)生的1,8-cineole(桉葉油素)的質(zhì)量,再根據(jù)已知?dú)怏w占用的體積計算得到環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株FPYF3050產(chǎn)生1,8-cineole的濃度為0.764ppmv。
試驗(yàn)例1環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株在農(nóng)林廢棄物培養(yǎng)下產(chǎn)生桉葉油素
本發(fā)明分別在5種農(nóng)林廢棄物,包括:玉米秸稈、小麥秸稈、楊樹木屑、水稻秸稈和松樹木屑等天然木質(zhì)纖維上接種所述的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株(Annulohypoxylon sp.FPYF3050,微生物保藏編號為:CGMCC No.12771),通過GC-MS分析,最優(yōu)的天然木質(zhì)纖維為楊樹木屑(圖5),本發(fā)明所分離的環(huán)紋炭團(tuán)菌菌株在楊樹木屑培養(yǎng)基上能夠快速生長、桉葉油素產(chǎn)量高。