本發(fā)明涉及一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法。
背景技術(shù):
隨著測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,轉(zhuǎn)錄組和降解組的測(cè)序日漸普遍,作為二代測(cè)序技術(shù)的基礎(chǔ),文庫(kù)的構(gòu)建對(duì)測(cè)序結(jié)果起著決定性作用?,F(xiàn)在市場(chǎng)上已經(jīng)出現(xiàn)了很多種RNA文庫(kù)的構(gòu)建已經(jīng)很成熟,但是在植物中,對(duì)pre-miRNA 3’RACE-seq的文庫(kù)構(gòu)建方法還沒(méi)有報(bào)道。Pre-miRNA作為miRNA的前體,是miRNA加工過(guò)程中的重要中間產(chǎn)物,其3’段修飾對(duì)于成熟miRNA的形成至關(guān)重要,所以探明3’pre-miRNA的核苷酸的變化情況對(duì)于研究miRNA的形成具有重要的生物學(xué)意義。然而,由于植物中pre-miRNA的豐度很低,長(zhǎng)度較長(zhǎng)(100bp-600bp),且無(wú)ploy(A)結(jié)構(gòu),現(xiàn)成的建庫(kù)方法都無(wú)法適用于pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的構(gòu)建。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
針對(duì)上述不足之處,本發(fā)明提供一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,本方法采用SDS-PAGE進(jìn)行RNA的分離,添加3’端接頭,反轉(zhuǎn)錄,成功構(gòu)建了pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)。
本發(fā)明所采用的技術(shù)如下:一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,包括如下:
(1)、植物總RNA的提??;
(2)、RNA的準(zhǔn)備:
利用SDS-PAGE對(duì)所提取的植物總RNA進(jìn)行分離,對(duì)50bp-400bp之間的RNA進(jìn)行切膠回收;
(3)、連接:
回收好的RNA的長(zhǎng)度集中在50bp-400bp,通過(guò)連接酶在RNA的3’末端連接一種特殊的DNA接頭,序列如序列表SEQ ID No.1所示;
(4)、反轉(zhuǎn)錄:
利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒,對(duì)已經(jīng)加好接頭的RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄成cDNA;
(5)、巢式PCR反應(yīng):
利用5’端的特殊引物,以步驟(4)的反轉(zhuǎn)錄cDNA為模板,進(jìn)行第一輪PCR;PCR產(chǎn)物跑PAGE膠回收后,再利用第二輪引物進(jìn)行第二輪PCR,PCR產(chǎn)物回收后即可送去測(cè)序。
本發(fā)明還具有如下技術(shù)特征:如上步驟(5)所述的第一輪PCR,上引物如序列表SEQ ID No.2-SEQ ID No.79所示,下引物如序列表SEQ ID No.80所示;第二輪PCR,上引物如序列表SEQ ID No.81所示,下引物如序列表SEQ ID No.82所示。
本方法利用pre-miRNA 5’端的特殊引物設(shè)計(jì),巧妙的解決了以上問(wèn)題,構(gòu)建出了高質(zhì)量的pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)。本方法是一種利用SDS-PAGE RNA分離技術(shù)、3’-RACE加接頭技術(shù)和巢式PCR等技術(shù),通過(guò)5’端的特殊引物設(shè)計(jì),特異且全面的構(gòu)建3’pre-miRNA文庫(kù)的方法,利用該技術(shù)可通過(guò)二代高通量測(cè)序技術(shù)分析植物中pre-miRNA的3’端在不同的基因突變下的變化情況
附圖說(shuō)明
圖1為本發(fā)明建庫(kù)流程簡(jiǎn)圖。
具體實(shí)施方式
下面根據(jù)說(shuō)明書舉例對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步解釋:
實(shí)施例1
如圖1所示,一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,步驟如下
一、植物總RNA的提取
1、取100mg新鮮的植物組織于干凈的1.5mL離心管中。
2、將植物組織在液氮中速凍,用槍頭搗碎。
3、加入1mL TRIZOL上下顛倒混勻,室溫下靜置5min。
4、加入200μL氯仿,顛倒混勻,室溫靜置15min。
5、12000X g離心15min,吸取上清400μL。
6、加入400μL異丙醇,顛倒混勻,-20℃靜置30min淀RNA。
7、4℃,12000X g離心15min,棄上清。
8、加入1mL 75%的乙醇洗滌RNA,4℃,12000X g離心5min。
9、室溫干燥RNA,加入30μL ddH2O溶解RNA。
10、將提取的RNA存放于-80℃保存。
二、RNA的準(zhǔn)備(50-400)
1、配置15%尿素-PAGE膠,共15mL:
將膠倒入夾板,放上梳子,凝膠至少30min。
2、在30μL的總RNA中,加入等量的2×small RNA loading dye,混勻后70℃變性5min,然后立即放在冰上。
2×small RNA loading dye:80%formamide(甲酰胺);0.1%Xylene FF(二甲苯FF);0.1%Brophenol Blue(溴酚藍(lán))
3、點(diǎn)樣,并加入10μL 10bp的DNA marker,150V電泳1-1.5h。(Running buffer:0.5×TBE)
4、EB染色5min。
5、切膠,回收50-400bp的膠到1.5mL離心管,并用1mL的槍頭將膠磋碎。
6、加入500μL 0.4N NaCl-DEPC到離心管,并確保膠在翻轉(zhuǎn)離心管的時(shí)候能夠流動(dòng)。
7、4℃保持持離心管翻轉(zhuǎn)6h或者過(guò)夜。
8、4℃,13200r/m離心1min,將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管中。重復(fù)2-3次,直到去除所有的膠。
9、加入1μL Glycogen(糖元),50μL NaOAc和1mL 100%乙醇,混勻后放入-20℃6h或者過(guò)夜。
10、離心并用70%的乙醇洗滌RNA。
11、用20μL DEPC-水溶解RNA,此RNA用來(lái)建庫(kù)。
三、連接
(一)連接
上述連接體系中Linker的序列為:
5′-rAppTGGAATTCTCGGGTGCCAAGG–NH2-3′;
反應(yīng)條件:
1、25℃反應(yīng)2h。
2、65℃反應(yīng)20min使酶變性。
(二)回收(50bp–420bp)
1、配置15%尿素-PAGE膠。
2、在30μL的總RNA中,加入等量的2×small RNA loading dye,混勻后70℃變性5min,然后立即放在冰上。
3、點(diǎn)樣,并加入10μL 10bp的DNA marker,150V電泳1-1.5h。
4、EB染色5min。
5、切膠,回收50-400bp或者50-250bp的膠到1.5mL離心管,并用1mL槍頭將膠戳碎。
6、加入500μL 0.4N NaCl-DEPC到離心管,并確保膠在翻轉(zhuǎn)離心管的時(shí)候能夠流動(dòng)。
7、4℃保持離心管翻轉(zhuǎn)6h或者過(guò)夜。
8、4℃,13200r/m離心1min,將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管中。重復(fù)2-3次,直到去除所有的膠。
9、加入1μL Glycogen(糖元),50μL NaOAc和1mL 100%乙醇,混勻后放入-20℃6h或者過(guò)夜。
10、離心并用70%的乙醇洗RNA,烘干后溶于20μL DEPC-水,-80℃保存。
四、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)
(一)反轉(zhuǎn)錄
1.預(yù)變性
Ligated RNA 12μL
RT Primer 1μL
70℃反應(yīng)10min,迅速放冰上2min。
2、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(20μL體系)
30℃10min,42℃1h,70℃15min變性后,4℃保存。
(二)回收
12%的native polyacrylamide gel回收50-420bp的片段。
制備12%的PAGE膠(共15mL)
1、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker。
2、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h。
3、切50-420bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA。
4、離心,洗滌,干燥。
5、用70%的乙醇洗DNA,烘干后溶于20μL DEPC-水,-80℃保存。
五、巢式PCR反應(yīng)
兩輪PCR反應(yīng)(LA Taq)
(一)第一輪10個(gè)循環(huán)(20μL體系)
引物:
Sense:1st PCR Forward primer(將以下78條引物混合)
PCR反應(yīng)體系:
反應(yīng)條件:98℃預(yù)變性3min;98℃變性10s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共10個(gè)循環(huán);72℃終延伸5min,12℃∞。
(二)回收
12%的native polyacrylamide gel回收50-200bp的片段。
1、制備12%的PAGE膠
2、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker。
3、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h;
4、切50-200bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA;
5、離心,洗滌,干燥;
6、用20-30μL的水溶解DNA。
(三)第二輪PCR(16個(gè)循環(huán))
引物:
Sense:2nd PCR Forward primer:
AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACGTTCAGAGTTCTACAGTCCGA2nd PCR Anti-sense Anti-sense:
CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATCGTGATGTGACTGGAGTTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA
PCR體系:(20μL體系)
反應(yīng)條件:98℃預(yù)變性3min;98℃變性10s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共16個(gè)循環(huán);72℃終延伸5min,12℃∞。
(四)回收(12%的native polyacrylamide gel回收100-300bp的片段)
1、制備12%的PAGE膠
2、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker
3、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h。
4、切100-300bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA。
5、離心,洗滌,干燥。
6、用20-30μL的水溶解DNA,用以測(cè)序。
<110>深圳大學(xué)
<120>一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法
<160> 82
<210> 1
<211>21
<212>DNA
<213>Linker
<400> 1
TGGAATTCTC GGGTGCCAAG G
<210> 2
<211>38
<212>DNA
<213>miR156a
<400> 2
GAGTTCTACA GTCCGACGAT CCACAAAGGC AATTTGCA
<210> 3
<211>44
<212>DNA
<213>miR156b
<400> 3
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTCT ATAACTTTGC GTGT
<210> 4
<211>43
<212>DNA
<213>miR156c
<400> 4
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGCA CTTTGCATGT TCG
<210> 5
<211>47
<212>DNA
<213>miR156d
<400> 5
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGAA GTTGTATAAA AGTTTTG
<210> 6
<211>43
<212>DNA
<213>miR156e
<400> 6
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCATG GTGGTTTCTT GCA
<210> 7
<211>43
<212>DNA
<213>miR156f
<400> 7
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGG TGGCTTTCTT GCA
<210>8
<211>43
<212>DNA
<213>miR156h
<400>8
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCAC AACCTGGGAT TAG
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<211>49
<212>DNA
<213>miR157a
<400> 9
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGAT GATGAGATAC AATTCGGAG
<210> 10
<211>49
<212>DNA
<213>miR157b
<400> 10
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCAGA TGATAAGATA CAATTCCTC
<210> 11
<211>43
<212>DNA
<213>miR157c
<400> 11
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTCT ACTCTTTTGT GCT
<210> 12
<211>49
<212>DNA
<213>miR157d
<400> 12
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAAGA GCTAGAAGAC TATCTGCAT
<210> 13
<211>49
<212>DNA
<213>miR158a
<400> 13
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTC TTTGTCTACA ATTTTGGAA
<210> 14
<211>43
<212>DNA
<213>miR158b
<400> 14
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG AAAAGGTGAT GAT
<210> 15
<211>45
<212>DNA
<213>miR159b
<400> 15
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGCT TTCACTTACC CCTTT
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<211>43
<212>DNA
<213>miR160a
<400> 16
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<211>43
<212>DNA
<213>miR160b
<400> 17
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGCC TGGCTCCCTG TAT
<210> 18
<211>43
<212>DNA
<213>miR160c
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCCTG GCTCCCTGTA TGC
<210> 19
<211>48
<212>DNA
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<400> 19
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<211>43
<212>DNA
<213>miR162b
<400> 20
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGA GGCAGCGGTT CAT
<210>21
<211>43
<212>DNA
<213>miR163
<400>21
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGAG CACGGTCGAA GAA
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<211>47
<212>DNA
<213>miR164a
<400>22
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCAAA CCAACAAACA CGAAATC
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<211>43
<212>DNA
<213>miR164b
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGC GGAATTTTGT GAT
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<211>43
<212>DNA
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGA GAAGCAGGGC ACG
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<212>DNA
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<210>26
<211>43
<212>DNA
<213>miR165b
<400>26
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCCA CATGGTATCG TCG
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<211>46
<212>DNA
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<400>27
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCTA ACAATCGAAT TGAACC
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<211>43
<212>DNA
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<400>28
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTGG CTCGAGGACT CTT
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<211>44
<212>DNA
<213>miR166e
<400>29
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTCT TCTTTATTCA TTAG
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<211>43
<212>DNA
<213>miR166f
<400>30
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGAAT GATGCCTGGC TCG
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<211>43
<212>DNA
<213>miR166g
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGC TCGAGGTCAT GGA
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<211>45
<212>DNA
<213>miR167a
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<211>46
<212>DNA
<213>miR167c
<400>33
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATAT TTCTTGTTCT TACAAG
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<211>45
<212>DNA
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<400>34
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG TTTGTGAGCA GGGAT
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<212>DNA
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<212>DNA
<213>miR169d
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<210>38
<211>47
<212>DNA
<213>miR169f
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTCA CAATCTGTTG ATTCGTG
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<211>45
<212>DNA
<213>miR169h
<400>39
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGTT GGTCGTCAGG CAGTC
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<211>43
<212>DNA
<213>miR169i
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGA CCATTTTGCT TAT
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<211>45
<212>DNA
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<400>41
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<210>42
<211>43
<212>DNA
<213>miR169k
<400>42
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATA GACATCAGGC AGT
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<211>47
<212>DNA
<213>miR169m
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<210>44
<211>45
<212>DNA
<213>miR169n
<400>44
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGTT GAATCTTGCG GGTTA
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<211>43
<212>DNA
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<400>45
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<213>miR171a
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTTC ACTCAGATCT TACCTGACC
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<211>46
<212>DNA
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<211>43
<212>DNA
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<211>43
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<212>DNA
<213>miR172e
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<210>53
<211>43
<212>DNA
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<210>54
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<212>DNA
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<210>55
<211>43
<212>DNA
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<210>56
<211>43
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<211>43
<212>DNA
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<211>43
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<211>44
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<400>65
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCACGG CTGTAATGAC GCT
<210>66
<211>44
<212>DNA
<213>miR398c
<400>66
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCGAG CAATCAACGG CTAT
<210>67
<211>43
<212>DNA
<213>miR399c
<400>67
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCAG GCGACTTGGC TAT
<210>68
<211>44
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<213>miR400
<400>68
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCAC TACATTTGGT AAGC
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<211>43
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<213>miR403
<400>69
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATTC AACAGGCTTT ATG
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<211>43
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<213>miR408
<400>70
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCCTC TTCCCTGGCT CCC
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<211>43
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<211>43
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<213>miR824
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<213>miR837
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GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTACA CTCATAATCT TGAAACGAA
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<213>miR844
<400>76
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTC TACGCATTGG GCTTA
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<213>miR846
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<211>45
<212>DNA
<213>miR851
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<212>DNA
<213>miR864
<400>79
GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAAAT ACCTTGAAAC TATAAACC
<210>80
<211>22
<212>DNA
<213>Anti-sense
<400>80
GCCTTGGCAC CCGAGAATTC CA
<210>81
<211>50
<212>DNA
<213>2nd PCR Forward primer
<400>81
AATGATACGG CGACCACCGA GATCTACACG TTCAGAGTTC TACAGTCCGA
<210>82
<211>63
<212>DNA
<213>2nd PCR Anti-sense
<400>82
CAAGCAGAAG ACGGCATACG AGATCGTGAT GTGACTGGAG TTCCTTGGCA CCCGAGAATT 60
CCA 63