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一種構(gòu)建植物中pre?miRNA3`RACE?seq文庫(kù)的方法與流程

文檔序號(hào):12416782閱讀:577來(lái)源:國(guó)知局

本發(fā)明涉及一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法。



背景技術(shù):

隨著測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,轉(zhuǎn)錄組和降解組的測(cè)序日漸普遍,作為二代測(cè)序技術(shù)的基礎(chǔ),文庫(kù)的構(gòu)建對(duì)測(cè)序結(jié)果起著決定性作用?,F(xiàn)在市場(chǎng)上已經(jīng)出現(xiàn)了很多種RNA文庫(kù)的構(gòu)建已經(jīng)很成熟,但是在植物中,對(duì)pre-miRNA 3’RACE-seq的文庫(kù)構(gòu)建方法還沒(méi)有報(bào)道。Pre-miRNA作為miRNA的前體,是miRNA加工過(guò)程中的重要中間產(chǎn)物,其3’段修飾對(duì)于成熟miRNA的形成至關(guān)重要,所以探明3’pre-miRNA的核苷酸的變化情況對(duì)于研究miRNA的形成具有重要的生物學(xué)意義。然而,由于植物中pre-miRNA的豐度很低,長(zhǎng)度較長(zhǎng)(100bp-600bp),且無(wú)ploy(A)結(jié)構(gòu),現(xiàn)成的建庫(kù)方法都無(wú)法適用于pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的構(gòu)建。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

針對(duì)上述不足之處,本發(fā)明提供一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,本方法采用SDS-PAGE進(jìn)行RNA的分離,添加3’端接頭,反轉(zhuǎn)錄,成功構(gòu)建了pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)。

本發(fā)明所采用的技術(shù)如下:一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,包括如下:

(1)、植物總RNA的提??;

(2)、RNA的準(zhǔn)備:

利用SDS-PAGE對(duì)所提取的植物總RNA進(jìn)行分離,對(duì)50bp-400bp之間的RNA進(jìn)行切膠回收;

(3)、連接:

回收好的RNA的長(zhǎng)度集中在50bp-400bp,通過(guò)連接酶在RNA的3’末端連接一種特殊的DNA接頭,序列如序列表SEQ ID No.1所示;

(4)、反轉(zhuǎn)錄:

利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒,對(duì)已經(jīng)加好接頭的RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄成cDNA;

(5)、巢式PCR反應(yīng):

利用5’端的特殊引物,以步驟(4)的反轉(zhuǎn)錄cDNA為模板,進(jìn)行第一輪PCR;PCR產(chǎn)物跑PAGE膠回收后,再利用第二輪引物進(jìn)行第二輪PCR,PCR產(chǎn)物回收后即可送去測(cè)序。

本發(fā)明還具有如下技術(shù)特征:如上步驟(5)所述的第一輪PCR,上引物如序列表SEQ ID No.2-SEQ ID No.79所示,下引物如序列表SEQ ID No.80所示;第二輪PCR,上引物如序列表SEQ ID No.81所示,下引物如序列表SEQ ID No.82所示。

本方法利用pre-miRNA 5’端的特殊引物設(shè)計(jì),巧妙的解決了以上問(wèn)題,構(gòu)建出了高質(zhì)量的pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)。本方法是一種利用SDS-PAGE RNA分離技術(shù)、3’-RACE加接頭技術(shù)和巢式PCR等技術(shù),通過(guò)5’端的特殊引物設(shè)計(jì),特異且全面的構(gòu)建3’pre-miRNA文庫(kù)的方法,利用該技術(shù)可通過(guò)二代高通量測(cè)序技術(shù)分析植物中pre-miRNA的3’端在不同的基因突變下的變化情況

附圖說(shuō)明

圖1為本發(fā)明建庫(kù)流程簡(jiǎn)圖。

具體實(shí)施方式

下面根據(jù)說(shuō)明書舉例對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步解釋:

實(shí)施例1

如圖1所示,一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法,步驟如下

一、植物總RNA的提取

1、取100mg新鮮的植物組織于干凈的1.5mL離心管中。

2、將植物組織在液氮中速凍,用槍頭搗碎。

3、加入1mL TRIZOL上下顛倒混勻,室溫下靜置5min。

4、加入200μL氯仿,顛倒混勻,室溫靜置15min。

5、12000X g離心15min,吸取上清400μL。

6、加入400μL異丙醇,顛倒混勻,-20℃靜置30min淀RNA。

7、4℃,12000X g離心15min,棄上清。

8、加入1mL 75%的乙醇洗滌RNA,4℃,12000X g離心5min。

9、室溫干燥RNA,加入30μL ddH2O溶解RNA。

10、將提取的RNA存放于-80℃保存。

二、RNA的準(zhǔn)備(50-400)

1、配置15%尿素-PAGE膠,共15mL:

將膠倒入夾板,放上梳子,凝膠至少30min。

2、在30μL的總RNA中,加入等量的2×small RNA loading dye,混勻后70℃變性5min,然后立即放在冰上。

2×small RNA loading dye:80%formamide(甲酰胺);0.1%Xylene FF(二甲苯FF);0.1%Brophenol Blue(溴酚藍(lán))

3、點(diǎn)樣,并加入10μL 10bp的DNA marker,150V電泳1-1.5h。(Running buffer:0.5×TBE)

4、EB染色5min。

5、切膠,回收50-400bp的膠到1.5mL離心管,并用1mL的槍頭將膠磋碎。

6、加入500μL 0.4N NaCl-DEPC到離心管,并確保膠在翻轉(zhuǎn)離心管的時(shí)候能夠流動(dòng)。

7、4℃保持持離心管翻轉(zhuǎn)6h或者過(guò)夜。

8、4℃,13200r/m離心1min,將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管中。重復(fù)2-3次,直到去除所有的膠。

9、加入1μL Glycogen(糖元),50μL NaOAc和1mL 100%乙醇,混勻后放入-20℃6h或者過(guò)夜。

10、離心并用70%的乙醇洗滌RNA。

11、用20μL DEPC-水溶解RNA,此RNA用來(lái)建庫(kù)。

三、連接

(一)連接

上述連接體系中Linker的序列為:

5′-rAppTGGAATTCTCGGGTGCCAAGG–NH2-3′;

反應(yīng)條件:

1、25℃反應(yīng)2h。

2、65℃反應(yīng)20min使酶變性。

(二)回收(50bp–420bp)

1、配置15%尿素-PAGE膠。

2、在30μL的總RNA中,加入等量的2×small RNA loading dye,混勻后70℃變性5min,然后立即放在冰上。

3、點(diǎn)樣,并加入10μL 10bp的DNA marker,150V電泳1-1.5h。

4、EB染色5min。

5、切膠,回收50-400bp或者50-250bp的膠到1.5mL離心管,并用1mL槍頭將膠戳碎。

6、加入500μL 0.4N NaCl-DEPC到離心管,并確保膠在翻轉(zhuǎn)離心管的時(shí)候能夠流動(dòng)。

7、4℃保持離心管翻轉(zhuǎn)6h或者過(guò)夜。

8、4℃,13200r/m離心1min,將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管中。重復(fù)2-3次,直到去除所有的膠。

9、加入1μL Glycogen(糖元),50μL NaOAc和1mL 100%乙醇,混勻后放入-20℃6h或者過(guò)夜。

10、離心并用70%的乙醇洗RNA,烘干后溶于20μL DEPC-水,-80℃保存。

四、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)

(一)反轉(zhuǎn)錄

1.預(yù)變性

Ligated RNA 12μL

RT Primer 1μL

70℃反應(yīng)10min,迅速放冰上2min。

2、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(20μL體系)

30℃10min,42℃1h,70℃15min變性后,4℃保存。

(二)回收

12%的native polyacrylamide gel回收50-420bp的片段。

制備12%的PAGE膠(共15mL)

1、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker。

2、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h。

3、切50-420bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA。

4、離心,洗滌,干燥。

5、用70%的乙醇洗DNA,烘干后溶于20μL DEPC-水,-80℃保存。

五、巢式PCR反應(yīng)

兩輪PCR反應(yīng)(LA Taq)

(一)第一輪10個(gè)循環(huán)(20μL體系)

引物:

Sense:1st PCR Forward primer(將以下78條引物混合)

PCR反應(yīng)體系:

反應(yīng)條件:98℃預(yù)變性3min;98℃變性10s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共10個(gè)循環(huán);72℃終延伸5min,12℃∞。

(二)回收

12%的native polyacrylamide gel回收50-200bp的片段。

1、制備12%的PAGE膠

2、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker。

3、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h;

4、切50-200bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA;

5、離心,洗滌,干燥;

6、用20-30μL的水溶解DNA。

(三)第二輪PCR(16個(gè)循環(huán))

引物:

Sense:2nd PCR Forward primer:

AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACGTTCAGAGTTCTACAGTCCGA2nd PCR Anti-sense Anti-sense:

CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATCGTGATGTGACTGGAGTTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA

PCR體系:(20μL體系)

反應(yīng)條件:98℃預(yù)變性3min;98℃變性10s,60℃退火30s,72℃延伸30s,共16個(gè)循環(huán);72℃終延伸5min,12℃∞。

(四)回收(12%的native polyacrylamide gel回收100-300bp的片段)

1、制備12%的PAGE膠

2、加入10μL 6×DNA loading dye到PCR產(chǎn)物中,將所有的DNA點(diǎn)入膠孔,同時(shí)點(diǎn)上10μL 10bp DNA marker

3、進(jìn)行凝膠電泳150V,1.5h。

4、切100-300bp的DNA條帶,用回收小RNA的方法回收DNA。

5、離心,洗滌,干燥。

6、用20-30μL的水溶解DNA,用以測(cè)序。

<110>深圳大學(xué)

<120>一種構(gòu)建植物中pre-miRNA 3’RACE-seq文庫(kù)的方法

<160> 82

<210> 1

<211>21

<212>DNA

<213>Linker

<400> 1

TGGAATTCTC GGGTGCCAAG G

<210> 2

<211>38

<212>DNA

<213>miR156a

<400> 2

GAGTTCTACA GTCCGACGAT CCACAAAGGC AATTTGCA

<210> 3

<211>44

<212>DNA

<213>miR156b

<400> 3

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTCT ATAACTTTGC GTGT

<210> 4

<211>43

<212>DNA

<213>miR156c

<400> 4

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGCA CTTTGCATGT TCG

<210> 5

<211>47

<212>DNA

<213>miR156d

<400> 5

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGAA GTTGTATAAA AGTTTTG

<210> 6

<211>43

<212>DNA

<213>miR156e

<400> 6

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCATG GTGGTTTCTT GCA

<210> 7

<211>43

<212>DNA

<213>miR156f

<400> 7

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGG TGGCTTTCTT GCA

<210>8

<211>43

<212>DNA

<213>miR156h

<400>8

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCAC AACCTGGGAT TAG

<210> 9

<211>49

<212>DNA

<213>miR157a

<400> 9

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGAT GATGAGATAC AATTCGGAG

<210> 10

<211>49

<212>DNA

<213>miR157b

<400> 10

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCAGA TGATAAGATA CAATTCCTC

<210> 11

<211>43

<212>DNA

<213>miR157c

<400> 11

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTCT ACTCTTTTGT GCT

<210> 12

<211>49

<212>DNA

<213>miR157d

<400> 12

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAAGA GCTAGAAGAC TATCTGCAT

<210> 13

<211>49

<212>DNA

<213>miR158a

<400> 13

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTC TTTGTCTACA ATTTTGGAA

<210> 14

<211>43

<212>DNA

<213>miR158b

<400> 14

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG AAAAGGTGAT GAT

<210> 15

<211>45

<212>DNA

<213>miR159b

<400> 15

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGCT TTCACTTACC CCTTT

<210> 16

<211>43

<212>DNA

<213>miR160a

<400> 16

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCCT GGCTCCCTGT ATG

<210> 17

<211>43

<212>DNA

<213>miR160b

<400> 17

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGCC TGGCTCCCTG TAT

<210> 18

<211>43

<212>DNA

<213>miR160c

<400> 18

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCCTG GCTCCCTGTA TGC

<210> 19

<211>48

<212>DNA

<213>miR162a

<400> 19

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATG TAAAAGCATG AATAGATC

<210> 20

<211>43

<212>DNA

<213>miR162b

<400> 20

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGA GGCAGCGGTT CAT

<210>21

<211>43

<212>DNA

<213>miR163

<400>21

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGAG CACGGTCGAA GAA

<210>22

<211>47

<212>DNA

<213>miR164a

<400>22

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCAAA CCAACAAACA CGAAATC

<210>23

<211>43

<212>DNA

<213>miR164b

<400>23

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGC GGAATTTTGT GAT

<210>24

<211>43

<212>DNA

<213>miR164c

<400>24

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGA GAAGCAGGGC ACG

<210>25

<211>43

<212>DNA

<213>miR165a

<400>25

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTTG TCTGGATCGA GGA

<210>26

<211>43

<212>DNA

<213>miR165b

<400>26

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCCA CATGGTATCG TCG

<210>27

<211>46

<212>DNA

<213>miR166a

<400>27

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCTA ACAATCGAAT TGAACC

<210>28

<211>43

<212>DNA

<213>miR166b

<400>28

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTGG CTCGAGGACT CTT

<210>29

<211>44

<212>DNA

<213>miR166e

<400>29

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTCT TCTTTATTCA TTAG

<210>30

<211>43

<212>DNA

<213>miR166f

<400>30

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGAAT GATGCCTGGC TCG

<210>31

<211>43

<212>DNA

<213>miR166g

<400>31

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGC TCGAGGTCAT GGA

<210>32

<211>45

<212>DNA

<213>miR167a

<400>32

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTT CTTTATCCTT TGTTG

<210>33

<211>46

<212>DNA

<213>miR167c

<400>33

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATAT TTCTTGTTCT TACAAG

<210>34

<211>45

<212>DNA

<213>miR168a

<400>34

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG TTTGTGAGCA GGGAT

<210>35

<211>43

<212>DNA

<213>miR168b

<400>35

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG CTGACACCGA CAC

<210>36

<211>44

<212>DNA

<213>miR169a

<400>36

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTCC GTATAAAATA CAAG

<210>37

<211>49

<212>DNA

<213>miR169d

<400>37

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCACAA ATCTTAACTG ATTTTGGTG

<210>38

<211>47

<212>DNA

<213>miR169f

<400>38

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTCA CAATCTGTTG ATTCGTG

<210>39

<211>45

<212>DNA

<213>miR169h

<400>39

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGTT GGTCGTCAGG CAGTC

<210>40

<211>43

<212>DNA

<213>miR169i

<400>40

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGA CCATTTTGCT TAT

<210>41

<211>45

<212>DNA

<213>miR169j

<400>41

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGTT GAATCTTGCG GGTTA

<210>42

<211>43

<212>DNA

<213>miR169k

<400>42

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATA GACATCAGGC AGT

<210>43

<211>47

<212>DNA

<213>miR169m

<400>43

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTCA TCAAAAGACA TCAGGCA

<210>44

<211>45

<212>DNA

<213>miR169n

<400>44

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGTT GAATCTTGCG GGTTA

<210>45

<211>43

<212>DNA

<213>miR170

<400>45

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGC CTGGTTCACT CAG

<210>46

<211>49

<212>DNA

<213>miR171a

<400>46

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTTC ACTCAGATCT TACCTGACC

<210>47

<211>46

<212>DNA

<213>miR171b

<400>47

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGTT CAATCAAATA GTCGTC

<210>48

<211>43

<212>DNA

<213>miR171c

<400>48

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGTG CGGTTCAATC AGA

<210>49

<211>43

<212>DNA

<213>miR172a

<400>49

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATGG ACGGTGGTGA TTC

<210>50

<211>47

<212>DNA

<213>miR172b

<400>50

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCACAT GGAAATTGAT AAATACC

<210>51

<211>43

<212>DNA

<213>miR172d

<400>51

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGGT TTTCTTTTGA GCC

<210>52

<211>43

<212>DNA

<213>miR172e

<400>52

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGTTC CCTTTGCTTT CGC

<210>53

<211>43

<212>DNA

<213>miR173

<400>53

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTACT TTCGCTTGCA GAG

<210>54

<211>47

<212>DNA

<213>miR319b

<400>54

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAAAT GAATGAATGA TGCGAGA

<210>55

<211>43

<212>DNA

<213>miR390a

<400>55

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCGCC ATGATGATCA CAT

<210>56

<211>43

<212>DNA

<213>miR390b

<400>56

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGGC TCACCAGTGC TGT

<210>57

<211>43

<212>DNA

<213>miR391

<400>57

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAGTG GTGACGGTAT CTC

<210>58

<211>43

<212>DNA

<213>miR393a

<400>58

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG CAAATAAATC ACA

<210>59

<211>43

<212>DNA

<213>miR393b

<400>59

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCAA TCGAAAGATG GAA

<210>60

<211>43

<212>DNA

<213>miR394a

<400>60

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCAT TCTGTCCACC TCC

<210>61

<211>49

<212>DNA

<213>miR394b

<400>61

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATA AGTGTACGTA TCTACGGTG

<210>62

<211>44

<212>DNA

<213>miR396a

<400>62

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTA CGCATAAAAT AGTG

<210>63

<211>46

<212>DNA

<213>miR396b

<400>63

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCTT AAACAAAAGT AAGAAG

<210>64

<211>43

<212>DNA

<213>miR398a

<400>64

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGAG TGGCATGTGA ACA

<210>65

<211>43

<212>DNA

<213>miR398b

<400>65

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCACGG CTGTAATGAC GCT

<210>66

<211>44

<212>DNA

<213>miR398c

<400>66

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCGAG CAATCAACGG CTAT

<210>67

<211>43

<212>DNA

<213>miR399c

<400>67

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGCAG GCGACTTGGC TAT

<210>68

<211>44

<212>DNA

<213>miR400

<400>68

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTCAC TACATTTGGT AAGC

<210>69

<211>43

<212>DNA

<213>miR403

<400>69

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCATTC AACAGGCTTT ATG

<210>70

<211>43

<212>DNA

<213>miR408

<400>70

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCCTC TTCCCTGGCT CCC

<210>71

<211>43

<212>DNA

<213>miR5663

<400>71

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCGGAT TTGCATTCTC ATG

<210>72

<211>43

<212>DNA

<213>miR822

<400>72

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATG CTTTCTACAG GAA

<210>73

<211>43

<212>DNA

<213>miR824

<400>73

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTTGG GGAGTGGGGA GAT

<210>74

<211>49

<212>DNA

<213>miR837

<400>74

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTACA CTCATAATCT TGAAACGAA

<210>75

<211>43

<212>DNA

<213>miR840

<400>75

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAATC CGCACGATGA TCT

<210>76

<211>45

<212>DNA

<213>miR844

<400>76

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCCTTC TACGCATTGG GCTTA

<210>77

<211>49

<212>DNA

<213>miR846

<400>77

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTAGT TTTGAATTGA AGTGCTTGA

<210>78

<211>45

<212>DNA

<213>miR851

<400>78

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCTGAA AACAATCATC ACGAG

<210>79

<211>48

<212>DNA

<213>miR864

<400>79

GTTCAGAGTT CTACAGTCCG ACGATCAAAT ACCTTGAAAC TATAAACC

<210>80

<211>22

<212>DNA

<213>Anti-sense

<400>80

GCCTTGGCAC CCGAGAATTC CA

<210>81

<211>50

<212>DNA

<213>2nd PCR Forward primer

<400>81

AATGATACGG CGACCACCGA GATCTACACG TTCAGAGTTC TACAGTCCGA

<210>82

<211>63

<212>DNA

<213>2nd PCR Anti-sense

<400>82

CAAGCAGAAG ACGGCATACG AGATCGTGAT GTGACTGGAG TTCCTTGGCA CCCGAGAATT 60

CCA 63

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