本發(fā)明屬生物醫(yī)藥檢驗領(lǐng)域,具體涉及經(jīng)修飾的KatG蛋白在制備檢測INH耐藥結(jié)核桿菌制劑中的應(yīng)用,本發(fā)明可用于建立檢測包含耐受異煙肼(INH)的耐藥結(jié)核桿菌和耐藥結(jié)核病的方法。
背景技術(shù):
現(xiàn)有技術(shù)公開了結(jié)核病是由結(jié)核桿菌(Mycobacterium tuberculosis,MTB)引起的一種發(fā)病率及死亡率比較高的慢性傳染病。目前結(jié)核病的治療主要依賴WHO推薦的Dots方案,連續(xù)2個月用異煙肼(INH),利福平(RIF),乙胺丁醇(EMB)和丙嗪酰胺(PZA)四種一線藥物治療后,再繼續(xù)用INH和RIF治療4-6個月。實踐顯示,還疾患的治療療程長和用藥負擔重使得病人服藥的依從性較差,導致大量耐藥結(jié)核病的出現(xiàn),給結(jié)核病的防控帶來了更加嚴峻的形勢。
報道顯示,中國是27個高負擔耐藥結(jié)核的國家中病例數(shù)最多的兩個國家之一,2007年全國的結(jié)核病流行病學調(diào)查顯示,34.2%的新發(fā)病例和54.5%的復發(fā)病例為耐藥結(jié)核桿菌感染(至少耐受一種一線藥物),其中5.7%的新發(fā)病例和25.6%的復發(fā)病例是耐多藥結(jié)核(multidrug resistance,MDR-TB,至少同時耐受利福平和異煙肼)(Yanlin Zhao等,NEnglJMed2012;366:2161-70.)。對于MDR-TB以及廣泛耐藥結(jié)核病(extensively drug resistant tuberculosis,XDR-TB)的治療,需要從標準療程延長到兩年甚至更長時間。而且,由于結(jié)核桿菌耐藥模式的診斷方法和技術(shù)還不能滿足臨床診斷需求,進而帶來對耐藥結(jié)核病患者治療方案的不確定性,也導致耐藥結(jié)核的治療效果明顯下降,復治率增多(Pietersen E等,Lancet.2014;383:1230–9.和Winston CA等,Emerg Infect Dis 2012;18:1201–2.)。
結(jié)核桿菌與其他病原細菌的耐藥機制不同,研究表明結(jié)核桿菌的耐藥模式不是耐藥質(zhì)?;蚰退幓虻乃睫D(zhuǎn)移引起的,而主要集中在細菌基因組相關(guān)序列 的突變。RIF的作用靶標是編碼RNA轉(zhuǎn)錄酶B的rpoB基因,rpoB基因的突變或缺失會影響RIF與靶蛋白RpoB的結(jié)合,從而導致結(jié)核桿菌對RIF的耐受。INH是抗結(jié)核藥物組合中殺菌活性最強的藥物,INH自身是一種前體藥物,進入菌體后需要在過氧化氫-過氧化物酶(KatG)的作用下,INH才能轉(zhuǎn)化成具有殺菌活性的有效分子異煙酸。在katG基因發(fā)生突變或缺失時,過氧化氫-過氧化物酶活性下降甚至喪失,阻礙了異煙肼轉(zhuǎn)化為活性形式,從而導致結(jié)核桿菌INH耐藥的出現(xiàn)(Zhang Y等,Nature 1992;358:591–593.)。
大量臨床INH耐藥菌與突變基因相關(guān)性研究發(fā)現(xiàn),約有63-90.1%的INH耐藥菌是由于katG基因的突變導致,且突變位點也比較復雜和多樣,除katG315外,其他katG65,329,333,394,413等不同位點的突變均與結(jié)核桿菌INH藥物耐受相關(guān);有報道涉及包括inhA、aphC及kasA等其他基因與INH耐藥相關(guān),如inhA基因的啟動子區(qū)發(fā)生突變,但隨后也發(fā)現(xiàn)在INH敏感菌株中也存在這些基因的突變,且在INH耐藥菌中的突變也多伴隨著katG基因的同時突變(Lee AS等,Antimicrob Agents Chemother 2001;45:2157–2159.和Mdluli K等,Science 1998;280:1607–1610.和Banerjee A,Science 1994;263:227–230.);隨著全基因組測序技術(shù)的使用,有研究發(fā)現(xiàn)另外一些基因突變可能與INH耐藥相關(guān),但突變多屬于低頻率突變且這些基因突變與INH耐藥性的直接相關(guān)性也并沒有得到生物學的驗證(Shekar S等,PLoS ONE 2014;9(7):e102383.);因此目前臨床分離INH耐藥結(jié)核桿菌中,依然大約有10-37%的菌株并沒有在包括katG在內(nèi)的已知耐藥相關(guān)基因中找到突變位點,因此還存在其他可能的INH耐藥形式和耐藥機制(Ramaswamy SV等,Antimicrob Agents Chemother 2013;47:1241–1250.和Zhang M等,J Clin Microbiol2007,43:5477–5482),發(fā)現(xiàn)新的INH耐藥機制對耐藥結(jié)核病的快速檢測和治療有著重要現(xiàn)實意義。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是為克服現(xiàn)有技術(shù)的缺陷,提供經(jīng)修飾的KatG蛋白在制備INH耐藥結(jié)核診斷制劑中的應(yīng)用,本發(fā)明可進一步用于檢測包含耐受異煙肼(INH)的耐藥結(jié)核桿菌和耐藥結(jié)核病的方法。
本發(fā)明提供了經(jīng)修飾的KatG蛋白及其修飾性多肽德系的藥用用途;本發(fā)明中,研究發(fā)現(xiàn),結(jié)核桿菌KatG蛋白中一些賴氨酸殘基(Lys,K)可以發(fā)生諸如乙酰化、琥珀?;鹊鞍追g后的修飾,且該些賴氨酸殘基側(cè)鏈經(jīng)乙?;㈢牾;刃揎椇螅梢悦黠@地降低KatG蛋白的過氧化氫酶和過氧化物酶活性,從而引起對INH的耐藥性;且將乙酰化修飾的katG基因轉(zhuǎn)入因katG突變而導致INH耐受的結(jié)核菌中,無法恢復細菌對INH的敏感性,而轉(zhuǎn)入非乙?;揎椀腒atG基因時,INH耐受菌株可以部分或全部恢復細菌對INH的敏感性;因此,對經(jīng)翻譯后修飾的KatG蛋白質(zhì)及修飾的多肽具有在制備診斷INH耐藥結(jié)核桿菌及INH耐藥結(jié)核病的制劑中的新的用途,尤其是在制備耐受INH的結(jié)核桿菌和耐藥結(jié)核病診斷制劑中的用途。
在其最廣泛的方面,本發(fā)明提供了其中對應(yīng)于H37Rv KatG序列中氨基酸殘基經(jīng)單個或多個位點被乙?;㈢牾;?、巴豆?;?、泛素化等各類型但不限于上述修飾類型的翻譯后修飾的KatG蛋白質(zhì)或修飾的多肽,及其在制備診斷INH耐藥結(jié)核桿菌及INH耐藥結(jié)核病制劑中的用途。
在本發(fā)明的一個方面,提供對應(yīng)于H37Rv KatG序列中賴氨酸殘基Lys143,Lys310,Lys356,Lys410,Lys433,Lys554,Lys557,Lys590,Lys600或Lys680中,但不限于上述賴氨酸殘基,其中單個或多個位點受乙酰化、琥珀酰化等修飾的KatG蛋白質(zhì)。
本發(fā)明的另一個方面所述的經(jīng)修飾KatG蛋白質(zhì)包含序列中賴氨酸殘基Lys143,Lys310,Lys356,Lys410,Lys433,Lys554,Lys557,Lys590,Lys600或Lys680中,但不限于上述賴氨酸殘基,其中單個或多個賴氨酸位點受乙?;?、琥珀酰化等修飾的多肽。
所述修飾多肽為一種氨基酸聚合物,其長度包含但不限于20個氨基酸殘基,其中可包含賴氨酸殘基Lys143,Lys310,Lys356,Lys410,Lys433,Lys554,Lys557,Lys590,Lys600或Lys680,但不限于上述賴氨酸殘基,其中單個或多個賴氨酸位點受乙?;?、琥珀?;刃揎椀亩嚯募捌漕愃莆?;所述類似物為與其同源性在75%以上的經(jīng)過天然或人工修飾 后的多肽。
所述的經(jīng)修飾的KatG蛋白、經(jīng)修飾的多肽及其類似物,可以是天然分離的或是人工合成的。
本發(fā)明所涉及的修飾KatG蛋白,修飾多肽及其類似物可以通過基因工程技術(shù)獲得,也可以化學合成所得,此類技術(shù)為行業(yè)內(nèi)所熟悉。
本發(fā)明的再一個方面提供針對所述的被乙?;?、琥珀?;投辊;?、泛素化等各類型但不限于上述修飾類型的修飾KatG蛋白質(zhì)、修飾多肽及其類似物所制備的多克隆抗體或單克隆抗體,可特異性識別KatG修飾蛋白質(zhì)、修飾多肽及其類似物,以及在制備診斷INH耐藥結(jié)核桿菌及INH耐藥結(jié)核病制劑中的用途。
在本發(fā)明中所述多克隆抗體或單克隆抗體,具有可特異性識別KatG蛋白或多肽中賴氨酸殘基Lys143,Lys310,Lys356,Lys410,Lys433,Lys554,Lys557,Lys590,Lys600或Lys680上單個或多個位點的乙酰化、琥珀酰化等修飾特性,但不限于上述賴氨酸殘基。
本發(fā)明中所述多克隆抗體或單克隆抗體,可以通過生物技術(shù)方法分離制備,此類技術(shù)為行業(yè)內(nèi)所熟悉。
本發(fā)明所述制劑可用于檢測臨床分離結(jié)核桿菌對INH的耐受性,確定臨床結(jié)核病例的耐藥特性。
為了便于理解,以下將通過具體的附圖和具體實施方式對本發(fā)明進行詳細地描述。需要特別指出的是,這些描述僅僅是示例性的描述,并不構(gòu)成對本發(fā)明范圍的限制。依據(jù)本說明書的論述,本發(fā)明的許多變化、改變對所屬領(lǐng)域技術(shù)人員來說都是顯而易見的。
附圖說明
圖1,結(jié)核桿菌KatG蛋白Lys410位點乙?;|(zhì)譜圖。
圖2,結(jié)核桿菌KatG蛋白Lys688位點乙?;|(zhì)譜圖。
圖3,KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace蛋白的SDS-PAGE示意圖,其中,大腸桿菌原核表達并純化目的蛋白后進行SDS-PAGE,其中1泳道為Lys410位點體外乙酰化修飾蛋白KatG410ace、2泳道為Lys688位點體外乙?;揎椀鞍譑atG688ace和3泳道為Lys410和Lys688位點同時體外乙?;揎椀鞍譑atG410、688ace。
圖4,KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace蛋白的乙酰化修飾檢測,其中,使用特異性識別賴氨酸不同位點乙?;揎梿慰寺】贵w,采用western blot方法來檢測原核表達純化蛋白的乙?;揎椝剑?泳道為Lys410位點體外乙?;揎椀鞍譑atG410ace、2泳道為Lys688位點體外乙?;揎椀鞍譑atG688ace和3泳道為Lys410和Lys688位點同時體外乙?;揎椀鞍譑atG410、688ace。
圖5,結(jié)核桿菌KatG蛋白及KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace蛋白過氧化氫酶活性測定。
圖6,結(jié)核桿菌KatG蛋白及KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace蛋白過氧化物酶活性測定。
具體實施方式
以下通過具體的實施例進行示例,其中所用的試劑均可通過市場渠道購買,如有未盡之處,可以參考相應(yīng)的分子克隆等實驗手冊,本發(fā)明所述實施方法,如無特別說明,均為常規(guī)方法。
以下實施例以KatG蛋白的Lys410和Lys688位點乙?;揎棡槔M行描述,但并不構(gòu)成對本發(fā)明范圍的限制。
實施例1:結(jié)核桿菌KatG蛋白Lys410和Lys688存在乙?;揎?/p>
(1)結(jié)核桿菌H37Ra接種于7H9(10%OADC)生長至對數(shù)中期,8,000g離心15分鐘,菌體沉淀1-3g重懸于緩沖液;
(2)冰水浴中超聲裂解菌體細胞,4℃ 20,000g離心40分鐘,留上清,并加入終濃度為15mM的丙酮,沉淀蛋白;
(3)利用胰蛋白酶水解蛋白后,用帶有賴氨酸乙?;贵w的珠子吸附并純化帶有乙酰化修飾肽段;
(4)C18(Dionex,sunnyvale,CA)柱子和HPLC清洗和純化肽段,直接電噴入LTQ一Orbitrap質(zhì)譜儀(ThermoEleetron,Bremen,Germany)進行分析,獲得結(jié)核桿 菌賴氨酸乙?;揎椀鞍讛?shù)據(jù);
(5)鑒定到KatG蛋白為乙?;揎椀鞍祝渲邪↙ys410和Lys688位點受乙?;揎?如圖1和圖2)所示。
實施例2:結(jié)核桿菌KatG蛋白Lys410和Lys688位點乙酰化修飾蛋白的制備
1、蛋白的體外乙?;揎椩?Neumann H等Nature chemicalbiology,2008;4(4):232-23):是采用一種質(zhì)粒(ACK)可以編碼賴氨酰tRNA合成酶,另一種質(zhì)粒(PYⅡ)是帶有識別CUA密碼子的tRNA合成酶,第三種質(zhì)粒是帶有目的基因katG的質(zhì)粒,該目的基因是將需要乙?;揎椀馁嚢彼峋幋a密碼子定點突變?yōu)門AG。將上述三種質(zhì)粒共同轉(zhuǎn)入大腸桿菌宿主菌中。在培養(yǎng)基中添加乙酰賴氨酸的情況下,帶有CUA密碼子的tRNA合成酶可以識別目的基因中的TAG,并在賴氨酰tRNA合成酶幫助下在該位點加上乙?;馁嚢彼幔M而在大腸桿菌表達體系中完成特定賴氨酸位點的定點乙?;揎?;
2、katG基因中編碼Lys410和688位點密碼子的突變
(1)設(shè)計引物,從結(jié)核桿菌H37Rv基因組中擴增katG基因,測序正確后,將基因片段克隆入原核表達載體pT7中,構(gòu)建獲得pT7-KatG原核表達載體;
(2)針對Lys410和Lys688密碼子分別設(shè)計突變引物,
K410TAGS:5’-CGAGTTCGCCTAGGCCTGGTACAAGCTGATCCACC-3’;
K410TAGA:5’-CTTGTACCAGGCCTAGGCGAACTCGTCGGCCAA-3’;
K688TAG-S:5’-GGCAAGGTGTAGTGGACCGGCAGCCGCGTGGAC-3’;
K688TAG-SA:5’-TGCCGGTCCACTACACCTTGCCACTGCCATCCTTG-3’;
(3)分別用引物對K410TAG-S/K410TAG-A或K688TAG-S/K688TAG-A,以PT7-KatG為模板進行PCR擴增。純化PCR產(chǎn)物分別經(jīng)DpnⅠ37℃消化1小時后轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5ɑ中,抽提質(zhì)粒經(jīng)測序驗證突變正確,獲得突變載體pT7-KatG410TAG和pT7-KatG688TAG;
(4)用引物對K688TAG-S/K688TAG-A,以pT7-KatG410TAG為模板進行PCR擴增,方法與上述(3)一致,獲得410和688同時突變?yōu)門AG的載體pT7-KatG410、688TAG;
3、Lys410和Lys688乙?;揎桲atG蛋白的獲得
(1)將質(zhì)粒PT7-KatG410TAG、pT7-KatG688TAG以及pT7-KatG410、688TAG分別與另外兩個質(zhì)粒ACK和PYⅡ轉(zhuǎn)入大腸桿菌原核表達質(zhì)粒BL21,利用三種抗生素50mg/mL卡那霉素,150mg/mL氨芐霉素,150mg/mL壯觀霉素篩選三質(zhì)粒共存在的BL21菌株;
(2)在培養(yǎng)基中添加乙酰賴氨酸的情況下,25℃,IPTG 0.5mM IPTG誘導表達目的蛋白6h;
(3)表達目的蛋白KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace的菌體分別超聲裂解,收集上清蛋白液;
(4)分別用Ni親和層析柱純化目的蛋白KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace,用BCA試劑盒測定蛋白濃度,并保存于-80℃(如圖3所示);
(5)使用賴氨酸乙?;贵w通過Western Blot檢測蛋白的乙?;?如圖4所示);
(6)結(jié)果顯示,通過上述方法可以將原核表達的KatG蛋白在特定位點進行體外乙?;?。
實施例3:結(jié)核桿菌KatG蛋白Lys410和Lys688位點乙?;揎椀鞍椎幕钚詼y定
(1)過氧化氫酶活的測定:酶活測定體系50mM K3PO4、20mM H2O2、0.8μg目的蛋白,室溫下檢測240nm處吸光值的變化;
(2)過氧化物酶活的測定:酶活測定體系50mM CH3COONa、20mM O-Ddianiside、24mM T-butyperoxidase、0.8μg目的蛋白,室溫下檢測460nm處吸光值的變化;
(3)結(jié)果顯示:相比KatGWT蛋白,所獲得的修飾蛋白KatG410ace、KatG688ace和KatG410、688ace過氧化氫和過氧化物的酶活均顯著下降,證實在410或688位賴氨酸在發(fā)生乙?;揎椇?,可以顯著降低KatG蛋白的過氧化氫和過氧化物酶活性(如圖5和圖6所示)。
實施例4:外源KatG蛋白Lys410和Lys688位點修飾對耐INH結(jié)核桿菌耐藥性的影響
1、分離兩株H37Ra結(jié)核桿菌INH耐藥菌株(I31,I20),對KatG基因進行測序,發(fā)現(xiàn)一株是KatG384位氨基酸密碼子發(fā)生移碼突變(CTG-CTTG),另一菌株KatG171位編碼密碼子發(fā)生終止突變(TGC→TGA),菌株KatG蛋白活性降低或失活,從而導致對INH的耐藥性(如表1所示);
2、在這兩株INH耐藥菌株中轉(zhuǎn)入野生型katG基因,可以恢復細菌KatG功能,使結(jié)核桿菌顯示出對INH敏感的特性(I20::KatG;I31::KatG,表一)。由于Lys在正常狀態(tài)下呈正電荷,而被乙?;揎棔r,該Lys呈現(xiàn)不帶電荷狀態(tài)。因此我們將通過對耐INH菌株轉(zhuǎn)入外源katG基因,檢測外源蛋白對耐藥菌株耐受INH的變化。一種轉(zhuǎn)入的外源katG基因?qū)⑵?10、688位點氨基酸密碼子突變成帶正電荷精氨酸,另一種轉(zhuǎn)入的外源katG基因?qū)⑵?10、688位點氨基酸密碼子突變成不帶電荷的谷氨酰胺,分別模擬Lys和被乙?;揎椀腖ys;
3、從結(jié)核桿菌H37Rv基因組中擴增katG基因,測序正確后,將基因片段克隆入分支桿菌穿梭載體pMV261中,構(gòu)建獲得pMV-KatG重組穿梭載體;
4、分別設(shè)計引物將KatG第410位或610位密碼子由AAG(Lys,K)分別突變?yōu)镃GA(Arg,R),模擬帶正電荷時未被乙酰化修飾狀態(tài);另外引物將KatG第410位或610位密碼子突變成CAG(Gln,Q),模擬賴氨酸被乙?;揎棽粠щ姾蔂顟B(tài);
K410RS:5’-CGAGTTCGCCCGAGCCTGGTACAAGCTGATCCAC-3’
K410RA:5’-CTTGTACCAGGCTCGGGCGAACTCGTCGGCCAA-3’
K410QS:5’-CGAGTTCGCCCAGGCCTGGTACAAGCTGATCCAC-3’
K410QA:5’-CTTGTACCAGGCCTGGGCGAACTCGTCGGCCAA-3’
K688RS:5’-GGCAAGGTGCGATGGACCGGCAGCCGCGTGGAC-3’
K688RA:5’-TGCCGGTCCATCGCACCTTGCCACTGCCATCCTTG-3’
K688QS:5’-GGCAAGGTGCAGTGGACCGGCAGCCGCGTGGAC-3’
K688QA:5’-TGCCGGTCCACTGCACCTTGCCACTGCCATCCTTG-3’
5、以pMV-KatG為模板,分別以K410RS-K410RA,K410QS-K410QA,K688RS-K688RA,或K688QS-K688QA引物對,通過PCR擴增得到目的片段,分別用DPNⅠ 消化目的片段后轉(zhuǎn)入DH5a菌,Kan+挑選陽性克隆,提取質(zhì)粒,測序確定基因突變正確。分別獲得pMV-KatG410R,pMV-KatG410Q,pMV-KatG688R,pMV-KatG688Q;
6、電擊轉(zhuǎn)化INH耐藥結(jié)核菌(I31和I20)中,分別取上述pMV-KatG、pMV-KatG410R,pMV-KatG410Q,pMV-KatG688R以及pMV-KatG688Q五種重組穿梭載體50μl,加入200μlI31或I20株感受態(tài)細胞,冰浴30min,小心地將菌液轉(zhuǎn)入預(yù)冷的2mm電穿孔杯中,電轉(zhuǎn)條件是電壓1.25kV,電容25μF,電阻1000歐姆。電轉(zhuǎn)后,冰浴10min后,與等體積的2×7H9培養(yǎng)基混合,37℃靜置培養(yǎng)1天;
7、將靜置培養(yǎng)一天的菌液涂在含有卡那霉素抗性(卡那霉素的終濃度為15μg/ml)的7H10(含10%ADC)固體平板上,37℃倒置培養(yǎng)3-4周。待有菌落長出,挑選單菌落分別接種于5ml含50μg/ml卡那霉素的7H9Broth液體培養(yǎng)基中,37℃靜置培養(yǎng)2-3周,取菌提取基因組,PCR擴增,檢測將外源質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)入的菌株,分別獲得I31::KatG、I31::KatG410R,I31::KatG410Q,I31::KatG688R,I31::KatG688Q以及I20::KatG、I20::KatG410R,I20::KatG410Q,I20::KatG688R,I20::KatG688Q菌株;
8、不同菌株對INH最小抑菌濃度(MIC)的測定:
(1)分別制備I31::KatG、I31::KatG410R,I31::KatG410Q,I31::KatG688R,I31::KatG688Q以及I20::KatG、I20::KatG410R,I20::KatG410Q,I20::KatG688R,I20::KatG688Q菌懸液,同時制備I30,I20,H37Ra菌懸液作為對照。制備好的1mg/ml結(jié)核桿菌上述各結(jié)核桿菌菌株懸液2ul,含菌數(shù)量1-5×105,分別接種于每支含200μl 7H9的液體培養(yǎng)基的96孔板中;
(2)將INH進行倍比梯度稀釋(200μg/ml,100μg/ml,75μg/ml,50μg/ml,37.5μg/ml,25μg/ml,18.25μg/ml,12.5μg/ml,6.25μg/ml,3μg/ml,1.5μg/ml,0.75μg/ml,0.37μg/ml,0.18μg/ml,0.09μg/ml,0.045μg/ml,0.023μg/ml,0.012μg/ml),分別加入含有不同結(jié)核桿菌的96孔板中。接種完畢后,置37℃恒溫孵箱內(nèi)培養(yǎng),2-3周觀察結(jié)果。每個菌株和每個藥物梯度平行做3個重復;
上述步驟進行兩次重復,將能肉眼可見培養(yǎng)基中抑制細菌生長的最低濃度定 為該菌株對藥物INH的最小抑菌濃度(MIC);
9、不同菌株對INH的敏感性顯示如下:當將410或者688位點賴氨酸密碼子突變成編碼正電荷精氨酸密碼子的katG410R或katG688R基因轉(zhuǎn)入INH耐藥結(jié)核桿菌時,與轉(zhuǎn)入野生型katG基因類似,可以恢復細菌KatG功能,使結(jié)核桿菌顯示出對INH敏感的特性(表一)。而當410或者688位點賴氨酸密碼子突變成不帶電荷的谷氨酰胺的密碼子,將katG410Q或katG688Q基因轉(zhuǎn)入INH耐藥結(jié)核桿菌,則不能有效恢復KatG的活性,耐藥菌對INH敏感性不能得到恢復,提示當KatG蛋白在410或688位點被乙酰化修飾可以導致細菌對INH的耐受。
表1不同菌株對INH敏感性