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化合物F083?0063及其抗腫瘤應(yīng)用的制作方法

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化合物F083?0063及其抗腫瘤應(yīng)用的制作方法與工藝

本發(fā)明屬于生物制藥技術(shù)領(lǐng)域,具體而言,涉及一種化合物F083-0063的抗腫瘤應(yīng)用。



背景技術(shù):

保羅樣激酶1(PLK1)作為細(xì)胞周期必要的調(diào)節(jié)因子,是公認(rèn)的抗腫瘤藥物靶點(diǎn)。PLKs最初作為有絲分裂必需的基因之一發(fā)現(xiàn)于果蠅中,是一類從酵母到人類都高度保守的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶[1-3]。人類的PLKs共包括五個(gè)成員[4]。這類激酶在N端有一個(gè)保守的酶活性區(qū)域(KD)外,在C端有一個(gè)高度保守的(叫做polo-box-PBD)的非催化活性區(qū),主要調(diào)節(jié)蛋白和底物或調(diào)節(jié)因子之間的相互作用[5,6]。PLK1在調(diào)節(jié)細(xì)胞分裂的過(guò)程中(包括中心體功能、有絲分裂中染色體動(dòng)態(tài)平衡、紡錘體功能和胞質(zhì)分裂)發(fā)揮著多種必需和非必需的功能[3,6,7]。

大量的研究將PLKs與腫瘤從不同的方面聯(lián)系在一起。PLK1在多種腫瘤細(xì)胞系中高表達(dá),且和不良預(yù)后密切相關(guān)[8-10]。與健康組織相比,多種不同組織來(lái)源的腫瘤對(duì)低表達(dá)的PLK1更敏感,這在理論上打開(kāi)了一個(gè)治療契機(jī)。更有研究發(fā)現(xiàn)Ras轉(zhuǎn)化和p53缺陷的細(xì)胞與PLK1的高活性密切相關(guān)[11-14]?;谏鲜鲈?,PLK1被公認(rèn)為是一個(gè)很好的抗腫瘤藥物靶點(diǎn)。而PLK2和3則在細(xì)胞周期檢驗(yàn)點(diǎn)發(fā)揮作用并具有抗細(xì)胞增殖的功能,被認(rèn)為屬于腫瘤抑制因子[15-18]。

近些年來(lái)發(fā)現(xiàn)了很多PLK1的激酶活性抑制劑,有一些已經(jīng)進(jìn)入了臨床研究階段[19,20]。由于激酶結(jié)構(gòu)域在激酶中高度保守,使得PLK1抑制劑的特異性不強(qiáng),尤其對(duì)PLK家族其他成員[21]。BI2536及其衍生物Volasertib(BI6727)是目前最有前景的PLK1抑制劑[22,23]。Volasertib處于臨床前第三階段,已取得了不錯(cuò)的療效,特別是對(duì)急需新藥的急性髓細(xì)胞樣白血病(AML)的治療上[24]。2013年,F(xiàn)DA給與Volasertib“突破性治療”的高度評(píng)價(jià)。這些發(fā)展都在此證明了PLK1作為抗腫瘤藥物靶點(diǎn)的可行性。然而,毒性仍然是一個(gè)函待解決的難題[24]。同時(shí)BI2536和Volasertib對(duì)于PLK2、3還有其他激酶也具有抑制活性,IC50值相當(dāng)[22,23,25]。由于PLK2和3具有類似腫瘤抑制的功能,理想的藥物還是只針對(duì)PLK1。

利用抑制PBD來(lái)干預(yù)PLK1的功能成為近年來(lái)的替代策略。PLK1有功能的PBD是細(xì)胞分裂必不可少的[26-28]。PLK1在中心體、著絲粒、胞質(zhì)分裂中的中心紡錘體等發(fā)揮作用均需要通過(guò)PB才能與底物結(jié)合并[3,29,30]。不同于KD,PBD是PLK家族所特有的且不同成員之間的PBD在序列和結(jié)構(gòu)上相較KD相似度更低。并且不同PLK成員傾向結(jié)合的磷酸肽基序不同[6,31,32]。因此,PBD是比KD更適合于篩選針對(duì)PLK1的抑制劑的靶點(diǎn)。除此之外,PLK1的功能有些更依賴于KD,有些更依賴于PBD。因此,抑制PBD和抑制KD導(dǎo)致對(duì)PLK1功能影響是不同的,這使得PBD抑制劑更有優(yōu)勢(shì)[33]。PBD抑制劑還能協(xié)同性的和KD抑制劑一起發(fā)揮作用。

基于此,采用PBD作用篩選PLK1抑制劑的靶點(diǎn)已越來(lái)越引起關(guān)注。Poloxin和其同系物thymoquinone(TQ)的發(fā)現(xiàn)第一次證明了這個(gè)策略的可行性,這兩個(gè)化合物是利用體外的熒光偏振模型篩選得到的[34,35]。它們均能在體外低納摩爾水平抑制PBD活性。但是,這兩個(gè)化合物需要更高的濃度才能誘導(dǎo)凋亡和擾亂有絲分裂。PBD和TQ共結(jié)晶顯示TQ是通過(guò)非共價(jià)結(jié)合于PBD的磷酸肽結(jié)合區(qū)域[36]。通過(guò)熒光標(biāo)記的PBD與固定化的磷酸肽結(jié)合的體外檢測(cè)篩選得到了另一個(gè)PBD抑制劑PPG[37]。此化合物也同樣存在需要高濃度才能影響有絲分裂的問(wèn)題。最具潛力的PBD化學(xué)抑制劑是磷酸肽或類肽分子。但是,此類抑制劑的細(xì)胞通透性成為其一大瓶頸[38,39]。

尋找新型的以Plk1PBD為靶點(diǎn)的抗腫瘤小分子抑制劑將對(duì)Plk1高表達(dá)的腫瘤治療帶來(lái)新的希望。

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技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明首先涉及一種具備抗腫瘤活性的小分子化合物F083-0063,其結(jié)構(gòu)如式1所示,化學(xué)名為3-甲酰胺-N-(呋喃-2-基甲基)-1-硫酮-5-氧代-8氯-4,5-雙氫-1H–噻唑并[3,4-a]喹唑啉,

本發(fā)明還涉及以所述的小分子化合物F083-0063為主要活性成分的制劑或藥物。

本發(fā)明還涉及一種抗腫瘤藥物,所述的藥物包括,

(1)治療有效量的小分子化合物F083-0063;

(2)必要的藥用輔料。

本發(fā)明還涉及所述的小分子化合物F083-0063在制備如下制劑中的應(yīng)用;

(1)結(jié)合于Plk1的PBD的特定區(qū)域并阻斷其功能的阻斷劑,所述的Plk1的PBD的特定區(qū)域?yàn)镻lk1蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)中的His538、Lys540、Arg557構(gòu)成的結(jié)構(gòu)區(qū)域;

(2)阻滯細(xì)胞至G2/M期的細(xì)胞周期調(diào)節(jié)劑,所述的細(xì)胞優(yōu)選為腫瘤細(xì)胞系,最優(yōu)選為肝癌、子宮癌或結(jié)直腸癌細(xì)胞;

(3)促進(jìn)細(xì)胞凋亡制劑,所述的細(xì)胞優(yōu)選為腫瘤細(xì)胞系,最優(yōu)選為肝癌、子宮癌或結(jié)直腸癌細(xì)胞;

(4)抑制腫瘤細(xì)胞遷移的抑制劑,所述的腫瘤細(xì)胞優(yōu)選為子宮癌細(xì)胞。

本發(fā)明還涉及所述的小分子化合物F083-0063的如下應(yīng)用:

(1)抑制Plk1與其天然配體結(jié)合;

(2)阻滯細(xì)胞至G2/M期;

(3)促進(jìn)細(xì)胞凋亡,所述的細(xì)胞優(yōu)選為腫瘤細(xì)胞系,最優(yōu)選為肝癌、子宮癌或結(jié)直腸癌細(xì)胞;

(4)抑制腫瘤細(xì)胞的遷移和轉(zhuǎn)移,所述的腫瘤細(xì)胞優(yōu)選為子宮癌細(xì)胞;

(5)抑制腫瘤和/或抑制腫瘤的轉(zhuǎn)移,所述的腫瘤優(yōu)選為肝癌、子宮癌或結(jié)直腸癌。

本發(fā)明還涉及一種以Plk1 PBD活性中心的關(guān)鍵氨基酸空間結(jié)構(gòu)為靶標(biāo)的Plk1抑制劑的篩選方法,所述的Plk1 PBD活性中心的關(guān)鍵氨基酸空間結(jié)構(gòu)為Plk1蛋白的His538、Lys540、Arg557在具備生物學(xué)活性的Plk1蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)的空間構(gòu)象中形成的立體結(jié)構(gòu),所述的篩選方法為:使用分子對(duì)接預(yù)測(cè)靶標(biāo)和化合物的相互結(jié)合。

附圖說(shuō)明

圖1、F083-0063的結(jié)構(gòu)及基本功能,1A,F(xiàn)083-0063的分子結(jié)構(gòu);1B,F(xiàn)083-0063的量效關(guān)系曲線;1C,F(xiàn)083-0063在HeLa細(xì)胞中的細(xì)胞毒性。

圖2、F083-0063的功能驗(yàn)證,2A,F(xiàn)083-0063時(shí)間依賴性的引發(fā)HeLa細(xì)胞G2/M期阻滯;2B,F(xiàn)083-0063引發(fā)時(shí)間依賴性的G2/M期阻滯的定量分析;2C,F(xiàn)083-0063劑量依賴性的引發(fā)HeLa細(xì)胞G2/M期阻滯;2D,F(xiàn)083-0063引發(fā)劑量依賴性的G2/M期阻滯的定量分析;2E,Western Blot分析F083-0063引發(fā)G2/M期阻滯。

圖3、F083-0063促進(jìn)腫瘤細(xì)胞凋亡,3A,F(xiàn)083-0063引發(fā)HeLa細(xì)胞的大量凋亡;3B,F(xiàn)083-0063引發(fā)細(xì)胞大量凋亡的定量分析。

圖4、F083-0063抑制細(xì)胞遷移,4A,F(xiàn)083-0063時(shí)間依賴性的抑制HeLa細(xì)胞遷移;4B,F(xiàn)083-0063引發(fā)時(shí)間依賴性的細(xì)胞遷移的定量分析;4C,F(xiàn)083-0063劑量依賴性的抑制HeLa細(xì)胞遷移;4D,F(xiàn)083-0063引發(fā)劑量依賴性的細(xì)胞遷移的定量分析。

圖5、F083-0063與Plk1PBD結(jié)合方式驗(yàn)證,F(xiàn)083-0063和Plk1PBD分子對(duì)接示意圖。

具體實(shí)施方式

實(shí)施例1.細(xì)胞的培養(yǎng)

人成骨肉瘤細(xì)胞MG63、人子宮頸癌細(xì)胞HeLa、人結(jié)腸癌細(xì)胞HCT-116、人結(jié)腸癌細(xì)胞HT-29、人肝癌細(xì)胞HepG2、人前列腺癌PC3、人肝細(xì)胞L02,所有細(xì)胞均為貼壁細(xì)胞,約48h傳代一次。待細(xì)胞長(zhǎng)滿后,棄舊培養(yǎng)基,用PBS漂洗細(xì)胞后棄掉,之后加適量胰酶,在室溫下消化約2-10min,棄掉消化液,立即加入含10%FBS的培養(yǎng)基,以抑制胰蛋白酶活力,用彎頭吸管反復(fù)輕輕吹打培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)細(xì)胞,使細(xì)胞完全脫離瓶底且吹打使之分散為單個(gè)細(xì)胞懸液。再按1:3-1:6比例接種細(xì)胞懸液于新的細(xì)胞瓶?jī)?nèi),然后補(bǔ)加適量完全培養(yǎng)基,放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。培養(yǎng)條件:37℃,5%CO2。

實(shí)施例2.化合物F083-0063對(duì)PLK1PBD抑制活性的測(cè)定

本活性測(cè)定采用熒光偏振(FP)高通量篩選模型進(jìn)行化合物活性的測(cè)定。

測(cè)定原理:

主要基于熒光分子的偏振性與其受激發(fā)時(shí)熒光分子的旋轉(zhuǎn)速度密切相關(guān)的原理。當(dāng)熒光分子受平面偏振光激發(fā)時(shí),如果熒光分子在受激發(fā)時(shí)保持靜止?fàn)顟B(tài),那么發(fā)射光將位于同樣的偏振平面;如果熒光分子在受激發(fā)時(shí)保持旋轉(zhuǎn)狀態(tài),那么發(fā)射光將位于與激發(fā)光不同的偏振面。如果用垂直的偏振光激發(fā)熒光素,可以在垂直的和水平的偏振平面檢測(cè)發(fā)射光光強(qiáng)(發(fā)射光從垂直平面偏向水平平面的程度與熒光素標(biāo)記的分子的遷移率有關(guān))。如果分子量較大,受激發(fā)時(shí)熒光分子的旋轉(zhuǎn)速度較慢,則發(fā)射光偏振程度較高;如果分子量較小,受激發(fā)時(shí)熒光分子的旋轉(zhuǎn)速度較快,則發(fā)射光相對(duì)于激發(fā)光平面將去偏振化。因此,本研究擬建立的熒光偏振高通量篩選方法將以FITC-Poloboxtide((FITC-GPMQSpTPLNG-OH;MW:1583.61;Purity>95%;λex/λem:485/535nm,由上海強(qiáng)耀生物科技有限公司合成)作為Plk1PBD的模擬底物,從而進(jìn)行靶向Plk1PBD的小分子抑制劑的活性測(cè)定。

測(cè)定方法:

(1)將400nM Plk1PBD溶液以30μL/孔依次加入到384孔板中,將10mg·mL-1的F083-0063進(jìn)行倍比稀釋后,以終濃度10μg·mL-1、5μg·mL-1、2.5μg·mL-1、2μg·mL-1、1μg·mL-1、0.5μg·mL-1、0.25μg·mL-1、0.1μg·mL-1、0.05μg·mL-1、0.02μg·mL-1、0.01μg·mL-1依次加入到384孔板中并做好對(duì)應(yīng)的準(zhǔn)確記錄,以同時(shí)加入0.3μL DMSO孔作為陰性對(duì)照(Negative Control,0%Inhibition);以僅含有60μL 30nM FITC-Probe孔為陽(yáng)性對(duì)照(Positive Control,100%Inhibition)。將其混勻后室溫緩慢振搖,孵育60min。

(2)將60nM FITC-Probe以30μL/孔依次加入到384孔板中的上述各反應(yīng)孔中,將其混勻后室溫緩慢振搖,避光孵育15min,以多功能微孔板檢測(cè)儀進(jìn)行mP檢測(cè)。

(3)用如下方程計(jì)算待測(cè)化合物抑制率:

并以GraphPad Primer 5擬合抑制曲線確定化合物F083-0063的表觀IC50

以FP實(shí)驗(yàn)測(cè)得不同濃度化合物對(duì)Plk1PBD的抑制率(表1)對(duì)化合物F083-0063進(jìn)行量效關(guān)系分析,表觀IC50≈1.9±0.1μM(圖1B),能在體外抑制Plk1PBD的活性。

選用HeLa細(xì)胞作為腫瘤細(xì)胞的代表細(xì)胞,以MTT方法進(jìn)行小分子抑制劑F083-0063的細(xì)胞毒性初步評(píng)價(jià)。在上述實(shí)驗(yàn)中,我們發(fā)現(xiàn)小分子抑制劑F083-0063對(duì)HeLa細(xì)胞具有明顯的細(xì)胞毒性,其IC50值約為5.8±0.6μM(圖1C,表2)。

表1不同濃度化合物F083-0063對(duì)Plk1PBD的抑制率

實(shí)施例3、小分子抑制劑F083-0063的細(xì)胞毒性測(cè)定

利用MTT比色實(shí)驗(yàn)進(jìn)行。

測(cè)定原理:

活細(xì)胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性MTT還原為水不溶性的藍(lán)紫色結(jié)晶甲瓚(Formazan)并沉積在細(xì)胞中,而死細(xì)胞無(wú)此功能。二甲基亞砜(DMSO)能溶解細(xì)胞中的甲瓚,用酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀在560nm波長(zhǎng)處測(cè)定其光吸收值,可間接反映活細(xì)胞數(shù)量。在一定細(xì)胞數(shù)范圍內(nèi),MTT結(jié)晶形成的量與活細(xì)胞數(shù)成正比。

測(cè)定方法:

(1)從保存細(xì)胞凍存管的液氮中取出細(xì)胞凍存管后,迅速投入37℃水浴中,輕輕搖動(dòng)使其盡快融化。然后從37℃水浴中取出細(xì)胞凍存管,用乙醇消毒后,1000rpm×5min離心,小心地吸去上清液,再加入1mL培養(yǎng)液重懸細(xì)胞并再次離心。用生長(zhǎng)培養(yǎng)基適當(dāng)稀釋后,接種培養(yǎng)瓶,接種密度以5×105/mL為宜。將細(xì)胞培養(yǎng)瓶放入CO2培養(yǎng)箱37℃、5%CO2靜止培養(yǎng)。次日更換培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)備用。

(2)以0.25%胰蛋白酶消化單層貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞,用含10%FBS的生長(zhǎng)培養(yǎng)基配成單細(xì)胞懸液,以4~5×103/mL接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔體積200μL,同時(shí)96孔細(xì)胞培養(yǎng)板的邊緣孔以無(wú)菌PBS填充,盡量避免邊緣效應(yīng)。

(3)將上述接種細(xì)胞的96孔細(xì)胞培養(yǎng)板放入CO2培養(yǎng)箱,在37℃、5%CO2條件下靜止培養(yǎng)24小時(shí)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。

(4)準(zhǔn)備從10μg·mL-1開(kāi)始以生長(zhǎng)培養(yǎng)基梯度稀釋的化合物F083-0063,共制備8個(gè)梯度濃度(100μM、75μM、50μM、25μM、10μM、5μM、2.5μM、1μM)的稀釋液。

(5)小心地吸棄各孔內(nèi)的生長(zhǎng)培養(yǎng)基后,將化合物F083-0063的上述8個(gè)梯度濃度分別加入對(duì)應(yīng)96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,每孔200μL,每個(gè)濃度設(shè)置3組復(fù)孔并做好相應(yīng)的標(biāo)記。以加入DMSO組為陰性對(duì)照,只含正常培養(yǎng)基組為陽(yáng)性對(duì)照,各組分別設(shè)置3組復(fù)孔。

(6)在37℃、5%CO2培養(yǎng)條件下,化合物F083-0063與細(xì)胞繼續(xù)共培養(yǎng)48小時(shí)。小心地吸棄各孔內(nèi)生長(zhǎng)培養(yǎng)基,每孔各加入200μL新鮮生長(zhǎng)培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24小時(shí)。

(7)培養(yǎng)24小時(shí)后,每孔加入MTT溶液22μL,37℃避光培養(yǎng)4小時(shí)后終止培養(yǎng)。小心地吸棄各孔內(nèi)培養(yǎng)基后,每孔加入150μL DMSO,避光震蕩15min,使甲瓚充分溶解呈紫色。

(8)選擇560nm波長(zhǎng),在多功能微孔板檢測(cè)儀上測(cè)定各孔OD值,記錄并保存數(shù)據(jù),以GraphPad Prism 5擬合化合物F083-0063在各細(xì)胞株的生長(zhǎng)抑制曲線并計(jì)算其IC50值。

本實(shí)驗(yàn)選用本室保存的6株臨床常見(jiàn)的人癌細(xì)胞系和1株正常人源細(xì)胞,以MTT比色法進(jìn)行小分子抑制劑F083-0063的細(xì)胞毒性評(píng)價(jià)。發(fā)現(xiàn)小分子抑制劑F083-0063對(duì)6株腫瘤細(xì)胞具有不同的細(xì)胞毒性,IC50值差別較大,其中對(duì)Hela的細(xì)胞毒性最為明顯,IC50小于10μM(表2)。但是,小分子抑制劑F083-0063對(duì)L02代表的正常細(xì)胞的細(xì)胞毒性與腫瘤細(xì)胞的細(xì)胞毒性相比并沒(méi)有顯著差別。上述數(shù)據(jù)表明,小分子抑制劑F083-0063在體外對(duì)腫瘤細(xì)胞和正常細(xì)胞具有等同的細(xì)胞毒性。

表2小分子抑制劑F083-0063對(duì)腫瘤細(xì)胞和正常細(xì)胞的細(xì)胞毒性

實(shí)施例4、小分子抑制劑F083-0063對(duì)Hela細(xì)胞周期的影響

利用流式細(xì)胞儀和Western blot進(jìn)行。

測(cè)定原理:

由于細(xì)胞周期各時(shí)相的DNA含量不同,通常正常細(xì)胞的G1/G0期具有二倍體細(xì)胞的DNA含量(2N),而G2/M期具有四倍體細(xì)胞的DNA含量(4N),而S期的DNA含量介于二倍體和四倍體之間。PI可以與DNA結(jié)合,其熒光強(qiáng)度直接反映了細(xì)胞內(nèi)DNA含量。因此,通過(guò)流式細(xì)胞儀PI染色法對(duì)細(xì)胞內(nèi)DNA含量進(jìn)行檢測(cè)時(shí),可以將細(xì)胞周期各時(shí)相區(qū)分為G1/G0期,S期和G2/M期,獲得的流式直方圖對(duì)應(yīng)的各細(xì)胞周期可通過(guò)特殊軟件計(jì)算各時(shí)相的細(xì)胞百分率。

測(cè)定方法:

周期同步化的HeLa細(xì)胞是后續(xù)FACS和Western Blot進(jìn)行細(xì)胞周期分析的基礎(chǔ),周期同步化方法如下:

(1)將HeLa細(xì)胞以0.25%胰酶消化后,以3×105/mL接種于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板,接種量2mL/孔。將細(xì)胞板置于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24h至指數(shù)生長(zhǎng)期。

(2)細(xì)胞貼壁后,小心地棄掉生長(zhǎng)培養(yǎng)基后,以無(wú)菌PBS漂洗細(xì)胞1次。然后加入終濃度2mM Thymidine的生長(zhǎng)培養(yǎng)基,在37℃、5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)12h。

(3)小心地棄掉含2mM Thymidine的生長(zhǎng)培養(yǎng)基后,以無(wú)菌PBS漂洗細(xì)胞1次。更換新鮮的生長(zhǎng)培養(yǎng)基,在37℃、5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)12h。

(4)輕輕地棄掉正常生長(zhǎng)培養(yǎng)基后,以無(wú)菌PBS漂洗細(xì)胞1次。然后再次加入終濃度2mM Thymidine的生長(zhǎng)培養(yǎng)基,在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)12h后,此時(shí)所有的HeLa細(xì)胞的周期將被阻滯在G1/S期。

將同步化的HeLa細(xì)胞以小分子抑制劑F083-0063作用24h,在各設(shè)置的時(shí)間點(diǎn)收集細(xì)胞并與DMSO對(duì)照組比較,以FACS進(jìn)行HeLa細(xì)胞周期的綜合分析。

以FACS進(jìn)行HeLa細(xì)胞周期的綜合分析:

(5)在上述含有細(xì)胞周期同步化的HeLa細(xì)胞6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,分別加入含有20μM小分子抑制劑F083-0063的新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),在0h、12h、16h和24h時(shí)間點(diǎn)分別收集細(xì)胞。

(6)在上述各時(shí)間點(diǎn)收集的細(xì)胞分別以4℃預(yù)冷的PBS漂洗細(xì)胞3次并以0.25%胰酶消化細(xì)胞,再以4℃預(yù)冷的PBS重懸細(xì)胞,1000rpm×6min離心并收集細(xì)胞。

(7)小心地棄掉離心后的細(xì)胞上清液,緩慢加入4℃預(yù)冷的含70%乙醇的PBS固定液1mL充分懸浮細(xì)胞,4℃固定30min。

(8)固定后的細(xì)胞以1200rpm×6min離心并收集細(xì)胞,小心地棄掉乙醇固定液。爾后加入100μL PI/RNase A溶液并充分混勻,37℃避光孵育30min。

(9)各樣品做好對(duì)應(yīng)的標(biāo)記后,將細(xì)胞過(guò)濾到BD流式細(xì)胞管,各管再補(bǔ)加400μL PBS后,以FACS進(jìn)行分析。

(10)將含5μM、10μM、15μM和20μM小分子抑制劑F083-0063的新鮮培養(yǎng)基加入到周期同步化的HeLa細(xì)胞中并在作用12h后收集細(xì)胞,固定步驟及PI染色步驟同上所述,以FACS進(jìn)行量效關(guān)系分析。

或,以Western Blot進(jìn)行HeLa細(xì)胞周期的綜合分析:

(5)將周期同步化的HeLa細(xì)胞以5μM、10μM和15μM小分子抑制劑F083-0063作用16h后,收集細(xì)胞。各收集的細(xì)胞樣品分別加入60μL RIPA細(xì)胞裂解液(含100μg/mL PMSF),充分懸浮細(xì)胞,冰浴30min,12000rpm×30min離心,小心地吸取上清液并做好對(duì)應(yīng)的標(biāo)記,再以BCA法進(jìn)行裂解蛋白的定量。裂解蛋白定量后,將各樣品的蛋白裂解液濃度調(diào)整為2mg/mL,每次上樣量約為30~40μg/Lane。

(6)準(zhǔn)備15%SDS-PAGE,上樣量30μg/Lane。SDS-PAGE電泳結(jié)束后,將聚丙烯酰胺凝膠和2張3mm Bio-Rad濾紙放入4℃預(yù)冷的1×轉(zhuǎn)移緩沖液中浸泡2~5min。

(7)將裁剪的與膠尺寸相當(dāng)?shù)腜VDF膜先用甲醇潤(rùn)濕30s,再用蒸餾水洗1min,然后置于上述1×轉(zhuǎn)移緩沖液浸泡2min。

(8)在Bio-Rad半干法轉(zhuǎn)膜儀的正極上放置一張平衡過(guò)的濾紙,將PVDF膜整齊地放在濾紙上,然后將聚丙烯酰胺凝膠平鋪于PVDF膜上,最后在該凝膠上面再整齊地放置另一張平衡過(guò)的濾紙。用潔凈的試管小心地輕壓,以去除夾層中的氣泡,然后以上述少許1×轉(zhuǎn)移緩沖液潤(rùn)濕周圍,使其保持一定的導(dǎo)電性。最后放置轉(zhuǎn)膜儀的負(fù)極并壓緊、壓實(shí)。

(9)Western Blot電轉(zhuǎn)條件設(shè)置:恒流轉(zhuǎn)膜0.2A×30min。

(10)電轉(zhuǎn)結(jié)束后,用鑷子小心地取出PVDF膜浸入TBST洗滌1次,再用鑷子小心夾出并室溫晾干后,依據(jù)預(yù)染Marker標(biāo)示分子量和目的蛋白分子量適當(dāng)裁剪PVDF膜并做好相應(yīng)的標(biāo)記。

(11)將裁剪的PVDF膜放入含5%Milk-TBST的封閉液中室溫緩慢振搖2h進(jìn)行封閉。

(12)封閉結(jié)束后,取出PVDF膜,將其放入到TBST中漂洗3次,每次10min。漂洗完畢后將標(biāo)記好的PVDF膜放入孵育盒中進(jìn)行一抗孵育反應(yīng)。

(13)按照相關(guān)抗體說(shuō)明書(shū),以封閉液稀釋上述抗體并將抗體稀釋液置于孵育盒中,室溫緩慢振搖1h后,4℃過(guò)夜。

(14)從孵育盒中取出PVDF膜,用TBST漂洗3次,每次10min。漂洗完畢后再將PVDF膜放入孵育盒中進(jìn)行二抗孵育反應(yīng)。

(15)用封閉液稀釋對(duì)應(yīng)的HPR-Secondary Antibody(WB 1:2000)并將其置于含有對(duì)應(yīng)一抗孵育完畢的PVDF膜的孵育盒中,室溫緩慢振搖1~2h。

(16)從孵育盒中取出PVDF膜,用TBST漂洗3次,每次10min。然后進(jìn)行顯色反應(yīng)。

(17)顯色反應(yīng):在PVDF膜正面(印記目的蛋白一面)加入適量增強(qiáng)型HRP底物化學(xué)發(fā)光液(按照說(shuō)明書(shū)配制A:B=1:1),立即置于凝膠成像儀中曝光5~10s后成像。

從流式結(jié)果可以看到,化合物F083-0063作用12h后G2/M的含量為53.3±1.8%,作用16h時(shí)G2/M的含量為7.3±0.2%,作用24h時(shí)G2/M的含量為3.1±0.4%,如(表3,圖2A,2B)所示趨勢(shì)呈現(xiàn)逐漸下降,這應(yīng)該是與化合物在不同時(shí)間的作用強(qiáng)度有關(guān)。接下來(lái)我們選取12h作為G2/M期阻滯的比較時(shí)間點(diǎn)。

在流式實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),當(dāng)5μM、10μM、15μM和20μM小分子抑制劑F083-0063作用于周期同步化的HeLa細(xì)胞12h時(shí),與DMSO對(duì)照組相比,隨著小分子抑制劑F083-0063劑量的不斷增加,HeLa細(xì)胞的G2/M期比率逐漸升高(表4)。與DMSO對(duì)照組的G2/M期比率0.3±0.1%相比,20μM小分子抑制劑F083-0063作用于周期同步化的HeLa細(xì)胞12h后,HeLa細(xì)胞的G2/M期比率達(dá)到56.4±2.3%,HeLa細(xì)胞的G2/M期比率呈劑量依賴性的增加趨勢(shì)(圖2C,2D)。上述數(shù)據(jù)表明,小分子抑制劑F083-0063對(duì)HeLa細(xì)胞的G2/M期阻滯作用具有明顯的劑量依賴性。

表3化合物F083-0063作用12h后對(duì)細(xì)胞周期的阻滯效果

表4化合物F083-0063劑量變化對(duì)HeLa細(xì)胞的G2/M期的阻滯效率

Western Blot實(shí)驗(yàn)中,我們發(fā)現(xiàn)5μM、10μM、15μM小分子抑制劑F083-0063作用12h的HeLa細(xì)胞中Plk1、Cyclin B1、pHH-3隨著F083-0063劑量的不斷增加而逐漸積聚。其中,15μM小分子抑制劑F083-0063引發(fā)的周期阻滯中含有大量的M期細(xì)胞(圖2D)。Plk1、CyclinB1、pHH-3在HeLa細(xì)胞周期中的大量積聚表明,小分子抑制劑F083-0063引發(fā)了HeLa細(xì)胞的G2/M期阻滯。

綜上所述,小分子抑制劑F083-0063可以引發(fā)HeLa細(xì)胞發(fā)生G2/M期阻滯。

實(shí)施例5.小分子抑制劑F083-0063對(duì)HeLa細(xì)胞凋亡的影響

利用Annexin V/PI雙染法進(jìn)行。

測(cè)定原理:

磷酯酰絲氨酸(PS)是一種帶負(fù)電荷的磷脂,正常主要存在于細(xì)胞膜的內(nèi)面,在細(xì)胞發(fā)生凋亡時(shí)細(xì)胞膜上的這種磷脂分布的不對(duì)稱性被破壞而使PS暴露在細(xì)胞膜外。Annexin V是一種Ca2+依賴的磷脂結(jié)合蛋白,具有易于結(jié)合到磷脂類如PS的特性,對(duì)PS有高度的親和性。但PS轉(zhuǎn)移到細(xì)胞膜外不是凋亡所獨(dú)特的,也可發(fā)生在細(xì)胞壞死中。凋亡細(xì)胞對(duì)所有用于細(xì)胞活性鑒定的染料如PI有抗染性,壞死細(xì)胞則不能。細(xì)胞膜有損傷的細(xì)胞的DNA可被PI著染產(chǎn)生紅色熒光,而細(xì)胞膜保持完好的細(xì)胞則不會(huì)有紅色熒光產(chǎn)生。因此,在細(xì)胞凋亡的早期PI不會(huì)著染而沒(méi)有紅色熒光信號(hào)。正常活細(xì)胞與此相似。在雙變量流式細(xì)胞儀的散點(diǎn)圖上,左下象限顯示活細(xì)胞,為(FITC-/PI-);右上象限是非活細(xì)胞,即凋亡晚期的細(xì)胞和壞死細(xì)胞,為(FITC+/PI+);而右下象限為早期凋亡細(xì)胞,顯現(xiàn)(FITC+/PI-);而左上象限為許可范圍內(nèi)的檢測(cè)誤差。

測(cè)定方法:

Annexin V/PI雙染法

(1)將HeLa細(xì)胞以0.25%胰酶消化后,以3×106/mL接種于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板,接種量2mL/孔。將細(xì)胞板置于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)24h至指數(shù)生長(zhǎng)期。

(2)上述HeLa細(xì)胞培養(yǎng)24后,以無(wú)菌PBS清洗細(xì)胞3次,更換分別含有DMSO、5μM、10μM、15μM小分子抑制劑F083-0063的新鮮培養(yǎng)液。做好相應(yīng)標(biāo)記后,將細(xì)胞板置于37℃、5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)24h。

(3)取出上述細(xì)胞培養(yǎng)板,以PBS小心地漂洗1次,再以0.25%胰酶消化細(xì)胞,1000rpm×5min離心,收集細(xì)胞。

(4)用去離子水按1:4稀釋結(jié)合緩沖液(1×結(jié)合緩沖液:10mM Hepes/NaOH、140mM NaCl,2.5mM CaCl2pH7.4)。

(5)將上述消化的HeLa細(xì)胞以4℃預(yù)冷的PBS洗滌2次,用250μL 1×結(jié)合緩沖液懸浮細(xì)胞,調(diào)節(jié)其濃度為5×106/mL。

(6)取100μL的細(xì)胞懸液(細(xì)胞數(shù)約為5×105)于EP管中,再加入5μL Annexin V-Alexa Fluor 488,室溫避光孵育30min。

(7)在上述反應(yīng)體系中再加入5μL PI,室溫避光孵育5~10min。

(8)將上述細(xì)胞懸液過(guò)濾到BD流式管中,再補(bǔ)加400μL PBS并做好對(duì)應(yīng)的標(biāo)記,立刻以流式細(xì)胞儀(BD Biosciences)進(jìn)行檢測(cè)和數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。

根據(jù)雙染實(shí)驗(yàn)中,小分子抑制劑F083-0063作用24h后,通過(guò)流式細(xì)胞儀檢測(cè)與對(duì)照組相比加藥組在5μM、15μM、25μM濃度下,隨著小分子抑制劑劑量的逐漸增加,HeLa細(xì)胞的凋亡比例逐漸增大。如早期凋亡比例由6.2±0.1%增加到37.1±0.4%(表5,圖3A,3B)。當(dāng)濃度達(dá)到25μM時(shí)早期凋亡比例增加到43.6±3.5%??梢?jiàn)小分子抑制劑可以很明顯的引起細(xì)胞凋亡并且具有較為明顯的濃度依賴性。

表5化合物F083-0063劑量變化對(duì)細(xì)胞凋亡的影響

綜上所述,小分子抑制劑F083-0063可以引發(fā)HeLa細(xì)胞發(fā)生大量凋亡。

實(shí)施例6.小分子抑制劑F083-0063對(duì)HeLa細(xì)胞遷移的影響

利用細(xì)胞劃痕法進(jìn)行

測(cè)定原理:

細(xì)胞劃痕法是測(cè)定腫瘤細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)性的方法之一。在體外培養(yǎng)的單層細(xì)胞上,劃痕致傷,然后在加入藥物等試驗(yàn)條件觀察其對(duì)腫瘤細(xì)胞遷移的影響。

測(cè)定方法:

劃痕實(shí)驗(yàn)

(1)事先將Maker筆,直尺,槍,槍頭均放入超凈臺(tái)中紫外照射至少30min,先用Maker筆在6孔板的背面比著直尺劃線,線與線之間距離至少為0.5-1cm,橫穿過(guò)孔,每孔至少穿過(guò)3條線,以便在不同視野下觀察。

(2)以5×105個(gè)/孔的密度接種于6孔板中,接種的密度以不同細(xì)胞而有所差異,掌握為過(guò)夜鋪滿為好。

(3)培養(yǎng)24h后,顯微鏡下觀察細(xì)胞的生長(zhǎng)情況,看細(xì)胞是否鋪滿,若狀態(tài)良好,則用槍頭比著直尺,劃得線盡量垂直于背面的橫線痕跡,槍頭要垂直,不要傾斜。

(4)用滅過(guò)菌的PBS清洗3次,除去劃痕下的細(xì)胞,加入以配好濃度的陽(yáng)性化合物(5μM、10μM、15μM、20μM),放入37℃5%CO2的培養(yǎng)箱孵育培養(yǎng)48h后取樣,拍照。

(5)小分子抑制劑F083-0063濃度為20μM,分別培養(yǎng)12h、24h、36h、48h后,進(jìn)行取樣拍照。

20μM的小分子抑制劑F083-0063,分別作用12h、24h、36h、48h后觀察細(xì)胞的遷移情況,與對(duì)照組相比,12h與對(duì)照組相近,隨時(shí)間延長(zhǎng),加藥組遷移明顯受到抑制,表現(xiàn)出時(shí)間依賴性(圖4A、4B)。

細(xì)胞遷移結(jié)果如(圖4C、4D)所示,與對(duì)照組相比,加藥組的細(xì)胞遷移能力明顯減弱,尤其是在20μM時(shí),由最開(kāi)始的58.8±0.5%變?yōu)?9.6±0.7%。隨著劑量的逐漸增加,遷移率明顯受抑制,存在劑量依賴性。

實(shí)施例7.小分子抑制劑F083-0063與Plk1PBD結(jié)合方式的研究-分子對(duì)接

利用Discovery Studio 4.0軟件(Designed by Accelrys Inc.San Diego,CA)軟件進(jìn)行。

測(cè)定原理:

分子對(duì)接(Molecular Docking)是指配體與受體之間通過(guò)能量匹配和幾何匹配而互相識(shí)別的過(guò)程,其主要包括靜電作用、氫鍵作用、疏水作用力、范德華力等。近年來(lái),隨著計(jì)算機(jī)輔助藥物設(shè)計(jì)技術(shù)的飛速發(fā)展,分子對(duì)接技術(shù)已成為基于結(jié)構(gòu)的藥物設(shè)計(jì)和計(jì)算機(jī)輔助藥物設(shè)計(jì)的重要方法之一。Discovery Studio 4.0軟件(Designed by Accelrys Inc.San Diego,CA)是目前全球應(yīng)用最為廣泛的計(jì)算機(jī)輔助設(shè)計(jì)平臺(tái)之一,其在計(jì)算分子模擬和藥物設(shè)計(jì)領(lǐng)域都有著極其廣泛的應(yīng)用。

Discovery Studio 4.0軟件有多個(gè)模塊,主要功能包括:蛋白質(zhì)的表征(包括蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用)、同源建模、分子力學(xué)計(jì)算、分子動(dòng)力學(xué)模擬、基于結(jié)構(gòu)藥物設(shè)計(jì)(包括配體-蛋白質(zhì)相互作用、全新藥物設(shè)計(jì)和分子對(duì)接)、基于小分子的藥物設(shè)計(jì)(包括定量構(gòu)效關(guān)系、藥效團(tuán)、數(shù)據(jù)庫(kù)篩選、ADMET)和組合庫(kù)的設(shè)計(jì)與分析等。

測(cè)定方法:

在以Discovery Studio 4.0軟件進(jìn)行的小分子抑制劑F083-0063和Plk1PBD的分子對(duì)接中,我們選擇PDB(Protein Data Bank)中4H71結(jié)構(gòu)。

使用Discovery Studio 4.0軟件將小分子抑制劑F083-0063與Plk1PBD的活性中心(PDB code 4H71)進(jìn)行分子對(duì)接。PLK1PBD結(jié)構(gòu)域是由His538、Lys540、TRP414(是氨基酸中的一種色氨酸,是人體必需氨基酸)、Lys540和Asp416等多個(gè)氨基酸組成,通過(guò)對(duì)接結(jié)果顯示(圖5),F(xiàn)083-0063與PLK1PBD的結(jié)構(gòu)域呈現(xiàn)出較高的親和性,其中小分子抑制劑苯環(huán)上的羰基能與His538、Lys540、TRP414形成牢固的氫鍵,同時(shí)與TRP414、ASP416、ARG516以及ARG557形成疊加的π鍵,此外,F(xiàn)083-0063與PLK1PBD還存在非共價(jià)鍵的競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合方式,進(jìn)而使得小分子抑制劑與PBD結(jié)構(gòu)域結(jié)合得更加緊密。

最后需要說(shuō)明的是,以上實(shí)施例僅用于幫助本領(lǐng)域技術(shù)人員理解本發(fā)明技術(shù)方案的實(shí)質(zhì),而不用于對(duì)本發(fā)明保護(hù)范圍的限制。

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