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水稻OsPCF7基因在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用的制作方法

文檔序號:12249109閱讀:317來源:國知局
水稻OsPCF7基因在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用的制作方法與工藝
本發(fā)明屬于生物
技術(shù)領(lǐng)域
,具體涉及水稻OsPCF7基因在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用。
背景技術(shù)
:水稻作為單子葉植物的典型代表,在全世界是最重要的三大糧食作物之一,全世界約有二分之一以上的人食用水稻,有三分之一以上的人口以水稻為主食。社會經(jīng)濟(jì)快速的發(fā)展促進(jìn)了對糧食需求的增長,增加了我們對糧食的需要。如今,糧食安全生產(chǎn)已經(jīng)成為一個必須解決的嚴(yán)重問題,然而水稻植株的發(fā)育形態(tài)建成會直接影響植株的產(chǎn)量。水稻是分蘗的作物,分蘗是水稻自身的生理遺傳特性。水稻分蘗實(shí)質(zhì)上就是水稻莖稈的分枝,是水稻株型的重要組成部分,同時也是水稻產(chǎn)量形成的決定因素。大量的研究表明,分蘗對水稻群體結(jié)構(gòu),光合作用,物質(zhì)生產(chǎn)與分配及產(chǎn)量結(jié)構(gòu)有密切關(guān)系。植物的形態(tài)建成主要通過調(diào)控器官的生長、分化,植物器官的大小和性狀依賴于其持續(xù)增長的細(xì)胞的數(shù)量、大小和性狀,也就是細(xì)胞分裂、增殖和分化的過程。產(chǎn)生一個植物的復(fù)雜結(jié)構(gòu)與這些過程的調(diào)控是必不可少的。然而,細(xì)胞分裂、增殖和分化的主要調(diào)節(jié)者是轉(zhuǎn)錄因子,轉(zhuǎn)錄因子與DNA或啟動子結(jié)合來啟動該基因的表達(dá),最終決定了細(xì)胞和完整的組織特征,從而調(diào)控植物的發(fā)育過程。TCP蛋白家族最為植物特異性的轉(zhuǎn)錄因子,已經(jīng)證實(shí)是植物形態(tài)建成的主要調(diào)控者,參與多方面的植物生長發(fā)育相關(guān)的過程,例如胚胎發(fā)育、葉子的發(fā)育、花對稱性、花粉發(fā)育、晝夜節(jié)律、葉形態(tài)發(fā)生和衰老等。近年來,隨著基因工程的迅速發(fā)展和轉(zhuǎn)基因技術(shù)的日益完善,基因工程育種已成為育種領(lǐng)域的一個重要分支,在定向改良水稻特性方面也顯示出極大的潛力。利用分子生物學(xué)手段,將調(diào)控水稻生長發(fā)育的關(guān)鍵基因?qū)肽繕?biāo)水稻品種中,定向改良目標(biāo)水稻品種的特性,是改良水稻品種的一種有效手段。這對提高水稻產(chǎn)量、改善水稻品質(zhì)、保障人們的生活、提高人們的經(jīng)濟(jì)收入有著重要的意義。水稻TCP蛋白家族的OsPCF7基因的核苷酸序列已有文獻(xiàn)報道,但迄今為止,還未見利用該基因在培育高分蘗水稻品種的相關(guān)報道。技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:有鑒于此,本發(fā)明的目的之一在于提供水稻OsPCF7基因在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用;本發(fā)明的目的之二在于提供含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用;本發(fā)明的目的之三在于提供含有水稻OsPCF7基因的微生物轉(zhuǎn)化體在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用。為實(shí)現(xiàn)上述發(fā)明目的,本發(fā)明提供如下技術(shù)方案:1、水稻OsPCF7基因在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用,其特征在于:所述水稻OsPCF7基因的核苷酸序列如SEQIDNo.3所示。本發(fā)明中,所述水稻品種為水稻中花11號。2、含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用,所述水稻OsPCF7基因的核苷酸序列如SEQIDNo.3所示。本發(fā)明中,所述水稻品種為水稻中花11號。本發(fā)明中,所述含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體含有由35S啟動子、水稻OsPCF7基因和Tnos終止子組成的表達(dá)框。本發(fā)明中,所述含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體是由水稻OsPCF7基因替換pCAMBIA1301載體上GUS基因讀碼框而得。本發(fā)明中,所述含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體由以下方法制備:a.克隆水稻OsPCF7基因:先提取水稻總RNA,經(jīng)反轉(zhuǎn)獲得cDNA第一鏈,然后以cDNA第一鏈為模板,SEQIDNo.1和SEQIDNo.2所示核苷酸序列為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,獲得水稻OsPCF7基因;b.植物表達(dá)載體的構(gòu)建:將步驟a擴(kuò)增獲得的帶酶切位點(diǎn)的水稻OsPCF7基因分別用NcoI和BstEII雙酶切回收水稻OsPCF7基因酶切片段,同時用NcoI和BstEII雙酶切pCAMBIA1301載體回收載體骨架,然后將酶切后的水稻OsPCF7基因酶切片段與pCAMBIA1301載體骨架連接,得含有水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體。3、含有水稻OsPCF7基因的微生物轉(zhuǎn)化體在培育高分蘗水稻品種中的應(yīng)用,所述水稻OsPCF7基因的核苷酸序列如SEQIDNo.3所示。本發(fā)明中,所述水稻品種為水稻中花11號。本發(fā)明中,所述微生物轉(zhuǎn)化體為農(nóng)桿菌。本發(fā)明的有益效果在于:本發(fā)明首次發(fā)現(xiàn)水稻OsPCF7基因具有調(diào)控水稻形態(tài)建成的功能,因此根據(jù)水稻OsPCF7基因的序列特點(diǎn),選取水稻OsPCF7基因的讀碼框片段,構(gòu)建了水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體,通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)將水稻OsPCF7基因的植物表達(dá)載體轉(zhuǎn)入中花11號中,獲得了轉(zhuǎn)基因水稻陽性植株,檢測結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)基因水稻陽性植株中OsPCF7基因的表達(dá)較非轉(zhuǎn)基因水稻植株顯著增加,轉(zhuǎn)基因水稻陽性植株的分蘗數(shù)量顯著增加,表明水稻OsPCF7基因可用于高分蘗能力水稻的育種,對獲得促進(jìn)水稻穩(wěn)產(chǎn)、高產(chǎn)水稻具有重要意義。附圖說明為了使本發(fā)明的目的、技術(shù)方案和有益效果更加清楚,本發(fā)明提供如下附圖和附表:圖1為OsPCF7基因讀碼框片段PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳圖,其中M為DNA分子量標(biāo)準(zhǔn),1為OsPCF7基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。圖2為超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7的PCR鑒定圖,其中M為DNA分子量標(biāo)準(zhǔn),1為以超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7為模板獲得的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。圖3為超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7的酶切鑒定圖,其中M為DNA分子量標(biāo)準(zhǔn),1為超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7的酶切產(chǎn)物。圖4為OsPCF7基因植物表達(dá)載體pCAMBIA1301-OsPCF7的結(jié)構(gòu)圖(LB:左邊界、RB:右邊界;T35S:35S終止子;HPT:潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶基因;Pnos:胭脂堿合成酶啟動子;MCS:多克隆酶切位點(diǎn);P35S:35S啟動子;OsPCF7:水稻OsPCF7基因;Tnos:終止子)。圖5為轉(zhuǎn)基因陽性植株與非轉(zhuǎn)基因植株基因組DNAPCR擴(kuò)增產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳圖,其中M為DNA分子量標(biāo)準(zhǔn),L1、L2、L3和L4分別為不同株系的轉(zhuǎn)基因陽性植株,NT為非轉(zhuǎn)基因植株。圖6為水稻幼苗圖,其中NT為非轉(zhuǎn)基因植株,L1、L2、L3和L4分別為不同株系的轉(zhuǎn)基因陽性植株。具體實(shí)施方式下面將結(jié)合附圖,對本發(fā)明的優(yōu)選實(shí)施例進(jìn)行詳細(xì)的描述。實(shí)施例中未注明具體條件的實(shí)驗(yàn)方法,通常按照常規(guī)條件,例如分子克隆實(shí)驗(yàn)指南(第三版,J.薩姆布魯克等著)中所述的條件,或按照制造廠商所建議的條件。優(yōu)選實(shí)施例中使用的水稻品系為中花11號(Oryzasativacv.Zhonghua11),質(zhì)粒pCAMBIA1301(攜帶CaMV35S啟動子和終止子)和大腸桿菌DH5α由本實(shí)驗(yàn)室保存。TaKaRaRNAPCRKit(AMV)Ver.3.0試劑盒、限制性內(nèi)切酶、TaqDNA合成酶等為大連TaKaRa公司產(chǎn)品。超薄/普通瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒(離心柱型)為TIANGEN公司產(chǎn)品。其余試劑均為進(jìn)口或國產(chǎn)分析純試劑。實(shí)施例1、水稻OsPCF7基因讀碼框片段的克隆根據(jù)GenBank中查找到的OsPCF7基因候選序列(NM_001050819),用序列處理在線工具包(SMS)生物軟件網(wǎng)http://www.bio-soft.net/sms查找其最大開放閱讀框序列,采用PrimerPremier5.0軟件設(shè)計引物OsPCF7-f:5’-catgccatgggcatgcgcaacgccaagg-3’(SEQIDNo.1,下劃線部分為NcoI酶切位點(diǎn))和OsPCF7-r:5’-gggtaacctcacctgatcacctcacttcc-3’(SEQIDNo.2,下劃線部分為BstEII酶切位點(diǎn))。取不同中花11號水稻幼苗,提取總RNA,然后將提取的總RNA根據(jù)TaKaRaRNAPCRKit(AMV)Ver.3.0試劑盒說明書進(jìn)行cDNA第一鏈的合成,再以該cDNA第一鏈為模板,利用引物OsPCF7-f和OsPCF7-r擴(kuò)增OsPCF7基因的讀碼框序列。PCR擴(kuò)增體系組成為:2×TaqMix25μl、OsPCF7-f2.5μl、OsPCF7-r2.5μl、cDNA2.5μl、ddH2O17.5μl,共50μl。序列擴(kuò)增條件為95℃預(yù)變性30s;95℃變性30s、58℃退火30s、72℃延伸50s,循環(huán)35次;最后72℃后延伸10min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物采用瓊脂糖凝膠電泳鑒定,結(jié)果如圖1所示。結(jié)果顯示,PCR擴(kuò)增出一條大小為833bp的DNA片段。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物采用瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒進(jìn)行回收純化,按照試劑盒說明書操作。實(shí)施例2、水稻OsPCF7基因植物表達(dá)載體的構(gòu)建用NcoI和BstEII雙酶切純化的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,得到OsPCF7基因的開放讀碼框片段,再與經(jīng)同樣雙酶切的載體pCAMBIA1301骨架連接,獲得植物超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7。將構(gòu)建的超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7用引物OsPCF7-f和OsPCF7-r擴(kuò)增進(jìn)行PCR鑒定,結(jié)果如圖2所示。結(jié)果顯示,獲得了長833bp的DNA片段,與OsPCF7基因的開放讀碼框片段大小一致。同時,將構(gòu)建的超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7用NcoI和BstEII進(jìn)行雙酶切鑒定,結(jié)果如圖3所示。酶切后產(chǎn)物長分別為9771bp和813bp,分別與載體pCAMBIA1301骨架片段和水稻OsPCF7基因的開放讀碼框片段大小一致,表明水稻OsPCF7基因成功連接于pCAMBIA1301骨架上,OsPCF7基因植物表達(dá)載體pCAMBIA1301-OsPCF7的結(jié)構(gòu)如圖4所示。然后將陽性重組子委托英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司進(jìn)行測序驗(yàn)證,結(jié)果顯示,構(gòu)建的植物超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7序列正確,其開放讀碼框序列如SEQIDNo.3所示。實(shí)施例3、水稻PCF7基因農(nóng)桿菌工程菌株的制備將超表達(dá)雙元載體pCAMBIA1301-OsPCF7采用液氮冷激法轉(zhuǎn)化根癌農(nóng)桿菌AGL0感受態(tài)細(xì)胞,涂布于YEB固體培養(yǎng)基(含有1.5%(w/w)的瓊脂、50mg/L的卡那霉素(Kan)、500mg/L的鏈霉素(Sm)和50mg/L的利福平(Rif)),pH7.0)上,在28±2℃、黑暗條件下培養(yǎng)2天,挑取單菌落,用YEB液體培養(yǎng)基(含有50mg/L的Kan、500mg/L的Sm和50mg/L的Rif,pH7.0)培養(yǎng)2天,取菌液進(jìn)行PCR鑒定,陽性重組子即為水稻OsPCF7基因農(nóng)桿菌工程菌株,-80℃冷凍保存,備用。實(shí)施例4、農(nóng)桿菌介導(dǎo)的水稻OsPCF7基因植物表達(dá)載體轉(zhuǎn)化水稻與鑒定將剝?nèi)ネ鈿さ闹谢?1種子在NBD2愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,待長出愈傷后,選取呈球形,顏色亮黃的愈傷組織轉(zhuǎn)入NBD2愈傷繼代培養(yǎng)基上繼代培養(yǎng)。一次繼代時間為20d左右。繼代兩次后選取緊實(shí)、呈球形或片狀、顏色亮黃、直徑為10μm左右大小的愈傷浸入上述OsPCF7基因農(nóng)桿菌工程菌株的AAM懸液中共培養(yǎng)。轉(zhuǎn)化植株的再生和培養(yǎng)按文獻(xiàn)方法進(jìn)行(HuTZ.OsLEA3,aLateembryogenesisabundantproteingenefromrice,conferstolerancetowaterdeficitandsaltstresstotransgenicrice.RussJPlantPhysiol.2008,55:530-537)。PCR檢測轉(zhuǎn)基因水稻中潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶基因(HPT)的存在:分別取不同株系的轉(zhuǎn)基因水稻植株及非轉(zhuǎn)基因水稻植株,提取基因組DNA,然后以所得基因組DNA為模板,以HPT-f(SEQIDNo.4)和HPT-r(SEQIDNo.5)為特異引物進(jìn)行PCR檢測,篩選轉(zhuǎn)基因陽性植株。PCR擴(kuò)增體系如前所述。PCR擴(kuò)增循環(huán)參數(shù)為:94℃預(yù)變性2min;然后94℃變性30s,58℃退火30s,72℃延伸40s,共35個循環(huán);最后72℃終延伸10min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果如圖5所示。結(jié)果顯示不同株系轉(zhuǎn)基因陽性植株的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物都在1026bp的特異電泳條帶,而非轉(zhuǎn)基因植株的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物在相應(yīng)位置沒有出現(xiàn)電泳條帶,表明轉(zhuǎn)基因陽性植株中OsPCF7基因成功整合入水稻植株中。實(shí)施例5、轉(zhuǎn)基因陽性植株與非轉(zhuǎn)基因植株分蘗情況比較分別將轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L1、L2、L3、L4號和非轉(zhuǎn)基因水稻幼苗植株種植于田中,觀察植株的狀態(tài),結(jié)果如圖6和表1所示。表1、轉(zhuǎn)基因陽性植株與非轉(zhuǎn)基因植株的分蘗數(shù)和抽穗數(shù)比較辣椒植株平均分蘗數(shù)量平均抽穗數(shù)量非轉(zhuǎn)基因植株25.422.6轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L136.234.2轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L244.744.3轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L335.834.0轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L436.034.5在同一生長時期,轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L1、L2、L3、L4號的分蘗數(shù)量較非轉(zhuǎn)基因植株多。轉(zhuǎn)基因陽性植株株系L1、L2、L3、L4號最終分蘗數(shù)和抽穗數(shù)也高于非轉(zhuǎn)基因植株(表1)。上述結(jié)果表明OsPCF7提高水稻分蘗的作用,可以用于培育高分蘗水稻品種。最后說明的是,以上優(yōu)選實(shí)施例僅用以說明本發(fā)明的技術(shù)方案而非限制,盡管通過上述優(yōu)選實(shí)施例已經(jīng)對本發(fā)明進(jìn)行了詳細(xì)的描述,但本領(lǐng)域技術(shù)人員應(yīng)當(dāng)理解,可以在形式上和細(xì)節(jié)上對其作出各種各樣的改變,而不偏離本發(fā)明權(quán)利要求書所限定的范圍。當(dāng)前第1頁1 2 3 
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