1.一種有效的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，包括以下步驟：
步驟1，按Trizol法提取總RNA，獲得總RNA溶液，用DEPC水將總RNA溶液的濃度調(diào)至1μg/μL；
步驟2，取一定體積的總RNA溶液，分別加入相當(dāng)于總RNA溶液1/10體積的40-60％聚乙二醇和相當(dāng)于總RNA溶液1/10體積的4-6M NaCl溶液，混合均勻，冰浴30min，然后于4℃、15000rmp離心10min，收集上清液；
步驟3，向步驟2的上清液中加入相當(dāng)于上清液2.5倍體積的無水乙醇，然后于-20℃放置2-3h，之后于4℃、15000rpm離心1-1.5h，棄去上清液，得到RNA沉淀物；
步驟4，用體積濃度為75-80％的乙醇清洗RNA沉淀物2次，自然晾干，并將自然晾干后的RNA沉淀物溶于一定體積的DEPC水中，獲得富集的RNA溶液；
步驟5，制備聚丙烯酰氨質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15％變性聚丙烯酰氨凝膠，并在200V電壓下預(yù)電泳15-30min；
步驟6，配制一定體積的RNA樣品點(diǎn)樣溶液，所述RNA樣品點(diǎn)樣溶液按照以下步驟配制：步驟4中富集的RNA溶液和2×上樣緩沖液，按1∶1的體積比渦旋混勻，65℃保溫5-10min，然后放于冰上保存?zhèn)溆茫?/p>
步驟7，配制一定體積的marker溶液，所述marker溶液按照以下步驟配制：2×上樣緩沖液和包含10-500nt的DNA marker，按1∶1的體積比渦旋混勻，65℃保溫5-10min，然后放于冰上保存?zhèn)溆茫?/p>
步驟8，將步驟6的RNA樣品點(diǎn)樣溶液和步驟7的marker溶液分別點(diǎn)樣于變性聚丙烯酰氨凝膠中，200V電壓下電泳1h，然后取出變性聚丙烯酰氨凝膠，并用濃度為1μg/μL的EB溶液浸泡染色5min，最后回收并純化變性聚丙烯酰氨凝膠中的低分子量RNA，獲得低分子量RNA溶液。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，步驟8中，按以下步驟回收并純化變性聚丙烯酰氨凝膠中的低分子量RNA：
步驟1)，切下變性聚丙烯酰氨凝膠上含有低分子量RNA的凝膠塊，放于2mL離心管中，搗碎成凝膠碎粒，然后加入相當(dāng)于凝膠碎粒2倍體積的0.3M NaCl溶液，混勻，室溫靜置12-15h，獲得凝膠溶液；
步驟2)，將凝膠溶液轉(zhuǎn)移至RNA過濾柱中，于4℃、13000-15000rpm離心1min，棄去凝膠碎粒，收集過濾液；
步驟3)，向過濾液中分別加入3μL質(zhì)量濃度為5mg/mL的糖原和相當(dāng)于過濾液2.5倍體積的無水乙醇，混勻，于-80℃靜置2-12h，然后于4℃、15000rpm離心30min，并棄去上清液，得到低分子量RNA沉淀物；
步驟4)，用體積濃度為75-80％的乙醇清洗低分子量RNA沉淀物2次，然后自然晾干，并將晾干后的低分子量RNA沉淀物溶于10μL DEPC水中，獲得低分子量RNA溶液。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，步驟2中NaCl溶液的濃度為5M，聚乙二醇的體積濃度為50％。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，步驟3中于-20℃放置時(shí)間為2h，4℃、15000rpm離心時(shí)間為1h。
5.根據(jù)權(quán)利要求2所述的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，步驟4中乙醇的體積濃度是80％。
6.根據(jù)權(quán)利要求2所述的低分子量RNA分離純化方法，其特征在于，步驟4)中乙醇的體積濃度是80％。
7.根據(jù)權(quán)利要求1-5任一項(xiàng)所述的低分子量RNA分離純化方法，在提取植物中低分子量RNA的應(yīng)用。
8.根據(jù)權(quán)利要求7所述的低分子量RNA分離純化方法，在提取番茄中低分子量RNA的應(yīng)用。