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一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法與流程

文檔序號(hào):12118035閱讀:2940來(lái)源:國(guó)知局

本發(fā)明涉及顯微鏡載物片的制備領(lǐng)域,具體涉及一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法。



背景技術(shù):

由于電鏡產(chǎn)生的電子束穿透能力很弱,必須把標(biāo)本切成厚度小于0.1μm以下的薄片才適用,這樣的薄片稱為超薄切片,常用的超薄切片厚度是50-70nm。而超薄切片技術(shù)是制備超薄切片最常用、最基本的制備技術(shù)。其制作過(guò)程基本需要經(jīng)過(guò)取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片和染色等步驟。

實(shí)驗(yàn)室實(shí)驗(yàn)時(shí),為了降低不可控因素的干擾,通常是針對(duì)性的對(duì)觀察目標(biāo)進(jìn)行處理,避免夾雜其它干擾因素。例如,在雄性生殖能力的實(shí)驗(yàn)研究中,經(jīng)常需要制作精子的電鏡標(biāo)本,也需要使用超薄切片技術(shù),目前常規(guī)的制作方法是將精子從附睪中取出,然后用PBS液沖洗,離心,棄掉上清液,然后將離心后的精子用戊二醛固定,最后于電鏡室制作標(biāo)本,用于超微機(jī)構(gòu)的觀察。但是該法存在較大缺陷,因?yàn)閷?shí)驗(yàn)將觀察目標(biāo)精子直接從附睪中取出,精子暴露在外,且電鏡標(biāo)本制作過(guò)程中需要多種液體對(duì)固定好的樣本進(jìn)行沖洗,這必然導(dǎo)致精子樣本被沖散,則會(huì)使得精子樣本量不足夠多,最后將不能成功制作電鏡標(biāo)本,這樣的情況出現(xiàn)時(shí),需要重新制片,加大了工作量,還導(dǎo)致制片過(guò)程中使用到的原料的浪費(fèi)。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明旨在提供一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法,以解決現(xiàn)有技術(shù)制備精子標(biāo)本過(guò)程中,精子暴露在外容易被試劑沖散,導(dǎo)致制片失敗的技術(shù)問(wèn)題。

為了解決上述技術(shù)問(wèn)題,本發(fā)明提供如下基礎(chǔ)技術(shù)方案:一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法,包括以下步驟:

a、從經(jīng)過(guò)滅菌處理的實(shí)驗(yàn)鼠中分離附睪,并將附睪從實(shí)驗(yàn)鼠的腹部取出,使用PBS液清洗,至液體清澈,無(wú)血液殘留,將附睪剪短,保留附睪尾,將其置于濃度為2.5%的戊二醛中浸泡;

b、將步驟c處理后的附睪尾置于3~5℃的環(huán)境下放置20~26h后,制作電鏡標(biāo)本即可。

本發(fā)明的有益效果為:本發(fā)明突破現(xiàn)有常規(guī)技術(shù)操作方法,直接采用附睪組織來(lái)觀察精子,這樣一來(lái)省去了使用離心將精子從附睪中取出的步驟,最終制備的標(biāo)本是附睪尾和精子的結(jié)合,精子不直接暴露在附睪外,附睪尾對(duì)精子的移動(dòng)進(jìn)行限制,在使用PBS液清洗時(shí),PBS液更多的是接觸到附睪,最終經(jīng)過(guò)戊二醛浸泡固定,這樣避免精子直接接觸到制片過(guò)程中使用的試劑,進(jìn)而大大降低了精子被試劑沖散的可能,提高了制片的成功率,避免制片過(guò)程中使用到的各種原料的浪費(fèi),還提高了工作效率。本方案和現(xiàn)有技術(shù)相比,還無(wú)需將精子從附睪中取出,進(jìn)而也就不需要離心操作,減少了工作環(huán)節(jié),操作簡(jiǎn)單易行。

進(jìn)一步,作為對(duì)基礎(chǔ)方案的優(yōu)化方案一:步驟a中附睪尾在戊二醛中浸泡的時(shí)間為1~2h。使用戊二醛浸泡附睪尾的目的是盡可能使細(xì)胞中的各種細(xì)胞器以及大分子結(jié)構(gòu)保持生活狀態(tài),并且牢固地固定在它們?cè)瓉?lái)所在的位置上,有助于電鏡觀察。而為了達(dá)到更好的固定效果,本方案通過(guò)實(shí)踐證明將附睪尾浸泡1~2h的固定效果最佳,基本無(wú)細(xì)胞離散和失活的現(xiàn)象發(fā)生。

進(jìn)一步,作為對(duì)基礎(chǔ)方案和優(yōu)化方案一的優(yōu)化:步驟b中將保留下的附睪尾修成1mm×1mm×2mm大小長(zhǎng)條形。因?yàn)槲於┑臐B透能力較弱,如果修整后的附睪尾太大,則附睪尾的內(nèi)部將不能得到良好的浸泡固定。

具體實(shí)施方式

下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)本發(fā)明技術(shù)方案進(jìn)一步說(shuō)明,但并不因此將本發(fā)明限制在所述實(shí)施例范圍之中。下列實(shí)施例中未注明具體條件和步驟的實(shí)驗(yàn)方法,按照本領(lǐng)域的常規(guī)方法和條件操作。

實(shí)施例1:

一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法,包括以下步驟:

a、通過(guò)實(shí)驗(yàn)手段使實(shí)驗(yàn)鼠窒息,將實(shí)驗(yàn)鼠用濃度為75%的酒精浸泡滅菌后,在實(shí)驗(yàn)鼠的腹部剪開(kāi)一道V形切口,使附睪暴露;分離附睪,并將附睪從實(shí)驗(yàn)鼠的腹部取出,使用PBS液清洗,至液體清澈,無(wú)血液殘留,將附睪剪短,保留附睪尾,將其置于濃度為2.5%的戊二醛中浸泡2h;

b、將步驟a處理后的附睪尾置于5℃的環(huán)境下放置26h后,修成1mm×1mm×2mm大小長(zhǎng)條形電鏡標(biāo)本即可進(jìn)行電鏡觀察。

實(shí)施例2:

一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法,包括以下步驟:

a、通過(guò)實(shí)驗(yàn)手段使實(shí)驗(yàn)鼠窒息,將實(shí)驗(yàn)鼠用濃度為75%的酒精浸泡滅菌后,在實(shí)驗(yàn)鼠的腹部剪開(kāi)一道V形切口,使附睪暴露;分離附睪,并將附睪從實(shí)驗(yàn)鼠的腹部取出,使用PBS液清洗,至液體清澈,無(wú)血液殘留,將附睪剪短,保留附睪尾,將其置于濃度為2.5%的戊二醛中浸泡1.5h;

b、將步驟a處理后的附睪尾置于4℃的環(huán)境下放置24h后,修成1mm×1mm×2mm大小長(zhǎng)條形電鏡標(biāo)本即可進(jìn)行電鏡觀察。

實(shí)施例3:

一種精子電鏡標(biāo)本的制片方法,包括以下步驟:

a、通過(guò)實(shí)驗(yàn)手段使實(shí)驗(yàn)鼠窒息,將實(shí)驗(yàn)鼠用濃度為75%的酒精浸泡滅菌后,在實(shí)驗(yàn)鼠的腹部剪開(kāi)一道V形切口,使附睪暴露;分離附睪,并將附睪從實(shí)驗(yàn)鼠的腹部取出,使用PBS液清洗,至液體清澈,無(wú)血液殘留,將附睪剪短,保留附睪尾,將其置于濃度為2.5%的戊二醛中浸泡1h;

b、將步驟a處理后的附睪尾置于3℃的環(huán)境下放置20h后,修成1mm×1mm×2mm大小長(zhǎng)條形電鏡標(biāo)本即可進(jìn)行電鏡觀察。

對(duì)于本領(lǐng)域的技術(shù)人員來(lái)說(shuō),在不脫離本發(fā)明結(jié)構(gòu)的前提下,還可以作出若干變形和改進(jìn),這些也應(yīng)該視為本發(fā)明的保護(hù)范圍,這些都不會(huì)影響本發(fā)明實(shí)施的效果和專利的實(shí)用性。

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