本發(fā)明屬于生物醫(yī)藥技術(shù)領(lǐng)域,涉及一種具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽及其合成方法,尤其涉及一種具有新骨架的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定的海洋多肽α芋螺毒素類似物及其合成方法。
背景技術(shù):
芋螺毒素(conotoxin或conopeptide,或ctx),由海洋腹足綱軟體動物芋螺(conus)的毒液管和毒囊內(nèi)壁的毒腺所分泌,由許多單一毒肽組成的雞尾酒樣的混合毒素,主要成分是一些對不同離子通道及神經(jīng)受體高專一性的活性多肽化合物。每種芋螺的毒液中可能含50~200個活性多肽。不同種芋螺所含活性肽各不相同,即使同種芋螺因海域不同,其毒素成分也可存在差別,理論上估計有5萬多種不同活性肽存在于芋螺毒液中。芋螺毒素多數(shù)由10~40個氨基酸殘基組成,富含兩對或三對二硫鍵,是發(fā)現(xiàn)的最小核酸編碼的動物神經(jīng)毒素肽,也是二硫鍵密度最高的小肽,可作用于各種離子通道和受體的類型及亞型。
α-芋螺毒素是a-超家族芋螺毒素中分布最廣、豐度最高的家族,它們是一些12~30aa的小肽,通常含兩個二硫鍵,有20種α-芋螺毒素的一級結(jié)構(gòu)得到了確證,分別來自不同的芋螺種。α-芋螺毒素是神經(jīng)或肌肉乙酰膽堿受體的抑制劑。而一種芋螺中同時可能含有6種以上的α-芋螺毒素,其靶位分子均為nachr受體。已知不同生物物種或同一種物種體內(nèi)均存在多種nachr受體亞型,某些生物體內(nèi)nachr受體亞型可達(dá)16種之多。為了適應(yīng)此種生態(tài)環(huán)境,α-芋螺毒素的分子結(jié)構(gòu)不斷進(jìn)化,其二硫鍵間的loop環(huán)框架與氨基酸組成發(fā)生變異。
α芋螺毒素vc1.1是一種作用于乙酰膽堿受體的具有潛在鎮(zhèn)痛活性的多肽,含有四個半胱氨酸形成兩對二硫鍵來維持結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定。目前主要的合成方法是固相合成法,但由于兩對二硫鍵的形成需要進(jìn)行兩步氧化,實驗過程較為繁瑣且降低了最終產(chǎn)率。而且二硫鍵在體內(nèi)容易被谷胱甘肽酶和氧化還原酶還原而使生物活性降低。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
為實現(xiàn)上述目的,本發(fā)明提供一種具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽,通過改造α芋螺毒素vc1.1得到,合成過程簡單,解決了現(xiàn)有技術(shù)中α芋螺毒素vc1.1的合成實驗步驟繁瑣,終產(chǎn)率低的問題。
本發(fā)明的另一目的是提供一種具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法。
本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是,一種具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽,具有潛在鎮(zhèn)痛性多肽的氨基酸序列是ghcsdprfnydhpeicggaagg。
本發(fā)明所采用的技術(shù)方案是,一種具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法,具體按照以下步驟進(jìn)行:
步驟1,將野生型α芋螺毒素vc1.1肽鏈2、8位上的一對二硫鍵刪除,并在肽鏈2、8位分別引入組氨酸與苯丙氨酸,得到具有潛在鎮(zhèn)痛性多肽的氨基酸序列,選擇野生型α芋螺毒素vc1.1作為模板,采用modeller軟件,在linux系統(tǒng)環(huán)境下,利用同源建模方法生成目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu)模型,采用dope打分對所獲得的三維結(jié)構(gòu)模型進(jìn)行打分排序,選取最優(yōu)目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu)模型;
步驟2,采用fmoc固相合成法對最優(yōu)目標(biāo)蛋白的多肽序列進(jìn)行化學(xué)全合成,采用2-ctc樹脂,樹脂活化后,在樹脂上對多肽鏈進(jìn)行合成,利用質(zhì)量濃度15%-25%的哌啶/dmf溶液進(jìn)行氨基酸氮端fmoc的脫保護(hù),利用hctu、dipea進(jìn)行各氨基酸之間的偶聯(lián)反應(yīng);偶聯(lián)完成后采用tfa的稀溶液作為切割劑,將多肽鏈從樹脂上切割下來,即得。
本發(fā)明的特征還在于,所述具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法還包括以下步驟:將步驟2中所得多肽產(chǎn)物溶解于1ml-5ml的dmf溶液,使多肽濃度達(dá)2mm-5mm,根據(jù)已加入的dmf的體積,加入5mm-25mm的hatu和10mm-50mm的dipea,室溫攪拌3h-4h,反應(yīng)完成后,加入質(zhì)量濃度20%-60%的乙腈水溶液凍干,得到環(huán)化多肽,將環(huán)化多肽的保護(hù)基進(jìn)行切割,采用tfa:tips:h2o=96:2:2的溶液作為切割劑;室溫攪拌2h-3h,反應(yīng)完成,旋蒸除去大量tfa后,加入冰乙醚,環(huán)多肽析出;隨后采用hplc進(jìn)行純化,得到具有鎮(zhèn)痛活性的環(huán)多肽。
本發(fā)明的有益效果是,本發(fā)明刪除α芋螺毒素vc1.1序列中的一對二硫鍵,簡化了化學(xué)全合成中的實驗步驟,容易得到最終產(chǎn)物,終產(chǎn)率提高,因為本發(fā)明具有潛在鎮(zhèn)痛性多肽僅含有一對二硫鍵,所以合成過程中不會形成二硫鍵異構(gòu)體,氧化過程只需在弱堿環(huán)境(0.1mnh4hco3,ph=8~8.5)中氧化,這大大減小了后續(xù)分離純化的負(fù)擔(dān)。相反,野生型α芋螺毒素vc1.1含有兩對二硫鍵,合成過程中需要選擇性保護(hù),氧化過程也需要兩步,不僅要在空氣中氧化,還需要碘氧化法。因此,本發(fā)明的多肽具有合成容易,純化簡便,避免了異構(gòu)體形成的優(yōu)點。
此外,經(jīng)分子動力學(xué)模擬與核磁共振技術(shù)測定,本發(fā)明具有潛在鎮(zhèn)痛性多肽保留了野生型多肽的結(jié)構(gòu)與穩(wěn)定性;經(jīng)過環(huán)化獲得具有鎮(zhèn)痛活性的環(huán)多肽類似物,能夠用于海洋多肽鎮(zhèn)痛藥物的開發(fā),且該結(jié)構(gòu)序列短結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,能夠用來修飾提高活性并設(shè)計其它多肽藥物。
附圖說明
為了更清楚地說明本發(fā)明實施例或現(xiàn)有技術(shù)中的技術(shù)方案,下面將對實施例或現(xiàn)有技術(shù)描述中所需要使用的附圖作簡單地介紹,顯而易見地,下面描述中的附圖僅僅是本發(fā)明的一些實施例,對于本領(lǐng)域普通技術(shù)人員來講,在不付出創(chuàng)造性勞動的前提下,還可以根據(jù)這些附圖獲得其他的附圖。
圖1是本發(fā)明刪除α芋螺毒素vc1.1序列中的一對二硫鍵的結(jié)構(gòu)示意圖。
圖2是本發(fā)明多肽骨架分子內(nèi)氫鍵的穩(wěn)定性曲線。
圖3a是多肽抑制α9α10nachr的電流強(qiáng)度曲線圖。
圖3b是多肽濃度抑制曲線。
具體實施方式
下面將結(jié)合本發(fā)明實施例中的附圖,對本發(fā)明實施例中的技術(shù)方案進(jìn)行清楚、完整地描述,顯然,所描述的實施例僅僅是本發(fā)明一部分實施例,而不是全部的實施例?;诒景l(fā)明中的實施例,本領(lǐng)域普通技術(shù)人員在沒有做出創(chuàng)造性勞動前提下所獲得的所有其他實施例,都屬于本發(fā)明保護(hù)的范圍。
本發(fā)明具有潛在鎮(zhèn)痛性多肽的氨基酸序列是ghcsdprfnydhpeicggaagg;α芋螺毒素vc1.1的氨基酸序列是gccdprcnydhpeic#,#代表氨基化;如圖1所示,α芋螺毒素vc1.1肽鏈2、8位上的二硫鍵被刪除,并在肽鏈2、8位分別引入組氨酸與苯丙氨酸。
實施例1,
具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法,具體按照以下步驟進(jìn)行:
步驟1,在同源模建過程中,需要提供目標(biāo)蛋白與模板蛋白的序列比對及模板蛋白的三維結(jié)構(gòu),然后使用modeller軟件直接生成目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu);將野生型α芋螺毒素vc1.1肽鏈2、8位上的一對二硫鍵刪除,并在肽鏈2、8位分別引入組氨酸與苯丙氨酸,選擇野生型α芋螺毒素vc1.1作為模板,采用modeller軟件,在linux系統(tǒng)環(huán)境下,利用同源建模方法采用modeller9.14生成100個目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu)模型,采用dope打分對所獲得的三維結(jié)構(gòu)模型進(jìn)行打分排序,選取最優(yōu)目標(biāo)蛋白的三維結(jié)構(gòu)模型;
步驟2,采用fmoc固相合成法對最優(yōu)目標(biāo)蛋白的多肽序列進(jìn)行化學(xué)全合成,采用2-ctc樹脂,樹脂活化后,在樹脂上對多肽鏈進(jìn)行合成,利用質(zhì)量濃度20%的哌啶/dmf溶液進(jìn)行氨基酸氮端fmoc的脫保護(hù),利用hctu、dipea進(jìn)行各氨基酸之間的偶聯(lián)反應(yīng);偶聯(lián)完成后采用tfa的稀溶液作為切割劑,將多肽鏈從樹脂上切割下來,得到具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽。本發(fā)明采用fmoc固相合成法,因其反應(yīng)條件溫和,副產(chǎn)物少,同時避開使用hf作為多肽從樹脂上的切割劑。
步驟3,環(huán)化獲得具有鎮(zhèn)痛活性的環(huán)多肽:對步驟2中所得多肽粗產(chǎn)物進(jìn)行首尾環(huán)化,將其溶解于2ml的dmf溶液,使多肽濃度達(dá)3mm,根據(jù)已加入的dmf的體積,加入10mm的hatu和20mm的dipea,室溫攪拌3h,反應(yīng)完成后,加入50%的乙腈/水溶液凍干,得到已經(jīng)環(huán)化的多肽;為提高環(huán)化產(chǎn)率,多肽鏈上的側(cè)鏈保護(hù)基被保留,因此環(huán)化結(jié)束后,將各保護(hù)基進(jìn)行切割,采用tfa:tips:h2o=96:2:2的溶液作為切割劑;室溫攪拌2h,反應(yīng)完成,旋蒸除去大量tfa后,加入冰乙醚,環(huán)肽析出。隨后采用hplc進(jìn)行純化,得到的產(chǎn)物對其進(jìn)行表征。常用的表征手段有分析高效液相色譜(analyticalhplc)、質(zhì)譜(ms)、以及核磁共振(nmr)等。其中analyticalhplc用來表征獲得樣品的純度;ms表征樣品的分子量;nmr用來表征樣品的結(jié)構(gòu)。
實施例2,
具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法,具體按照以下步驟進(jìn)行:
步驟1與實施例1相同;
步驟2,采用fmoc固相合成法對最優(yōu)目標(biāo)蛋白的多肽序列進(jìn)行化學(xué)全合成,采用2-ctc樹脂,樹脂活化后,在樹脂上對多肽鏈進(jìn)行合成,利用質(zhì)量濃度15%的哌啶/dmf溶液進(jìn)行氨基酸氮端fmoc的脫保護(hù),利用hctu、dipea進(jìn)行各氨基酸之間的偶聯(lián)反應(yīng);偶聯(lián)完成后采用tfa的稀溶液作為切割劑,將多肽鏈從樹脂上切割下來,得到具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽。本發(fā)明采用fmoc固相合成法,因其反應(yīng)條件溫和,副產(chǎn)物少,同時避開使用hf作為多肽從樹脂上的切割劑。
步驟3,環(huán)化獲得具有鎮(zhèn)痛活性的環(huán)多肽:對步驟2中所得多肽粗產(chǎn)物進(jìn)行首尾環(huán)化,將其溶解于1ml的dmf溶液,使多肽濃度達(dá)2mm,根據(jù)已加入的dmf的體積,加入25mm的hatu和10mm的dipea,室溫攪拌3h,反應(yīng)完成后,加入20%的乙腈/水溶液凍干,得到已經(jīng)環(huán)化的多肽;為提高環(huán)化產(chǎn)率,多肽鏈上的側(cè)鏈保護(hù)基被保留,因此環(huán)化結(jié)束后,將各保護(hù)基進(jìn)行切割,采用tfa:tips:h2o=96:2:2的溶液作為切割劑;室溫攪拌3h,反應(yīng)完成,旋蒸除去大量tfa后,加入冰乙醚,環(huán)肽析出。隨后采用hplc進(jìn)行純化,得到的產(chǎn)物對其進(jìn)行表征。常用的表征手段有分析高效液相色譜(analyticalhplc)、質(zhì)譜(ms)、以及核磁共振(nmr)等。其中analyticalhplc用來表征獲得樣品的純度;ms表征樣品的分子量;nmr用來表征樣品的結(jié)構(gòu)。
實施例3,
具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽的合成方法,具體按照以下步驟進(jìn)行:
步驟1與實施例1相同;
步驟2,采用fmoc固相合成法對最優(yōu)目標(biāo)蛋白的多肽序列進(jìn)行化學(xué)全合成,采用2-ctc樹脂,樹脂活化后,在樹脂上對多肽鏈進(jìn)行合成,利用質(zhì)量濃度25%的哌啶/dmf溶液進(jìn)行氨基酸氮端fmoc的脫保護(hù),利用hctu、dipea進(jìn)行各氨基酸之間的偶聯(lián)反應(yīng);偶聯(lián)完成后采用tfa的稀溶液作為切割劑,將多肽鏈從樹脂上切割下來,得到具有潛在鎮(zhèn)痛性的多肽。本發(fā)明采用fmoc固相合成法,因其反應(yīng)條件溫和,副產(chǎn)物少,同時避開使用hf作為多肽從樹脂上的切割劑。
步驟3,環(huán)化獲得具有鎮(zhèn)痛活性的環(huán)多肽:對步驟2中所得多肽粗產(chǎn)物進(jìn)行首尾環(huán)化,將其溶解于5ml的dmf溶液,使多肽濃度達(dá)5mm,根據(jù)已加入的dmf的體積,加入5mm的hatu和50mm的dipea,室溫攪拌4h,反應(yīng)完成后,加入60%的乙腈/水溶液凍干,得到已經(jīng)環(huán)化的多肽;為提高環(huán)化產(chǎn)率,多肽鏈上的側(cè)鏈保護(hù)基被保留,因此環(huán)化結(jié)束后,將各保護(hù)基進(jìn)行切割,采用tfa:tips:h2o=96:2:2的溶液作為切割劑;室溫攪拌2h,反應(yīng)完成,旋蒸除去大量tfa后,加入冰乙醚,環(huán)肽析出。隨后采用hplc進(jìn)行純化,得到的產(chǎn)物對其進(jìn)行表征。常用的表征手段有分析高效液相色譜(analyticalhplc)、質(zhì)譜(ms)、以及核磁共振(nmr)等。其中analyticalhplc用來表征獲得樣品的純度;ms表征樣品的分子量;nmr用來表征樣品的結(jié)構(gòu)。
本發(fā)明多肽的生物活性:
本發(fā)明多肽的生物活性測試是在非洲爪蟾卵母細(xì)胞(xenopusoocytes)上采用雙電極電壓鉗(moleculardevicescorp.,sunnyvale,ca))進(jìn)行。測試之前,經(jīng)過乙醚麻醉青蛙、解剖取卵、縫合、離子通道rna轉(zhuǎn)錄、蛋白表達(dá)等過程(大約需要1周時間)。非均質(zhì)α9α10nachr表達(dá)是通過控制注射不同亞單位mrna的濃度比來實現(xiàn)的。離子通道受體表達(dá)后采用雙膜片鉗來測試毒素的抑制活性。在測試過程中,α芋螺毒素及類似物持續(xù)灌流300s,流速為2ml/min,再加入乙酰膽堿(ach,50μm)持續(xù)灌流120s,流速為5ml/min。然后再施加乙酰膽堿(ach,50μm)流速改為5ml/min,持續(xù)120s。施加激動劑的過程中記錄電流強(qiáng)度。如圖3a所示hcvc1.1與cvc1.1對乙酰膽堿受體激動電流具有顯著的抑制,hcvc1.1的活性與vc1.1相比有所降低,但是跟cvc1.1的抑制活性相當(dāng)。另外,如圖3b所示的多肽濃度抑制曲線進(jìn)一步證實,hcvc1.1的活性雖然低于vc1.1的但是跟cvc1.1的活性相當(dāng),前者的濃度抑制曲線與后者相比僅略向右平移。通過分析電流強(qiáng)度衰退的強(qiáng)弱推導(dǎo)α芋螺毒素及類似物的半抑制濃度ic50。活性數(shù)據(jù)表明,新設(shè)計的多肽具有明顯的α9α10nachr抑制活性,其活性與改造前相比僅僅降低了3倍,見圖3a。
本發(fā)明多肽的穩(wěn)定性:對其進(jìn)行30ns的分子動力學(xué)模擬,觀察結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性的變化,采用二維核磁共振技術(shù)將本發(fā)明多肽的結(jié)構(gòu)與野生型結(jié)構(gòu)作比較,驗證結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。
分子動力學(xué)模擬:單位溫度變化引起的hn化學(xué)位移變化可以反映多肽骨架分子內(nèi)氫鍵的穩(wěn)定性。當(dāng)化學(xué)位移隨溫度變化越慢,說明對溫度的變化越不敏感,對應(yīng)的多肽結(jié)構(gòu)也越穩(wěn)定。如圖2所示,2號位x代表組氨酸(h)或半胱氨酸(c),其中野生型α芋螺毒素vc1.1、經(jīng)過環(huán)化的野生型芋螺毒素cvc1.1的2、8號位均對應(yīng)于半胱氨酸,而本發(fā)明多肽hcvc1.12號位對應(yīng)組氨酸(h),8號位x代表苯丙氨酸(f)。分子動力學(xué)模擬結(jié)果顯示,本發(fā)明多肽主鏈的rmsd平均值在
二維核磁共振研究:通過開展d2o交換實驗考察新設(shè)計多肽骨架分子內(nèi)氫鍵的穩(wěn)定性。一般來講,分子內(nèi)氫鍵越穩(wěn)定,重水交換的速率就會越慢,化學(xué)位移在單位時間內(nèi)的變化就會越小。同上操作,α芋螺毒素或類似物被溶解在90%h2o/10%d2o,配制成ph為4.5、濃度2mg/ml的溶液。記錄溫度在274k到316k變化所對應(yīng)的tocsy數(shù)值。然后,再向樣品中加入氘代乙腈,重復(fù)上面操作,記錄在溫度變化區(qū)間內(nèi)對應(yīng)的tocsy值。
研究結(jié)果顯示,見圖2,本發(fā)明多肽的化學(xué)位移變化值與改造前相當(dāng),甚至主鏈核心區(qū)的變化值還略高于改造前的多肽,因此本發(fā)明多肽雖然刪除一對二硫鍵,其結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性與改造前相當(dāng)。
終產(chǎn)率提高:本發(fā)明多肽合成的產(chǎn)率與改造前相比,提高了36%,并且純化過程更加簡便,節(jié)約了純化的溶劑,降低了能耗。
以上所述僅為本發(fā)明的較佳實施例而已,并非用于限定本發(fā)明的保護(hù)范圍。凡在本發(fā)明的精神和原則之內(nèi)所作的任何修改、等同替換、改進(jìn)等,均包含在本發(fā)明的保護(hù)范圍內(nèi)。