技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明屬于生物工程領(lǐng)域,具體涉及一種牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體及其篩選方法。
背景技術(shù):
指數(shù)富集配體系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(Systematic evolution of ligand by exponential enrichment,SELEX)是一種能獲取與靶物質(zhì)特異結(jié)合的寡核苷酸的篩選技術(shù),篩選得到的單鏈DNA或RNA分子稱為核酸適配體。核苷酸不僅有儲存和傳遞遺傳信息的作用,還可以通過自身特有的空間結(jié)構(gòu)與其它分子相互作用。在適宜條件下,單鏈DNA或RNA分子會發(fā)生適應(yīng)性折疊,形成發(fā)夾、凸環(huán)、四分體等結(jié)構(gòu),從而與靶物質(zhì)緊密結(jié)合。因此,近年來,具有高特異性、高親和力、高穩(wěn)定性、低免疫原性、低分子量、易于合成等特點的核酸適配體,得到了廣泛的應(yīng)用。核酸適配體篩選方法也多種多樣,如毛細(xì)管法、親和層析、磁珠分離、微孔板法等。毛細(xì)管法是利用毛細(xì)管電泳作為分離方法的一種技術(shù),與靶物質(zhì)結(jié)合的核苷酸序列和未與靶物質(zhì)結(jié)合的序列在毛細(xì)管中的遷移率不同,從而使結(jié)合序列與未結(jié)合序列分離;該方法具有快速、微量等特點,但需要特殊的儀器(毛細(xì)管電泳儀),且比較適于篩選分子量大的分子。親和層析分離是將靶分子通過共價鍵或非共價鍵偶聯(lián)至玻璃株或樹脂上,與文庫作用后,結(jié)合序列會留在樹脂上而不結(jié)合序列通過層析柱流走,從而達(dá)到分離的目的;該方法要求靶分子必須要有能與玻璃珠或樹脂偶聯(lián)的親和標(biāo)記或功能基團(tuán)。微孔板法是將靶分子通過物理吸附作用結(jié)合于微孔板上,加入適配體文庫孵育后棄去未結(jié)合的適配體,洗脫與靶分子結(jié)合的適配體即可;該方法適用靶分子廣,對靶分子性狀要求不嚴(yán)格,凡是能特吸附至微孔板的物質(zhì)均可進(jìn)行篩選。然而,對于不同的靶物質(zhì)應(yīng)采用適當(dāng)?shù)暮Y選方法,以便快速、準(zhǔn)確地篩選到親和力高、特異性強(qiáng)的適配體。為了得到牛副流感病毒3型HN蛋白高結(jié)合力和特異性的核酸適配體,我們采用了較為傳統(tǒng)的微孔板法,進(jìn)行了改進(jìn)和優(yōu)化。
技術(shù)實現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是為了解決現(xiàn)有技術(shù)的不足,而提供一種牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體及其篩選方法,對牛副流感病毒3型核酸適配體篩選方法進(jìn)行改進(jìn)和優(yōu)化,該篩選方法具有適用靶分子廣,對靶分子要求不嚴(yán)格,操作簡便,節(jié)約成本等優(yōu)點。同時運用該方法篩選獲得的HN蛋白核酸適配體,為后續(xù)檢測 BPIV3抗原或抗體的酶聯(lián)適配體法的建立奠定了基礎(chǔ)。
本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:
牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,包括如下步驟:
步驟一:設(shè)計和合成初始寡核苷酸文庫及用于PCR擴(kuò)增的上游引物和下游引物;
步驟二,包被:吸取HN蛋白溶液包被于微孔板中;
步驟三,洗板:甩去包被液,洗滌微孔板,甩干;
步驟四,封閉:向微孔中加入含BSA的HEPES液,孵育;
步驟五,加核酸適配體文庫:甩去封閉液,用HEPEST洗滌,甩干,將溶解的初始寡核苷酸文庫(使用時溶于400μL HEPES緩沖液,95℃孵育10min,迅速冰浴10min后備用)加入到封閉好的微孔中,孵育;
步驟六,洗板:甩去寡核苷酸文庫,洗滌微孔板,拍干孔中殘留的洗滌液;
步驟七,洗脫:向微孔中加入核酸洗脫液,孵育;
步驟八,提?。何鱿疵撘?,提取洗脫液中的核酸適配體;
步驟九,PCR:對步驟八提取的核酸適配體分別進(jìn)行一輪對稱PCR和一輪非對稱PCR;
步驟十,膠回收:回收PCR產(chǎn)物;
步驟十一,反篩:從第5輪起開始進(jìn)行反篩,封閉后,將非對稱PCR回收的核酸適配體加入反篩孔,孵育后將上清吸出,加入包被有HN蛋白的微孔中孵育。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟一種所述初始寡核苷酸文庫的序列如SEQ ID NO.1所示,上游引物的序列如SEQ ID NO.2所示,下游引物的序列如SEQ ID NO.3所示.
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟二中包被具體為:吸取100μL HN蛋白溶液包被于96孔ELISA微孔板中,4℃過夜;步驟三中的洗板具體為:甩去包被液,用300μL HEPEST洗滌微孔板三次,甩干,其中所述HEPEST為含0.05%Tween 20的HEPES。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟四中所述封閉具體為:向微孔中加入200μL含3%BSA的HEPES液,37℃孵育2h。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中 步驟五中所述加核酸適配體文庫具體為:甩去封閉液,用HEPEST洗滌三次,甩干,將100uL溶解的初始寡核苷酸文庫加入到封閉好的微孔中,37℃孵育1h。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟六中所述洗板具體為:甩去寡核苷酸文庫,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液;步驟七中所述洗脫具體為:向微孔中加入100μL核酸洗脫液,80℃孵育10min。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟八中所述提取具體為:吸出洗脫液,采取酚抽提法,用25:24:1的酚:氯仿:異戊醇提取洗脫液中的核酸適配體。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟九中所述對稱PCR具體為:2×Mix 25μL,WZ-03 1μL,WZ-04 1μL,適配體3μL,去離子水20μL,反應(yīng)條件為95℃、10min,95℃、20s,65℃、20s,72℃、30s,15個循環(huán),72℃、5min;所述非對稱PCR具體為2×Mix 25μL,WZ-03 1μL,WZ-04 0.02μL,適配體5μL,去離子水19μL,反應(yīng)條件為95℃、10min,95℃、20s,65℃、20s,72℃、30s,28個循環(huán),72℃、5min。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟十中所述膠回收具體為:用Bioteke短片段DNA膠回收試劑盒按照說明書要求回收PCR產(chǎn)物。
更進(jìn)一步地,所述的牛副流感病毒3型HN蛋白核酸適配體篩選方法,其中步驟十一中所述反篩具體為:從第5輪起開始進(jìn)行反篩,即微孔板包被HN蛋白的同時包被無HN蛋白的包被液反篩孔,同樣條件封閉后,將非對稱PCR回收的核酸適配體加入反篩孔,37℃孵育30min后將上清吸出,加入包被有HN蛋白的微孔中孵育1h
與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的有益效果:
本發(fā)明對傳統(tǒng)的微孔板法進(jìn)行了改進(jìn)和優(yōu)化,得到了與牛副流感病毒3型HN蛋白具有高結(jié)合力和特異性的核酸適配體。其中微孔板分離利用了ELISA酶標(biāo)板能吸附靶分子的功能從而達(dá)到分離的目的。將靶分子通過物理吸附作用結(jié)合于微孔板上,與適配體文庫孵育后棄去未結(jié)合的適配體,加入變性溶液從微孔板內(nèi)洗脫下與靶分子結(jié)合的核酸適配體。該方法適用靶分子廣,對靶分子性狀要求不嚴(yán)格,凡是能特吸附到微孔板的物質(zhì)均可進(jìn)行篩選。此外,該方法不需要使用特殊儀器設(shè)備和材料,操作簡便,節(jié)約成本。
附圖說明
圖1為第1輪篩選的對稱PCR與非對稱PCR瓊脂糖電泳結(jié)果,其中,1:對稱PCR樣品;2:非對稱PCR樣品;M:低分子量marker(50-400bp)N:陰性對照;
圖2為第2輪篩選的對稱PCR與非對稱PCR瓊脂糖電泳結(jié)果,其中,1:對稱PCR樣品;2:非對稱PCR樣品;M:低分子量marker(50-400bp)N:陰性對照;
圖3為第9輪篩選的對稱PCR與非對稱PCR瓊脂糖電泳結(jié)果,其中1:對稱PCR樣品;2:非對稱PCR樣品;M:低分子量marker(50-400bp)N:陰性對照;
圖4為第10輪篩選的對稱PCR與非對稱PCR瓊脂糖電泳結(jié)果,其中,1:對稱PCR樣品;2:非對稱PCR樣品;M:低分子量marker(50-400bp)N:陰性對照;
圖5為第11輪篩選的對稱PCR瓊脂糖電泳結(jié)果,其中,1:對稱PCR樣品;M:低分子量marker(50-400bp)N:陰性對照;
圖6為不同輪次適配體庫的結(jié)合率測定結(jié)果;
圖7為轉(zhuǎn)化子菌液PCR鑒定結(jié)果,其中,M:低分子量marker;N:陰性對照;其余孔為樣品;
圖8為Sigma Plot10.0繪制不同濃度適配體的擬合曲線;
圖9為適配體W-32二級結(jié)構(gòu)預(yù)測結(jié)果;
圖10為適配體W-33二級結(jié)構(gòu)預(yù)測結(jié)果;
圖11為適配體W-34二級結(jié)構(gòu)預(yù)測結(jié)果;
具體實施方式
下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進(jìn)一步的詳細(xì)描述。
本領(lǐng)域技術(shù)人員將會理解,下列實施例僅用于說明本發(fā)明,而不應(yīng)視為限定本發(fā)明的范圍。
實施例1 篩選
HN蛋白溶液,由本實驗室原核表達(dá)和保存;
初始寡核苷酸文庫序列:5’-TAG GGA ATT CGT CGA CGG ATC C-(N)40-C TGC AGG TCG ACG CAT GCG CCG,由上海生工生物工程股份公司合成。合成方式:單管合成20OD,摩爾量為24nmol。使用時溶于400μL HEPES緩沖液,95℃ 孵育10min。迅速冰浴10min后備用。
PCR引物序列:上游引物WZ03:5’-BIO-TAGGGAATTCGTCGACGGATCC;下游引物WZ04:CGGCGCATGCGTCGACCTGCAG。
具體篩選方法如下:
步驟一,包被:吸取100μL HN蛋白溶液包被于96孔ELISA微孔板中,4℃過夜。
步驟二,洗板:甩去包被液,用300μL HEPEST(含0.05%Tween 20的HEPES)洗滌微孔板三次,甩干。
步驟三,封閉:向微孔中加入200μL含3%BSA的HEPES液,37℃孵育2h。
步驟四,加核酸適配體文庫:甩去封閉液,用HEPEST洗滌三次,甩干。將100uL溶解的初始寡核苷酸文庫加入到封閉好的微孔中,37℃孵育1h。
步驟五,洗板:甩去寡核苷酸文庫,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液。
步驟六,洗脫:向微孔中加入100μL核酸洗脫液,80℃孵育10min。
步驟七,提?。何鱿疵撘海扇》映樘岱?,用25:24:1的酚:氯仿:異戊醇提取洗脫液中的核酸適配體。
步驟八,PCR:對上述步驟提取的核酸適配體分別進(jìn)行一輪對稱PCR和一輪非對稱PCR;
對稱PCR具體為:2×Mix 25μL,WZ-03 1μL,WZ-04 1μL,適配體3μL,去離子水20μL,反應(yīng)條件為95℃、10min,95℃、20s,65℃、20s,72℃、30s,15個循環(huán),72℃、5min;
非對稱PCR具體為2×Mix 25μL,WZ-03 1μL,WZ-04 0.02μL,適配體5μL,去離子水19μL,反應(yīng)條件為95℃、10min,95℃、20s,65℃、20s,72℃、30s,28個循環(huán),72℃、5min。
步驟九,膠回收:用Bioteke短片段DNA膠回收試劑盒按照說明書要求回收PCR產(chǎn)物。
步驟十,反篩:從第5輪起開始進(jìn)行反篩,即微孔板包被HN蛋白的同時包被無HN蛋白的包被液反篩孔,同樣條件封閉后,將非對稱PCR回收的核酸適配體加入反篩孔,37℃孵育30min后將上清吸出,加入包被有HN蛋白的微孔中孵育1h。反篩目的是避免篩選到與微孔板和BSA非特異結(jié)合的核酸適配體。
在每輪篩選循環(huán)中,自微孔板洗脫液中獲得的適配體溶液,用體積比為25:24:1的酚:氯仿:異戊醇抽提,用Bioteke短片段DNA回收試劑盒回收適配體候選物,然后以回收產(chǎn)物為模板進(jìn)行常規(guī)PCR擴(kuò)增,之后再進(jìn)行一輪非對稱PCR擴(kuò)增,獲得目的條帶大小約為84bp的單鏈核苷酸分子,用于下一輪篩選。篩選進(jìn)行到第11輪,將對稱PCR產(chǎn)物連接到T載體進(jìn)行轉(zhuǎn)化、克隆和測序。第1輪篩選電泳結(jié)果如圖1所示,第2輪篩選電泳結(jié)果如圖2所示,第9輪篩選電泳結(jié)果如圖3所示,第10輪篩選電泳結(jié)果如圖4所示,第11輪篩選電泳結(jié)果如圖5所示。
實施例2 核酸適配體庫結(jié)合率監(jiān)測
篩選進(jìn)行11輪后,使用生物素標(biāo)記的WZ03引物對第5輪、第9輪、第10輪、第11輪核酸適配體庫進(jìn)行非對稱PCR擴(kuò)增,膠回收非對稱PCR產(chǎn)物得到生物素標(biāo)記的核酸適配體(Bio-aptamer),分別用HEPEST溶液調(diào)整各輪次Bio-aptamer濃度至200nM。采用間接酶聯(lián)適配體法(i-ELAA)測定其與HN蛋白的結(jié)合率。
間接酶聯(lián)適配體法具體步驟如下:
步驟一,包被:吸取100μL HN蛋白溶液包被于96孔ELISA微孔板中,4℃過夜。
步驟二,洗板:甩去包被液,用300μL HEPEST(含0.05%Tween 20的HEPES)洗滌微孔板三次,甩干。
步驟三,封閉:向微孔中加入200μL含3%BSA的HEPES液,37℃孵育2h。
步驟四,加核酸適配體:甩去封閉液,用HEPEST洗滌三次,甩干。將100uL各輪次Bio-aptamer加入到封閉好的微孔中,37℃孵育1h。
步驟五,加二抗:甩去Bio-aptamer,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液,向孔中加入100μL 1:8000稀釋的HRP-SA,37℃孵育1h。
步驟六,顯色:甩去二抗,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液,將顯色液A、顯色液B等體積混合,吸取100μL顯色液加入到微孔中,37℃顯色10min。
步驟七,終止:每孔加入終止液2M H2SO4 50μL終止顯色。
步驟八,讀數(shù):使用自動酶標(biāo)檢測儀讀取每孔在450nm波長處生物吸光度 值(OD)。
經(jīng)11輪篩選后,對適配體初始文庫、第5輪、第9輪、第10輪、第11輪獲得的適配體與HN蛋白的結(jié)合力進(jìn)行了評價。采用間接ELAA方法,即使用相同濃度的生物素標(biāo)記適配體庫與相同濃度的蛋白孵育后測定吸光度值。OD450值越高,說明適配體與HN蛋白的結(jié)合率越高,結(jié)合力越強(qiáng),結(jié)果見圖6。從圖6可以看出,隨著篩選次數(shù)的增加,適配體與HN蛋白結(jié)合量增多,OD450值越來越高。從第11輪開始,OD450值不再增加,表明與HN蛋白特異性結(jié)合的適配體單一性達(dá)到穩(wěn)定狀態(tài)。
實施例3 測序
將最后一輪擴(kuò)增出的PCR產(chǎn)物連接T載體,轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞,挑取單菌落進(jìn)行PCR鑒定,陽性樣品送往北京擎科新業(yè)生物有限公司進(jìn)行序列測定。
1、連接轉(zhuǎn)化
將第11輪回收的核酸適配體進(jìn)行一輪對稱PCR,得到dsDNA,連接pEASY-T1載體。嚴(yán)格按照pEASY-T1 Simple Cloning Kit說明書進(jìn)行轉(zhuǎn)化。將轉(zhuǎn)化產(chǎn)物均勻涂布在含卡那霉素的LB固體培養(yǎng)基上,37℃溫箱過夜培養(yǎng)。可見白色和藍(lán)色菌落,白色菌落即為轉(zhuǎn)化成功的感受態(tài)細(xì)胞。
2、轉(zhuǎn)化子的增菌培養(yǎng)、鑒定及測序
增殖:無菌挑取白色菌落于1mL含卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37℃震蕩培養(yǎng)18h。
PCR鑒定及質(zhì)粒提?。河胮EASY-T1載體通用引物對增殖的菌落進(jìn)行PCR鑒定。用艾德萊的質(zhì)粒小提試劑盒提取質(zhì)粒。
測序:將提取的陽性質(zhì)粒送北京擎科新業(yè)生物有限公司測序。
將第11輪篩選的微孔板洗脫液為模板的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物與T載體連接后,轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞,涂板挑選轉(zhuǎn)化子,共挑取轉(zhuǎn)化子106個,增殖后經(jīng)PCR鑒定陽性轉(zhuǎn)化子104個,部分PCR結(jié)果如圖7所示。將目的條帶回收后送樣測序,共測序成功104條適配體,其中W-32、W-33和W-34分別重復(fù)出現(xiàn)7、11和9次(如表1),提示W(wǎng)-32、W-33和W-34被最大程度地富集,因此其特異性結(jié)合HN蛋白的可能性最大。
表1 核酸適配體測序結(jié)果
實施例4 間接酶聯(lián)適配體法測定核酸適配體的KD值
選擇篩選重復(fù)次數(shù)較多的三條適配體W-32、W-33和W-34,化學(xué)合成5’端生物素標(biāo)記的單一適配體,采用間接酶聯(lián)適配體法測定各適配體的KD值。測定程序如下:
步驟一,包被:吸取100μL HN蛋白溶液包被于96孔ELISA微孔板中,4℃過夜。
步驟二,洗板:甩去包被液,用300μL HEPEST(含0.05%Tween 20的HEPES)洗滌微孔板三次,甩干。
步驟三,封閉:向微孔中加入200μL含3%BSA的HEPES液,37℃孵育2h。
步驟四,加適配體:甩去封閉液,用HEPEST洗滌三次,甩干。分別吸取100uL適配體W-32、W-33和W-34加入到封閉好的微孔中,37℃孵育1h。
步驟五,加二抗:甩去適配體,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液,分別向孔中加入100μL 1:8000稀釋的HRP-SA,37℃孵育1h。
步驟六,顯色:甩去二抗,用300μL HEPEST洗滌微孔板四次,拍干孔中殘留的洗滌液,將顯色液A、顯色液B等體積混合,吸取100μL顯色液加入到微孔中,37℃顯色10min。
步驟七,終止:每孔加入50μL終止液(2M H2SO4)終止顯色。
步驟八,讀數(shù):用自動酶標(biāo)檢測儀讀取每孔在450nm波長處的吸光度值(OD)。
步驟九,計算:根據(jù)公式Y(jié)=BmaxX/(Kd+X)來計算每條適配體的KD值。其中,Y代表OD450平均值,Bmax代表最大OD450值,X代表適配體濃度。
選擇上述測序結(jié)果中重復(fù)出現(xiàn)頻次較高的核酸適配體W-32、W-33和W-34,根據(jù)其序列分別合成生物素標(biāo)記的單鏈核苷酸,用I-ELAA法測定3條適配體與HN蛋白的結(jié)合力。測定結(jié)果分別見表2、表3和表4,結(jié)果顯示3條適配體均能與HN蛋白進(jìn)行特異性結(jié)合。
表2 I-ELAA法測適配體W-32結(jié)合力OD450值
表3 I-ELAA法測適配體W-33結(jié)合力OD450值
表4 I-ELAA法測適配體W-34結(jié)合力OD450值
使用軟件Sigma Plot 10.0分析上述數(shù)據(jù)如圖8所示,根據(jù)公式Y(jié)=Bmax X/(Kd+X)計算適配體W-32、W-33和W-34的KD值分別為56.57±2.7nM、24.64±2.84nM和31.3±3.32nM,結(jié)果表明3條適配體的KD值均達(dá)到納摩爾級別,其中適配體W-33結(jié)合力略高于另外兩條適配體。
實施例5 適配體二級結(jié)構(gòu)預(yù)測
采用在線核酸結(jié)構(gòu)預(yù)測軟件MFOLD分析篩選出的三條核酸適配體的二級結(jié)構(gòu),軟件網(wǎng)址為:http://mfold.rit.albany.edu。
通過在線網(wǎng)站,預(yù)測適配體W-32、W-33和W-34的二級結(jié)構(gòu)結(jié)果分別見圖9、圖10、圖11。從圖9至圖11可見,3條核酸適配體均具有穩(wěn)定的頸環(huán)狀或發(fā)卡狀結(jié)構(gòu),在一定條件下能與靶標(biāo)分子HN蛋白形成穩(wěn)定的結(jié)合。
因此,本發(fā)明通過微孔板法不同輪次篩選獲得多條HN蛋白的核酸適配體候選物。選擇測序結(jié)果出現(xiàn)頻次較高的適配體,用I-ELAA法測定了其與HN蛋白的 結(jié)合力,三條適配體W-32、W-33和W-34的KD值分別為56.57±2.7nM、24.64±2.84nM和31.3±3.32nM,二級結(jié)構(gòu)預(yù)測顯示核酸適配體均具有穩(wěn)定的頸環(huán)狀或發(fā)卡狀結(jié)構(gòu),說明本次篩選的三條適配體均能與HN蛋白特異、穩(wěn)定的結(jié)合,可用于后續(xù)檢測BPIV3抗原或抗體的酶聯(lián)適配體法的建立。
本發(fā)明中涉及到的序列如下表5所示:
表5 序列表
本行業(yè)的技術(shù)人員應(yīng)該了解,本發(fā)明不受上述實施例的限制,上述實施例和說明書中描述的只是說明本發(fā)明的原理,在不脫離本發(fā)明精神和范圍的前提下,本發(fā)明還會有各種變化和改進(jìn),這些變化和改進(jìn)都落入要求保護(hù)的本發(fā)明范圍內(nèi)。本發(fā)明要求保護(hù)范圍由所附的權(quán)利要求書及其等效物界定。