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一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法

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一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法
【專利摘要】本發(fā)明公開(kāi)了一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,包括如下步驟:(1)用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻2~4次,洗滌干凈的螺旋藻經(jīng)壓力為200~400kg/cm2的高壓細(xì)胞勻漿機(jī)破碎5~6min,超聲波處理12?15min,將破碎的螺旋藻懸濁液于離心機(jī)中離心10~18min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于4~5℃下儲(chǔ)存;(2)雙水相萃取:向步驟(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀鈉,徹底攪拌1~2h,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相;(3)采用膜孔徑為3~5um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,制得雙水相萃取藻藍(lán)蛋白。本發(fā)明分離效果好,過(guò)濾分離回收率高,產(chǎn)品質(zhì)量高,運(yùn)行成本低。
【專利說(shuō)明】
一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法
技術(shù)領(lǐng)域
[0001 ]本領(lǐng)域涉及天然產(chǎn)物深加工技術(shù)領(lǐng)域,尤其是涉及一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水 相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法。
【背景技術(shù)】
[0002]藻藍(lán)蛋白是一種天然藍(lán)色色素,已作為食物色素添加在軟飲料,口香糖,唇膏,眼 線等產(chǎn)品中。高純度的藻藍(lán)蛋白因其具有高效的熒光性,被作為生物化學(xué)探針應(yīng)用在免疫 分析研究。藻藍(lán)蛋白具有抗氧化、增強(qiáng)機(jī)體免疫力、保肝護(hù)肝、抗癌、抗炎等諸多生理活性, 具有重大的潛在藥用開(kāi)發(fā)價(jià)值。藻藍(lán)蛋白主要從螺旋藻、魚(yú)腥藻等藻類中提取純化得來(lái),不 同純度(A620/A280)的藻藍(lán)蛋白有不同的用途。
[0003]葡聚糖dextran,glucan又稱右旋糖酐。為一種多糖。存在于某些微生物在生長(zhǎng)過(guò) 程中分泌的粘液中。葡聚糖具有較高的分子量,主要由D-葡萄吡喃糖以a,1-6鍵連接,支 鏈點(diǎn)有1 - 2、1 - 3、1 - 4連接的。隨著微生物種類和生長(zhǎng)條件的不同,其結(jié)構(gòu)也有差別。 八620/六280大于等于0.7時(shí),澡監(jiān)蛋白為食品級(jí);六620/六280大于等于3.9時(shí),澡監(jiān)蛋白為反應(yīng) 級(jí);A620/A280大于等于4.0時(shí),藻藍(lán)蛋白為分析級(jí)。藻藍(lán)蛋白具有十分廣闊的應(yīng)用前景,但 繁瑣的純化步驟不僅制約著它的大規(guī)模生產(chǎn)也導(dǎo)致其價(jià)格昂貴。食品級(jí)藻藍(lán)蛋白的價(jià)格約 為0.13美元/mg,分析級(jí)的藻藍(lán)蛋白價(jià)格為1-5美元/mg。
[0004] 葡聚糖是以葡萄糖為組成糖的多糖的總稱。由于D-葡萄糖殘基彼此間結(jié)合樣式的 不同而分為多種,廣泛分布于微生物、植物、動(dòng)物界。其中代表性的有細(xì)菌的多縮葡萄糖(由 a_l,6鍵的主鏈上支出以a-1,4和a-1,6鍵的側(cè)鏈),褐藻類的海帶多糖(lami-narin)(主要 以0-1,3鍵),地衣類的木聚糖⑴-1,4和0-1,3鍵),高等植物的纖維素、(0-1,4結(jié)合),直鏈淀 粉(a-1,4鍵),支鏈淀粉(由a-1,4鍵的主鏈上支出a-1,6鍵的側(cè)鏈),動(dòng)物的糖原等。藻藍(lán)蛋 白是從藻類中分離出的一種深藍(lán)色物質(zhì).它既是一種蛋白質(zhì),又是一種極好的天然食用色 素,同時(shí)還是良好的保健食品,具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和醫(yī)療價(jià)值。傳統(tǒng)的從藍(lán)藻中提取分離 藻藍(lán)蛋白的方法多采用鹽析沉淀法,包括沉淀、離心和透析3個(gè)主要操作環(huán)節(jié),這在實(shí)際工 業(yè)化生產(chǎn)中存在操作步驟繁瑣、動(dòng)力能耗高及操作周期長(zhǎng)等缺點(diǎn)。Albertsson于20世紀(jì)50 年代后期開(kāi)發(fā)了雙水相萃取法。70年代以后,雙水相萃取技術(shù)在生物分離過(guò)程中得到廣泛 應(yīng)用,為蛋白質(zhì)特別是胞內(nèi)蛋白質(zhì)的分離與純化開(kāi)辟了新的途徑,具有良好的發(fā)展前景。
[0005] 目前,缺乏一種分離效果好,過(guò)濾分離回收率高的葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃 取分離藻藍(lán)蛋白的方法。

【發(fā)明內(nèi)容】

[0006] 為解決上述問(wèn)題,本發(fā)明的目的是提供一種分離效果好,過(guò)濾分離回收率高的葡 聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法。
[0007] 為實(shí)現(xiàn)上述技術(shù)目的,本發(fā)明采用的技術(shù)方案如下:本發(fā)明的一種葡聚糖和酒石 酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,包括如下步驟:
[0008] (1)制備藻藍(lán)蛋白粗提取液:用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻2~4次,洗滌干凈的螺旋 藻經(jīng)壓力為200~400kg/cm2的高壓細(xì)胞勻漿機(jī)破碎5~6min,超聲波處理12-15min,將破碎 的螺旋藻懸濁液于離心機(jī)中離心1 〇~18min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于 4~5 °C下儲(chǔ)存;
[0009] (2)雙水相萃取:向步驟(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀 鈉,徹底攪拌1~2h,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相;
[0010] (3)采用膜孔徑為3~5um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,處理時(shí)間為20~ 26小時(shí),再于-13~-8°C冷凍干燥8~15小時(shí),制得雙水相萃取藻藍(lán)蛋白。
[0011] 進(jìn)一步地,在步驟(1)中,所述離心速率為800~1000r/min。
[0012]進(jìn)一步地,在步驟⑵中,所述葡聚糖質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的9~13%。
[0013] 更進(jìn)一步地,在步驟(2)中,所述酒石酸鉀鈉為雙水相體系總質(zhì)量的16~25%。
[0014] 進(jìn)一步地,在步驟(2)中,含藻藍(lán)蛋白的粗提液的質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的65~ 70% 〇
[0015] 進(jìn)一步地,在步驟(3)中,所述濾膜的流速為150mL/min,滲透通量為58.5L/(h ? m2)〇
[0016] 有益效果:本發(fā)明分離效果好,過(guò)濾分離回收率高,產(chǎn)品質(zhì)量高,運(yùn)行成本低;過(guò)程 無(wú)需添加化學(xué)藥品、溶媒溶劑,不帶入二次污染物質(zhì);設(shè)備可自動(dòng)運(yùn)行,穩(wěn)定性好,容易實(shí)現(xiàn) 工業(yè)化需求。
[0017] 與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明具有如下優(yōu)點(diǎn):
[0018] (1)本發(fā)明的雙水相萃取與其他分離方法相比,具有易放大、操作時(shí)間短、成相物 質(zhì)對(duì)待分離的生物活性物質(zhì)無(wú)毒負(fù)作用等優(yōu)點(diǎn)。在雙水相體系中,待分離的組分選擇性分 配于其中一相,而其他雜質(zhì)組分分配于另一相中,因此使待分離組分的濃度和純度都得到 提高。其中影響雙水相萃取的因素很多,主要有:聚合物種類、聚合物平均分子質(zhì)量和濃度、 成相無(wú)機(jī)鹽種類和濃度、離子強(qiáng)度、pH值等等。
[0019] (2)本發(fā)明的雙水相體系用于萃取螺旋藻細(xì)胞破碎液中藻藍(lán)蛋白,經(jīng)一次萃取藻 藍(lán)蛋白收率可達(dá)90.6%,分配系數(shù)達(dá)到8.03,分離因數(shù)達(dá)到6.5。結(jié)果證實(shí)螺旋藻藻藍(lán)蛋白 在該體系中的分配系數(shù)和分離因數(shù)均較高。
[0020] (3)超/微濾膜過(guò)濾與傳統(tǒng)過(guò)濾的不同在于不同分子質(zhì)量的化合物可通過(guò)膜進(jìn)行 有效分離,這個(gè)過(guò)程是一種物理過(guò)程,不發(fā)生相的變化,不需要添加助劑。
【附圖說(shuō)明】
[0021 ]圖1為破壁后螺旋藻溶液的紫外-可見(jiàn)吸收?qǐng)D;
[0022] 圖2為酒石酸鉀鈉飽和度對(duì)藻藍(lán)蛋白純度的影響圖;
[0023] 圖3為pH值對(duì)雙水相體系及藻藍(lán)蛋白萃取的影響圖。
【具體實(shí)施方式】
[0024]以下通過(guò)實(shí)施例和說(shuō)明書(shū)附圖進(jìn)一步說(shuō)明本發(fā)明。應(yīng)該理解的是,這些實(shí)施例是 本發(fā)明的闡釋和舉例,并不以任何形式限制本發(fā)明的范圍。
[0025] 實(shí)施例1
[0026] 本發(fā)明的一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,包括如下步 驟:
[0027] (1)制備藻藍(lán)蛋白粗提取液:用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻2次,洗滌干凈的螺旋藻 經(jīng)壓力為200kg/cm 2的高壓細(xì)胞勾衆(zhòng)機(jī)破碎5min,超聲波處理15min,將破碎的螺旋藻懸池 液于離心機(jī)中離心15min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于4°C下儲(chǔ)存;所述攪 摔轉(zhuǎn)速為800r/min。
[0028] (2)雙水相萃?。合虿襟E(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀 鈉,徹底攪拌lh,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相;所述葡聚糖質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的 9%。酒石酸鉀鈉為雙水相體系總質(zhì)量的16%。含藻藍(lán)蛋白的粗提液的質(zhì)量為雙水相體系總 質(zhì)量的68%。
[0029] (3)采用膜孔徑為3um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,處理時(shí)間為20小時(shí), 再于-13°C冷凍干燥8小時(shí)得藻藍(lán)蛋白粉末。所述濾膜的流速為150mL/min,滲透通量為 58.5L/(h ? m2)〇
[0030]如圖1所示,圖1為破壁后螺旋藻溶液的紫外-可見(jiàn)吸收?qǐng)D,藻藍(lán)蛋白溶液在280nm 和620nm處有最大吸收波長(zhǎng),螺旋藻蛋白在280nm處有最大吸收峰,藻藍(lán)蛋白在620nm處有最 大吸收峰,凍融破壁后螺旋藻溶液中藻藍(lán)蛋白純度為0.4,其中螺旋藻雜蛋白含量較多。 [0031] 實(shí)施例2
[0032]實(shí)施例2與實(shí)施例1的區(qū)別在于:本發(fā)明的一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分 離藻藍(lán)蛋白的方法,包括如下步驟:
[0033] (1)制備藻藍(lán)蛋白粗提取液:用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻3次,洗滌干凈的螺旋藻 經(jīng)壓力為300kg/cm 2的高壓細(xì)胞勻漿機(jī)破碎5.5min,超聲波處理12min,將破碎的螺旋藻懸 濁液于離心機(jī)中離心10min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于5°C下儲(chǔ)存;所述 攪拌轉(zhuǎn)速為900r/min。
[0034] (2)雙水相萃?。合虿襟E(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀 鈉,徹底攪拌2h,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相;所述葡聚糖質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的 10%。酒石酸鉀鈉為雙水相體系總質(zhì)量的21 %。含藻藍(lán)蛋白的粗提液的質(zhì)量為雙水相體系 總質(zhì)量的70 %。
[0035] (3)采用膜孔徑為4um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,處理時(shí)間為24小時(shí), 再于-8°C冷凍干燥15小時(shí)得藻藍(lán)蛋白粉末。所述濾膜的流速為150mL/min,滲透通量為 58.5L/(h ? m2)〇
[0036] 實(shí)施例3
[0037] 實(shí)施例3與實(shí)施例1的區(qū)別在于:本發(fā)明的一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分 離藻藍(lán)蛋白的方法,包括如下步驟:
[0038] (1)制備藻藍(lán)蛋白粗提取液:用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻4次,洗滌干凈的螺旋藻 經(jīng)壓力為400kg/cm 2的高壓細(xì)胞勾衆(zhòng)機(jī)破碎6min,超聲波處理14min,將破碎的螺旋藻懸池 液于離心機(jī)中離心18min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于4.5°C下儲(chǔ)存;所述 攪拌轉(zhuǎn)速為l〇〇〇r/min。
[0039] (2)雙水相萃?。合虿襟E(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀 鈉,徹底攪拌1.5h,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相;所述葡聚糖質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量 的13%。酒石酸鉀鈉為雙水相體系總質(zhì)量的25%。含藻藍(lán)蛋白的粗提液的質(zhì)量為雙水相體 系總質(zhì)量的65 %。
[0040] (3)采用膜孔徑為5um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,處理時(shí)間為26小時(shí), 再于-10°c冷凍干燥12小時(shí)得藻藍(lán)蛋白粉末。所述濾膜的流速為150mL/min,滲透通量為 58.5L/(h ? m2)〇
[0041] 試驗(yàn) 1
[0042] 酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)C 一 PC分配影響
[0043] 酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)C 一 PC分配影響如表1所示,
[0044] 表 1
[0047]由表1所示,當(dāng)葡聚糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)一定時(shí),酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)為16%,pH值為 6.2,室溫條件下,當(dāng)酒石酸鉀鈉低于某一用量時(shí)不能形成雙水相體系,隨著酒石酸鉀鈉質(zhì) 量分?jǐn)?shù)增加,相比值逐漸減小,分配系數(shù)、純度和回收率逐漸增大。當(dāng)酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù) 為21 %時(shí),C一 PC的分配系數(shù)、純度和收率最高,然后逐漸減小。造成這種現(xiàn)象的原因可能 是,酒石酸鉀鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)增加,下相的鹽析作用增加,使C 一 PC由下相向上相迀移。但酒石 酸鉀鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)過(guò)高時(shí),下相鹽析作用過(guò)強(qiáng),破壞C-PC表面的水化層,C-PC被部分或全 部析出。再者,在葡聚糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)不變的情況下,隨著酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)在一定范圍內(nèi)的 提高,雙水相體系逐漸遠(yuǎn)離臨界點(diǎn),物質(zhì)在兩相中界面張力增大,有利于藻藍(lán)蛋白在上相富 集,多糖在下相富集;當(dāng)酒石酸鉀鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)更大時(shí),上相體積逐漸減小,上相體積逐漸減 小,同時(shí)粘度逐漸增大,不利于藻藍(lán)蛋白的在上相的富集。C 一 PC的迀移能力受到限制,不利 于C-PC的富集。
[0048] 如圖2所示,10 %~30 %酒石酸鉀鈉析得到的藻藍(lán)蛋白純度較低,30 %~45 %酒石 酸鉀鈉析出藻藍(lán)蛋白,藻藍(lán)蛋白純度逐漸增加,大于45%飽和度酒石酸鉀鈉鹽析藻藍(lán)蛋白 純度變化不大。確定:10 %~30 %之間的酒石酸鉀鈉飽和度可以用來(lái)除去大量螺旋藻雜蛋 白,大于40%飽和度的酒石酸鉀鈉用于沉淀藻藍(lán)蛋白和藻藍(lán)蛋白的富集純化。
[0049] 試驗(yàn) 2
[0050] 葡聚糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)藻藍(lán)蛋白萃取的影響
[0051] 表 2
[0053] 從表2可以看出,葡聚糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的變化對(duì)藻藍(lán)蛋白萃取率和純度均有影響。當(dāng)葡 聚糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為11%時(shí),藻藍(lán)蛋白萃取率達(dá)到了 94.3%,純度達(dá)到了 0.77。
[0054] 由試驗(yàn)2可知,葡聚糖與酒石酸鉀鈉形成的雙水相體系中,上相為葡聚糖相,下相 為酒石酸鉀鈉鹽相。當(dāng)葡聚糖的濃度大于其成相臨界點(diǎn)的濃度時(shí),系統(tǒng)遠(yuǎn)離臨界點(diǎn),系線長(zhǎng) 度增大,兩相性質(zhì)的差別也增大,同時(shí)蛋白質(zhì)在兩相中的界面張力差別增大,使其趨于向一 側(cè)分配。在葡聚糖-酒石酸鉀鈉雙水相體系中,酒石酸鉀鈉濃度的增高會(huì)使下相鹽析作用加 強(qiáng),下相中的藻藍(lán)蛋白向上相轉(zhuǎn)移,并富集于上相。當(dāng)富集到上相的藻藍(lán)蛋白濃度超過(guò)其溶 解度時(shí),藻藍(lán)蛋白就會(huì)被析出而分布在上下相之間,造成萃取率下降。同時(shí),當(dāng)葡聚糖相對(duì) 分子質(zhì)量較大時(shí),由于其極強(qiáng)的吸水能力,會(huì)導(dǎo)致下相酒石酸鉀鈉濃度增大,上相自由水含 量降低,也會(huì)造成部分蛋白質(zhì)在上下相之間析出。當(dāng)葡聚糖的相對(duì)分子質(zhì)量為4000u-6000u 時(shí),下相中沒(méi)有檢測(cè)到藻藍(lán)蛋白,但上下相之間有藻藍(lán)蛋白析出。選擇適宜的葡聚糖相對(duì)分 子質(zhì)量及酒石酸鉀鈉濃度對(duì)于提高藻藍(lán)蛋白的萃取率非常重要。
[0055] 試驗(yàn) 3
[0056] 離子強(qiáng)度對(duì)雙水相體系及藻藍(lán)蛋白萃取的影響
[0057]雙水相體系上下相間存在電位差,通過(guò)加入不同種類和濃度的鹽可以使得體系的 電荷狀態(tài)和疏水作用發(fā)生改變,進(jìn)而對(duì)物質(zhì)在兩相中的分配產(chǎn)生顯著影響。配置葡聚糖質(zhì) 量分?jǐn)?shù)為11%,酒石酸鉀鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為21%的體系,并考察分別添加不同濃度的NaCl情 況下對(duì)藻藍(lán)蛋白萃取的影響如表2所示,
[0058]表3
[0060]由表3可知,隨著NaCl濃度的升高,上相中藻藍(lán)蛋白純度與分離回收率都先升高后 降低。當(dāng)葡聚糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%,酒石酸鉀鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為16%時(shí),與未添加NaCl的體系 相比,添加質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.0%的NaCl情況下,上相中藻藍(lán)蛋白純度與分離回收率都較高。 [0061 ]試驗(yàn) 4
[0062] pH值對(duì)雙水相體系及藻藍(lán)蛋白萃取的影響
[0063] 雙水相體系pH值變化能改變兩相的點(diǎn)位,并影響蛋白質(zhì)帶點(diǎn)性質(zhì),從而影響藻藍(lán) 蛋白在兩相中的分配。配制酒石酸鉀鈉的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為18%,葡聚糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為12%的雙 水相體系,體系pH為5.8~6.3。由于藻藍(lán)蛋白較穩(wěn)定的pH范圍為4.5~8.5,因此調(diào)節(jié)體系pH 分別為4.0,5.0,6.0,7.0和8.0 值對(duì)雙水相體系及藻藍(lán)蛋白萃取的影響如圖3所示,隨著 雙水相體系pH的升高,上相中藻藍(lán)蛋白的純度與分離回收率都呈降低趨勢(shì)。而體系原始的 pH約為6.2。
[0064]以上顯示和描述了本發(fā)明的基本原理、主要特征和本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)。本行業(yè)的技術(shù) 人員應(yīng)該了解,本發(fā)明不受上述實(shí)施例的限制,上述實(shí)施例和說(shuō)明書(shū)中描述的只是說(shuō)明本 發(fā)明的原理,在不脫離本發(fā)明精神和范圍的前提下,本發(fā)明還會(huì)有各種變化和改進(jìn),本發(fā)明 要求保護(hù)范圍由所附的權(quán)利要求書(shū)、說(shuō)明書(shū)及其等效物界定。
【主權(quán)項(xiàng)】
1. 一種葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征在于包括如下步 驟: (1) 制備藻藍(lán)蛋白粗提取液:用蒸餾水清洗新鮮的螺旋藻2~4次,洗滌干凈的螺旋藻經(jīng) 壓力為200~400kg/cm2的高壓細(xì)胞勻漿機(jī)破碎5~6min,超聲波處理12-15min,將破碎的螺 旋藻懸濁液于離心機(jī)中離心10~18min,離心收集上清液,制得含藻藍(lán)蛋白的粗提液于4~5 °(:下儲(chǔ)存; (2) 雙水相萃?。合虿襟E(1)所得含藻藍(lán)蛋白的粗提液中加入葡聚糖和酒石酸鉀鈉,徹 底攪拌1~2h,靜置過(guò)夜使兩相分開(kāi),收集上相; (3) 采用膜孔徑為3~5um的濾膜對(duì)藻藍(lán)蛋白粗提液進(jìn)行粗過(guò)濾,處理時(shí)間為20~26小 時(shí),再于-13~_8°C冷凍干燥8~15小時(shí),制得雙水相萃取藻藍(lán)蛋白。2. 根據(jù)權(quán)利要求1所述葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征 在于:在步驟(1)中,所述離心速率為800~1000r/min。3. 根據(jù)權(quán)利要求1所述葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征 在于:在步驟(2)中,所述葡聚糖質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的9~13%。4. 根據(jù)權(quán)利要求1所述葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征 在于:在步驟(2)中,所述酒石酸鉀鈉為雙水相體系總質(zhì)量的17~25%。5. 根據(jù)權(quán)利要求1所述葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征 在于:在步驟(2)中,含藻藍(lán)蛋白的粗提液的質(zhì)量為雙水相體系總質(zhì)量的65~70%。6. 根據(jù)權(quán)利要求1所述葡聚糖和酒石酸鉀鈉雙水相萃取分離藻藍(lán)蛋白的方法,其特征 在于:在步驟(3)中,所述濾膜的流速為150mL/min,滲透通量為58.5L/(h · m2)。
【文檔編號(hào)】C07K1/14GK105820237SQ201610239713
【公開(kāi)日】2016年8月3日
【申請(qǐng)日】2016年4月18日
【發(fā)明人】高志剛, 汪世軍, 王峰
【申請(qǐng)人】東臺(tái)市賜百年生物工程有限公司
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