本發(fā)明涉及利用生物敏感標(biāo)志物檢測(cè)水體污染，更具體地說，本發(fā)明涉及一種利用魚的過氧化氫酶(CAT)活性檢測(cè)水體污染程度的方法。
背景技術(shù)：
隨著城鎮(zhèn)化和工農(nóng)業(yè)的迅猛發(fā)展，水體污染日益加劇。水域中的水體污染物也各有不同，有的為單一污染物，也有多種污染物混合污染。對(duì)于未知水域中，不管是單一污染物的污染，還是多種污染物的污染，怎樣獲悉水體是否被污染，甚至知道其污染程度，并能直觀判斷該水域的污染對(duì)生物的危害已達(dá)到何種程度。對(duì)于水體中受到重金屬或菲一種或兩種污染時(shí)，用化學(xué)方法可以定性、定量檢測(cè)到污染，但是無法檢測(cè)其危害性和危害程度以及污染程度的準(zhǔn)確性。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素：
本發(fā)明的一個(gè)目的是解決至少上述問題和/或缺陷，并提供至少后面將說明的優(yōu)點(diǎn)。
本發(fā)明還有一個(gè)目的就是提供一種利用魚的過氧化氫酶活性檢測(cè)水體污染程度的方法，本方法利用魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，可敏感地監(jiān)測(cè)鎘等重金屬污染的污染程度和危害程度，還可以敏感檢測(cè)菲(Phe)等多環(huán)芳烴污染的污染程度和危害程度，為水體生態(tài)環(huán)境監(jiān)測(cè)、毒理診斷、調(diào)控和防治提供準(zhǔn)確、快速的科學(xué)方法。
為了實(shí)現(xiàn)根據(jù)本發(fā)明的這些目的和其他優(yōu)點(diǎn)，提供了一種利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法。本檢測(cè)方法為獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物。其中，CAT是過氧化氫酶的簡(jiǎn)寫。
優(yōu)選的是，所述魚的CAT活性與水體中重金屬鎘的濃度呈負(fù)相關(guān)。
優(yōu)選的是，所述魚的CAT活性與水體中菲的濃度呈負(fù)相關(guān)。
優(yōu)選的是，所述魚的CAT活性與水體中多氯聯(lián)苯的濃度呈負(fù)相關(guān)。
優(yōu)選的是，建立魚的CAT活性與污染物濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，然后將待檢測(cè)水域中的同種同大小的魚的CAT活性與所述標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，得到待檢測(cè)水域中水體污染物濃度。
優(yōu)選的是，所述標(biāo)準(zhǔn)曲線為魚的CAT活性與重金屬鎘濃度關(guān)系的曲線，或者魚的CAT活性與菲濃度關(guān)系的曲線，或者魚的CAT活性與多氯聯(lián)苯濃度關(guān)系的曲線。
優(yōu)選的是，所述魚的CAT活性測(cè)定包括如下步驟：
步驟一、待測(cè)樣本處理：制備全魚勻漿，然后離心分層，取上層清液為待測(cè)樣本；
步驟二、待測(cè)樣本蛋白濃度的測(cè)定：分別將等量的雙蒸水、蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣本加入1、2、3號(hào)管中，并分別向各管加入等量的考馬斯亮藍(lán)顯色劑，分別混勻，靜置，預(yù)熱，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于1cm光徑，在波長(zhǎng)595nm處，測(cè)定1、2、3號(hào)管中物質(zhì)的光密度(OD)，分別記為1號(hào)OD值，2號(hào)OD值，3號(hào)OD值，然后代入如下公式計(jì)算得待測(cè)樣本蛋白濃度：
步驟三、在對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑一和試劑二，然后在所述測(cè)定管中加入待測(cè)樣本，混勻反應(yīng)50-70秒；
步驟四、在所述對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑三和試劑四，然后在所述對(duì)照管中加入待測(cè)樣本，混勻，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于0.5cm光徑，405nm波長(zhǎng)處分別測(cè)所述對(duì)照管和測(cè)定管的OD，分別記為對(duì)照OD值，測(cè)定OD值，其中取樣量為加入對(duì)照管或測(cè)定管的待測(cè)樣本的量，然后代入如下公式計(jì)算得魚的過氧化氫酶活性：
優(yōu)選的是，所述步驟一中全魚勻漿為全魚與濃度0.65％的魚用生理鹽水按質(zhì)量比為1:9配置，且所述離心分層用冷凍離心機(jī)，11028g，4℃，離心10min。
優(yōu)選的是，所述步驟二中等量的雙蒸水、蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣本均為0.05ml，蛋白標(biāo)準(zhǔn)品的濃度為0.563g/L，分別加入考馬斯亮藍(lán)顯色劑的量均為3ml，靜置10min；所述步驟三中在對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的試劑一1ml和試劑二0.1ml，然后在所述測(cè)定管中加入濃度為1％的待測(cè)樣本0.05ml，反應(yīng)溫度為37℃；所述步驟四中在所述對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的試劑三1ml和試劑四0.1ml，然后在所述對(duì)照管中加入濃度為1％的待測(cè)樣本0.05ml。
優(yōu)選的是，所述魚為海水青鳉或淡水青鳉。
本發(fā)明至少包括以下有益效果：本發(fā)明以水域中魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，通過對(duì)比CAT活性就可以檢測(cè)出水體是否受到污染，不但檢測(cè)準(zhǔn)確和敏感，而且直觀反映該水域的污染對(duì)生物的危害程度。特別是魚的CAT活性與水體中重金屬鎘、菲或多氯聯(lián)苯的一種或一種以上的濃度均呈負(fù)相關(guān)，所以檢測(cè)到魚的CAT活性越低，其的水域受污染的程度越大，并且明示受到重金屬鎘、菲或多氯聯(lián)苯的一種或一種以上的污染。通過建立魚的CAT活性與重金屬鎘濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線，魚的CAT活性與菲濃度關(guān)系的曲線，或者魚的CAT活性與多氯聯(lián)苯濃度關(guān)系的曲線，可以將待檢測(cè)水域中與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線同種同大小的魚的CAT活性比對(duì)，獲得水域中重金屬鎘濃度、菲或多氯聯(lián)苯濃度或綜合污染濃度值，并且能反映出目前的污染程度對(duì)生物是否在安全范圍或受到危害。
具體實(shí)施方式
下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步的詳細(xì)說明，以令本領(lǐng)域技術(shù)人員參照說明書能夠據(jù)以實(shí)施。
實(shí)施例1
本方案利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法，獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，通過檢測(cè)魚的CAT活性，然后比對(duì)同類同大小的魚的CAT活性與某污染物濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，就可以檢測(cè)出水體是否受到某污染物的污染，不但檢測(cè)準(zhǔn)確，且敏感度高，而且能直觀反映該水域的某污染物的污染程度及其對(duì)生物的危害程度。
實(shí)施例2
本方案利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法，獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，根據(jù)魚的CAT活性與水體中重金屬鎘的濃度呈負(fù)相關(guān)，通過測(cè)定魚的CAT活性，然后比對(duì)同類同大小的魚的CAT活性與鎘濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，如果檢測(cè)樣本魚的CAT活性比正常情況下的同類同大小的魚的CAT活性低，則判斷水域受到鎘的污染；CAT活性越低，則判斷水域的鎘污染越嚴(yán)重，甚至可判斷是否達(dá)到危害水體生物的程度。
實(shí)施例3
本方案利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法，獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，根據(jù)魚的CAT活性與水體中菲(Phe)等多環(huán)芳烴的濃度呈負(fù)相關(guān)，通過測(cè)定魚的CAT活性，然后比對(duì)同類同大小的魚的CAT活性與菲關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，如果檢測(cè)樣本魚的CAT活性比正常情況下的同類同大小的魚的CAT活性低，則判斷水域受到菲的污染；魚的CAT活性越低，則判斷水域的菲污染越嚴(yán)重，甚至可判斷是否達(dá)到危害水體生物的程度。
實(shí)施例4
本方案利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法，獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物，根據(jù)魚的CAT活性與水體中多氯聯(lián)苯的濃度呈負(fù)相關(guān)，通過測(cè)定魚的CAT活性，然后比對(duì)與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線的魚同類同大小的魚的CAT活性與多氯聯(lián)苯濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，如果檢測(cè)樣本魚的CAT活性比正常情況下的同類同大小的魚的CAT活性低，則判斷水域受到多氯聯(lián)苯的污染；魚的CAT活性越低，則判斷水域的多氯聯(lián)苯污染越嚴(yán)重，甚至可判斷是否達(dá)到危害水體生物的程度。
實(shí)施例5
本方案利用魚的CAT活性檢測(cè)水體污染程度的方法，獲取需要檢測(cè)的水域中的魚，并采用所述魚的CAT作為敏感生物標(biāo)記物。首先通過實(shí)驗(yàn)建立魚的CAT活性與某污染物濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線，然后將待檢測(cè)水域中的同種同大小的魚的CAT活性與所述標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，得到待檢測(cè)水域中某污染物的濃度。
通過實(shí)驗(yàn)建立魚的CAT活性與重金屬鎘濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線如下：
本實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)樣本以海水青鳉為例，分十組，每組3個(gè)平行進(jìn)行養(yǎng)魚實(shí)驗(yàn)，實(shí)驗(yàn)結(jié)束每個(gè)平行取3尾魚樣品測(cè)定，每組測(cè)定3x3＝9個(gè)數(shù)據(jù)，將每組9個(gè)數(shù)據(jù)數(shù)理統(tǒng)計(jì)后得到每組魚的CAT活性大小。各組鎘濃度分別為0，80，160，240，320，400，480，560，640，720μg/L，養(yǎng)殖條件是鹽度30±2，水溫為28±2℃，pH為8.10，溶氧量≥6.10mg/L，光暗比為14h:10h，各組實(shí)驗(yàn)操作均相同。每天投喂飼料三次，總投喂量為投喂時(shí)魚體濕重的5％。每天仔細(xì)觀察和記錄仔稚魚活動(dòng)、攝食、畸形、死亡等，并跟蹤檢測(cè)水體和魚體鎘的變化，7天后隨機(jī)采集魚樣品，分別稱魚濕體重，存于-80℃冰箱中(因忙未能即測(cè))用于分子、基因、生理、毒理和生化測(cè)定。測(cè)定并經(jīng)數(shù)理統(tǒng)計(jì)的的各組CAT活性分別是：21.64、19.18、18.13、17.02、14.45、12.13、10.02、7.71、6.21、5.13U/mgprot。海水青鳉的CAT活性與水體中重金屬鎘的濃度呈負(fù)相關(guān)，然后根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
通過實(shí)驗(yàn)建立魚的CAT活性與菲(Phe)濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線如下：
本實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)樣本以海水青鳉為例，分五組，每組3個(gè)平行進(jìn)行養(yǎng)魚實(shí)驗(yàn)，實(shí)驗(yàn)結(jié)束每個(gè)平行取3尾魚樣品測(cè)定，每組測(cè)定3x3＝9個(gè)數(shù)據(jù)，將每組9個(gè)數(shù)據(jù)數(shù)理統(tǒng)計(jì)后得到每組魚的CAT活性大小。各組菲濃度分別為0、250、500、750、1000μg/L，養(yǎng)殖條件是鹽度30±2，水溫為28±2℃，pH為8.10，溶氧量≥6.10mg/L，光暗比為14h:10h，各組實(shí)驗(yàn)操作均相同。每天三次投喂飼料，總投喂量為投喂時(shí)魚體濕重的5％。每天仔細(xì)觀察和記錄仔稚魚活動(dòng)、攝食、畸形、死亡等，并跟蹤檢測(cè)水體和魚體菲的變化，7天后隨機(jī)采集魚樣品，分別稱魚濕體重，存于-80℃冰箱中(便于長(zhǎng)期有效保存)用于分子、基因、生理、毒理和生化測(cè)定。測(cè)定并經(jīng)數(shù)理統(tǒng)計(jì)的各組CAT活性分別是：12.710、10.393、8.714、7.106、5.213U/mgprot。海水青鳉的CAT活性與水體中菲(Phe)的濃度呈負(fù)相關(guān)，然后根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
通過實(shí)驗(yàn)建立魚的CAT與多氯聯(lián)苯(PCB)濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線如下：
本實(shí)驗(yàn)的檢測(cè)樣本以海水青鳉為例，分六組，每組3個(gè)平行進(jìn)行養(yǎng)魚實(shí)驗(yàn)，實(shí)驗(yàn)結(jié)束每個(gè)平行取3尾魚樣品測(cè)定，每組測(cè)定3x3＝9個(gè)數(shù)據(jù)，將每組9個(gè)數(shù)據(jù)數(shù)理統(tǒng)計(jì)后得到每組魚的CAT活性大小。各組多氯聯(lián)苯濃度分別為0、50、100、150、200、250μg/L，養(yǎng)殖條件是鹽度30±2，水溫為28±2℃，pH為8.10，溶氧量≥6.10mg/L，光暗比為14h:10h，各組實(shí)驗(yàn)操作均相同。每天三次投喂飼料，總投喂量為投喂時(shí)魚體濕重的5％。每天仔細(xì)觀察和記錄仔稚魚活動(dòng)、攝食、畸形、死亡等，并跟蹤檢測(cè)水體和魚體多氯聯(lián)苯的變化，7天后隨機(jī)采集魚樣品，分別稱魚濕體重，存于-80℃冰箱中(便于有效保存)用于分子、基因、生理、毒理和生化測(cè)定。測(cè)定并經(jīng)數(shù)理統(tǒng)計(jì)的各組CAT活性分別是：1.150、0.859、0.759、0.668、0.587、0.579U/mgprot。海水青鳉的CAT與水體中多氯聯(lián)苯(PCB)的濃度呈負(fù)相關(guān)，然后根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
測(cè)定待測(cè)水域中的海水青鳉的CAT活性的具體步驟如下：
步驟一、待測(cè)樣本處理：制備全魚勻漿，然后離心分層，取上層清液為待測(cè)樣本；
步驟二、待測(cè)樣本蛋白濃度的測(cè)定：分別將等量的雙蒸水、蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣本加入1、2、3號(hào)管中，并分別向各管加入等量的考馬斯亮藍(lán)顯色劑，分別混勻，靜置，預(yù)熱，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于1cm光徑，在波長(zhǎng)595nm處，測(cè)定1、2、3號(hào)管中物質(zhì)的光密度(OD)，分別記為1號(hào)OD值，2號(hào)OD值，3號(hào)OD值，然后代入如下公式計(jì)算得待測(cè)樣本蛋白濃度：
步驟三、在對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑一和試劑二，然后在所述測(cè)定管中加入待測(cè)樣本，混勻反應(yīng)50秒；
步驟四、在所述對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑三和試劑四，然后在所述對(duì)照管中加入待測(cè)樣本，混勻，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于0.5cm光徑，405nm波長(zhǎng)處分別測(cè)所述對(duì)照管和測(cè)定管OD，分別記為對(duì)照OD值，測(cè)定OD值，其中取樣量為加入對(duì)照管或測(cè)定管的待測(cè)樣本的量，然后代入如下公式計(jì)算得魚的CAT活性：
然后將計(jì)算得海水青鳉的CAT活性大小與標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，不但可以知道水體是否受到污染，而且從標(biāo)準(zhǔn)曲線中可以知道水體中鎘濃度或菲濃度的大小或多氯聯(lián)苯濃度大小或綜合污染的大小，更能知道水體對(duì)生物體危害程度。
實(shí)施例6
利用實(shí)驗(yàn)可以建立任何水體任何魚種的魚的CAT活性與重金屬鎘濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線，或者建立不同種類的魚的CAT活性與菲濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，然后取待測(cè)水域中的魚做樣本，只要做樣本的魚與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線的魚是同類同大小的即可進(jìn)行比對(duì)。
測(cè)定待測(cè)水域中的魚的CAT活性具體步驟如下：
步驟一、待測(cè)樣本處理：取與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線用魚一樣和大小相當(dāng)?shù)聂~制備全魚勻漿，全魚勻漿為全魚與0.65％濃度的魚用生理鹽水按質(zhì)量比為1:9配置，然后用冷凍離心機(jī)，11028g，4℃，離心10min分層，取上層清液為待測(cè)樣本；
步驟二、待測(cè)樣本蛋白濃度的測(cè)定：分別將等量的雙蒸水、蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣本加入1、2、3號(hào)管中，并分別向各管加入等量的考馬斯亮藍(lán)顯色劑，分別混勻，靜置，預(yù)熱，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于1cm光徑，在波長(zhǎng)595nm處，測(cè)定1、2、3號(hào)管中物質(zhì)的OD，分別記為1號(hào)OD值，2號(hào)OD值，3號(hào)OD值，然后代入如下公式計(jì)算得待測(cè)樣本蛋白濃度：
步驟三、在對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑一和試劑二，然后在所述測(cè)定管中加入待測(cè)樣本，混勻反應(yīng)70秒；
步驟四、在所述對(duì)照管和測(cè)定管中各加入試劑盒的同樣量的試劑三和試劑四，然后在所述對(duì)照管中加入待測(cè)樣本，混勻，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于0.5cm光徑，405nm波長(zhǎng)處分別測(cè)所述對(duì)照管和測(cè)定管OD，分別記為對(duì)照OD值，測(cè)定OD值，其中取樣量為加入對(duì)照管或測(cè)定管的待測(cè)樣本的量，然后代入如下公式計(jì)算得魚的CAT活性，并且定義每毫克組織蛋白每秒鐘分解1umol的H2O2的量為一個(gè)活力單位，
將計(jì)算得魚的CAT活性大小與標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，不但可以知道水體是否受污染，而且從標(biāo)準(zhǔn)曲線中可以知道水體中鎘濃度或菲濃度或多氯聯(lián)苯(PCB)濃度的大小或綜合污染的大小，更能知道水體對(duì)生物體危害程度。
利用實(shí)驗(yàn)建立20日齡的淡水青鳉的CAT活性與重金屬鎘濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線,CAT活性與菲濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線，以及CAT活性與多氯聯(lián)苯濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線，然后取待測(cè)水域中的魚做樣本，只要取得樣本的魚與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線的魚是同類同大小的即可進(jìn)行比對(duì)。
取得待測(cè)水域中20日齡的淡水青鳉做樣本，然后測(cè)定待測(cè)水域中的該魚的CAT活性具體步驟如下：
步驟一、待測(cè)樣本處理：取與建立標(biāo)準(zhǔn)曲線用魚一樣和大小相當(dāng)?shù)聂~制備全魚勻漿，全魚勻漿為全魚與0.65％濃度的魚用生理鹽水按質(zhì)量比為1:9配置，然后用冷凍離心機(jī)，11028g，4℃，離心10min分層，取上層清液為待測(cè)樣本；
步驟二、步驟二、待測(cè)樣本蛋白濃度的測(cè)定：分別將雙蒸水、濃度為0.563g/L的蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和待測(cè)樣本各0.05ml加入1、2、3號(hào)管中，并分別向各管加入考馬斯亮藍(lán)顯色劑3ml，分別混勻，靜置10min，預(yù)熱到35℃，預(yù)熱待用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于1cm光徑，波長(zhǎng)595nm處，測(cè)定1、2、3號(hào)管中溶液的光密度(OD)，分別記為1號(hào)OD值，2號(hào)OD值，3號(hào)OD值，然后代入如下公式計(jì)算得待測(cè)樣本蛋白濃度：
步驟三、在對(duì)照管和測(cè)定管中各加入南京生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒的試劑一1ml和試劑二0.1ml，然后在所述測(cè)定管中加入濃度為1％的待測(cè)樣本0.05ml，37℃混勻反應(yīng)60秒；
步驟四、在所述對(duì)照管和測(cè)定管中各加入南京生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒的試劑三1ml和試劑四0.1ml，然后在所述對(duì)照管中加入濃度為1％的待測(cè)樣本0.05ml，用分光光度計(jì)并用雙蒸水調(diào)零后，于0.5cm光徑，405nm波長(zhǎng)處分別測(cè)所述對(duì)照管和測(cè)定管OD，分別記為對(duì)照OD值，測(cè)定OD值，其中取樣量為加入對(duì)照管或測(cè)定管的待測(cè)樣本的量，所用試劑盒為南京生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒，試劑盒中的各個(gè)試劑是固定配置好的，然后代入如下公式計(jì)算得魚的CAT活性，并且定義每毫克組織蛋白每秒鐘分解1umol的H2O2的量為一個(gè)活力單元，計(jì)算的魚的CAT活性為18.5U/mgprot，
將計(jì)算得魚的CAT活性大小，然后和CAT活性與重金屬鎘濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，CAT活性與菲濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線，以及CAT活性與多氯聯(lián)苯濃度關(guān)系的標(biāo)準(zhǔn)曲線分別比對(duì)，得到待測(cè)水域的鎘污染濃度為125μg/L，菲濃度為0μg/L，多氯聯(lián)苯濃度為0μg/L，這樣既可以知道水體已受到污染，而且從標(biāo)準(zhǔn)曲線中可以知道水體中鎘濃度、菲或多氯聯(lián)苯濃度的大小，更能知道水體對(duì)生物體危害程度。
盡管本發(fā)明的實(shí)施方案已公開如上，但其并不僅僅限于說明書和實(shí)施方式中所列應(yīng)用范例，它完全適用于各種適合本發(fā)明的領(lǐng)域，對(duì)于熟悉本領(lǐng)域的人員而言，可容易地另行修改他用，因此在不背離權(quán)利要求及等同范圍所限定的一般概念下，本發(fā)明并不限于特定的細(xì)節(jié)和這里示出與描述的實(shí)施例。