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與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記及其應(yīng)用的制作方法

文檔序號(hào):11380319閱讀:625來(lái)源:國(guó)知局
與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記及其應(yīng)用的制造方法與工藝

本發(fā)明涉及基因工程及分子生物學(xué)技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記及其應(yīng)用。



背景技術(shù):

聚合酶鏈反應(yīng)-單鏈構(gòu)象多態(tài)性分析(pcr-sscp)是先用pcr擴(kuò)增出目的基因dna,目的基因的dna序列經(jīng)變性作用,但兩條互補(bǔ)單鏈dna依然由堿基之間的作用力維持其二級(jí)結(jié)構(gòu),所以當(dāng)單個(gè)堿基發(fā)生突變時(shí),即使dna長(zhǎng)度相同也能其導(dǎo)致空間構(gòu)象改變,因而在中性聚丙烯酰胺電泳中因分子量、電荷、分子形狀等不同而引起電泳遷移率的改變,從而實(shí)現(xiàn)多態(tài)性的判斷。這種技術(shù)適用于直接進(jìn)行點(diǎn)突變的檢測(cè);具有靈敏度高、分析簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn),根據(jù)帶型即可進(jìn)行判型,適合大樣本的篩選。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明的目的是提供一種與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記及其應(yīng)用。

本發(fā)明提供與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記,其位于雞ocx-36基因上,具體核苷酸序列包括序列表中seqidno.1和seqidno.3;

在序列表seqidno.1(即引物擴(kuò)增的第五外顯子部分序列)的核苷酸序列中,第144bp處的堿基為a時(shí),與蛋雞高品質(zhì)蛋相關(guān),如果該堿基為g,則與蛋雞低品質(zhì)蛋相關(guān);

和/或

在序列表seqidno.3(即引物擴(kuò)增的第七外顯子部分序列)的核苷酸序列中,第169bp處的堿基為a,且第221bp處的堿基為g時(shí),與蛋雞高品質(zhì)蛋相關(guān);如果第169bp處的堿基為g,且第221bp處的堿基為a時(shí),則與蛋雞低品質(zhì)蛋相關(guān)。

作為優(yōu)選,所述序列表seqidno.1中,第144bp處的堿基為a時(shí),蛋雞蛋重、蛋白重、蛋黃重和蛋殼重較第144bp處的堿基為g時(shí)重。

作為優(yōu)選,所述序列表seqidno.3中,第169bp處的堿基為a,且第221bp處的堿基為g時(shí),雞蛋哈氏單位含量高且蛋白高度高。

本發(fā)明還提供用于檢測(cè)上述的與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記的引物對(duì),包括用于擴(kuò)增序列表中seqidno.1的引物對(duì)p5和用于擴(kuò)增序列表中seqidno.3的引物對(duì)p7;

所述p5為:f:gtgtggacagtgggggt;

r:gggcagatttcaggctt;

所述p7為:f:gagatgtgggtgctcggtg;

r:gtgatggggttggaggttg。

本發(fā)明還提供上述的與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記在鑒定蛋雞蛋品質(zhì)中的應(yīng)用,包括以下步驟:

(1)提取待測(cè)雞的基因組dna;

(2)以待測(cè)雞的基因組dna為模板,利用權(quán)利要求2中所述的引物對(duì)p5和p7,分別進(jìn)行pcr擴(kuò)增;

(3)檢測(cè)pcr擴(kuò)增產(chǎn)物,如果利用引物對(duì)p5擴(kuò)增的序列中,第144bp處的堿基為a;和/或利用引物對(duì)p7擴(kuò)增的序列中,第169bp處的堿基為a,第221bp處的堿基為g,則待測(cè)雞為蛋雞蛋品質(zhì)性狀優(yōu)的雞品種;如果利用引物對(duì)p5擴(kuò)增的序列中,第144bp處的堿基為g;且利用引物對(duì)p7擴(kuò)增的序列中,第169bp處的堿基為g,第221bp處的堿基為a,則待測(cè)雞為蛋雞蛋品質(zhì)性狀差的雞品種。

作為優(yōu)選,步驟(2)中pcr反應(yīng)使用的擴(kuò)增體系以20μl計(jì)為:10×pcrbuffer(mg2++plus)3μl,10mmol/ldntpmix1.5μl,5u/μltaqdnapolymerase0.25μl,模板dna1μl,上下游引物各1μl,ddh2o12.25μl。

作為優(yōu)選,步驟(2)中,pcr反應(yīng)使用的條件為:95℃預(yù)變性5min,95℃30s,退火30s,72℃30s,30個(gè)循環(huán),72℃10min,4℃保存。

作為優(yōu)選,步驟(3)中,所述檢測(cè)pcr擴(kuò)增產(chǎn)物采用sscp檢測(cè),同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照,凝膠電泳后染色,得到sscp電泳帶型圖,根據(jù)圖譜中條帶的類型和陽(yáng)性對(duì)照結(jié)果對(duì)待測(cè)樣本的蛋雞蛋品質(zhì)性狀進(jìn)行判斷。

步驟(3)中,也可以用其他方法來(lái)檢測(cè)pcr擴(kuò)增產(chǎn)物,比如直接進(jìn)行測(cè)序,并不限于本發(fā)明中所述方法。

本發(fā)明還提供含有上述引物對(duì)的用于檢測(cè)蛋雞蛋品質(zhì)的試劑盒。

本發(fā)明還提供與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記在雞分子標(biāo)記輔助育種中的應(yīng)用。

本發(fā)明利用pcr-sscp方法對(duì)海蘭褐蛋雞的蛋品質(zhì)性狀相關(guān)候選基因ocx36進(jìn)行多態(tài)性檢測(cè),探尋候選基因的等位基因及其基因型在蛋雞中的分布情況,并期望篩選出與蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的基因型作為遺傳標(biāo)記,為今后的標(biāo)記輔助選擇提供理論和技術(shù)上的參考。

附圖說明

附圖用來(lái)提供對(duì)本發(fā)明的進(jìn)一步理解,并且構(gòu)成說明書的一部分,與本發(fā)明的實(shí)施例一起用于解釋本發(fā)明,并不構(gòu)成對(duì)本發(fā)明的限制。在附圖中:

圖1為蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記的檢測(cè)過程示意圖;

圖2為基因組dna電泳圖;

圖3為ocx36第五外顯子pcr產(chǎn)物;

圖4為ocx36第七外顯子pcr產(chǎn)物;

圖5為ocx36第五外顯子引物sscp電泳圖;

圖6為ocx36第七外顯子引物sscp電泳圖;

圖7為ocx36第五外顯子引物部分測(cè)序結(jié)果;

圖8為ocx36第七外顯子引物部分測(cè)序結(jié)果;

圖9為ocx36第七外顯子引物部分測(cè)序結(jié)果。

具體實(shí)施方式

以下的實(shí)施例便于更好地理解本發(fā)明,但并不限定本發(fā)明。下述實(shí)施例中的實(shí)驗(yàn)方法,如無(wú)特殊說明,均為常規(guī)方法。下述實(shí)施例中所用的試驗(yàn)材料,如無(wú)特殊說明,均為市售。

實(shí)施例1

1材料與方法

1.1實(shí)驗(yàn)材料

1.1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

選取產(chǎn)蛋率90%左右、32周齡的父母代海蘭褐蛋雞,飼養(yǎng)于石河子大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院實(shí)驗(yàn)站,取236只作為實(shí)驗(yàn)動(dòng)物。單籠同舍飼養(yǎng),依籠編號(hào),且按照海蘭褐蛋雞飼養(yǎng)管理手冊(cè)進(jìn)行飼養(yǎng)管理。

1.1.2主要試劑

taqdna聚合酶、dntps、10×pcrbuffer(不含鎂離子)以及dnamarkerⅰ、瓊脂糖凝膠、dna回收試劑盒,pgem–teasy載體,均購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司,甲叉雙丙烯酰胺、丙烯酰胺、tris堿、過硫酸銨(aps)購(gòu)自上海生工公司。

氯化鈉、十二烷基磺酸鈉(sds)、乙二胺四乙酸二鈉、氯仿、異戊醇、醋酸銨、嗅化乙錠、無(wú)水乙醇、硼酸、二甲苯氰、溴酚藍(lán)等試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>

1.1.3主要儀器設(shè)備

主要儀器設(shè)備:dna/rna濃度測(cè)定儀(美國(guó)thermoscientific公司);高速冷凍離心機(jī)(美國(guó)backman公司生產(chǎn),型號(hào)microfuge18);梯度pcr儀(biometra,德國(guó));凝膠成像分析系統(tǒng)μvp(biospectrμm,美國(guó));hhs型電熱恒溫水浴鍋、高壓蒸汽滅菌鍋、dyy-iii24a型電泳槽、ptc-100tm型pcr儀、dyy-4型電泳儀、磁力加熱攪拌器、制冰機(jī)、wd-9406型膠片觀察燈、wd-9405b型水平搖床、紫外凝膠成像分析儀器、超凈工作臺(tái)。

1.1.4試劑配置

(1)tris-hcl(1mol/l,1000ml,ph=7.5):tris-堿121.1g,濃hcl65ml,加水定容至1000ml,高壓滅菌備用。

(2)edta(0.5mol/l,100ml,ph=8.0):na2edta·2h2o稱取18.61g加水溶解,用約2gnaoh,調(diào)節(jié)ph至8.0,定容至100ml。

(3)sds(10%,50ml):5gsds溶解于40ml水,68℃水浴使其完全溶解,用濃hcl調(diào)節(jié)ph至7.2。

(4)30%丙烯酰胺:1g甲叉酰胺,29g聚丙烯酰胺,溶于100ml去離子水。

(5)5×tbe:tris-base54g,硼酸27.5g,加800ml蒸餾水溶解,加20mledta(ph=8.0),定容至1000ml。

(6)10%過硫酸銨:1g過硫酸銨溶解于5ml去離子水,定容至10ml。

(7)固定液:無(wú)水乙醇50ml,冰乙酸2.5ml,定容至500ml。

(8)染色液:硝酸銀1g,無(wú)水乙醇50ml,冰乙酸2.5ml,1g硝酸銀溶于水,加入50ml無(wú)水乙醇,2.5ml冰乙酸,定容至500ml。

(9)顯影液:37%甲醛溶液2.5ml,氫氧化鈉15g,將15g氫氧化鈉溶于水,溶解后加入2.5ml37%甲醛溶液,定容至500ml。

(10)變性劑:去離子甲酰胺9.8ml,edta(ph=8.0),溴酚藍(lán)10mg,二甲苯菁10mg。

克隆試劑的配制:

①lb液體培養(yǎng)基:稱取10g胰蛋白脈,5g酵母浸出物,i0gnacl,溶于800ml雙蒸水中,完全溶解后,用1mol/lnaoh和1mol/lhcl調(diào)ph值至7.0-7.2,定容至1000ml,高壓滅菌后備用。

②lb固體培養(yǎng)基:按上述方法配制液體培養(yǎng)基,每l00ml加入1.5g瓊脂粉,高壓滅菌后在無(wú)菌狀態(tài)下鋪平板,冷卻后備用。

③氨芐青霉素(amp):用滅菌雙蒸水溶解,儲(chǔ)存濃度為500mg/ml,-20℃保存。

1.1.5引物設(shè)計(jì)

根據(jù)genbank登陸的原雞ocx-36(登錄號(hào):nc_006107.4),利用軟件primer5.0設(shè)計(jì)引物,用于擴(kuò)增第五外顯子、第七外顯子序列,引物均由上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,引物序列見表1。

表1ocx-36引物序列信息

1.2主要的實(shí)驗(yàn)方法與步驟

主要的實(shí)驗(yàn)方法為:采集正常蛋雞血液,對(duì)候選基因進(jìn)行pcr-sscp多態(tài)性分析;取正常蛋雞連續(xù)15天的雞蛋,進(jìn)行蛋品質(zhì)性狀的檢測(cè);將檢測(cè)結(jié)果與pcr-sscp結(jié)果相對(duì)應(yīng),尋找調(diào)控蛋品質(zhì)性狀的優(yōu)勢(shì)基因型,鑒定優(yōu)勢(shì)基因型,蛋品質(zhì)性狀的測(cè)定,經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,找到與蛋品質(zhì)性狀顯著或極顯著的基因型。

1.2.1血樣采集

通過edta-k2真空采血管翅下靜脈采集血液,每只雞約采集1ml,于-20℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2基因組dna提取

(1)將冷凍血解凍后取30μl全血于ependorf管中,加入500μlste,100μlsds,5μl蛋白酶k(l0mg/ml),混勻置55℃水浴16-18h;

(2)取出,冷卻至室溫,加入飽和酚500μl抽提,來(lái)回緩慢顛倒10min,12000r/min離心15min;

(3)取上清,加入酚:氯仿:異戊醇(體積比為25:24:1)500μl抽提一次;

(4)取上清,加入氯仿:異戊醇(體積比為24:1)500μl再抽提一次;

(5)取上清,加入10mmol/l醋酸銨50μl,混勻;再加無(wú)水酒精1000μl,緩慢顛倒混勻,此時(shí)可見白色絮狀沉淀,4℃放置10min,10000r/min離心15min;

(6)棄上清,加入75%酒精500μl,混勻,10000r/min離心15min;

(7)棄上清,于通風(fēng)處倒置30-40min風(fēng)干至管內(nèi)無(wú)酒精味,加100-200μite溶解,4℃保存。

1.2.3dna質(zhì)量檢測(cè)

dna提取后用1.2%tbe瓊脂糖凝膠電泳,向瓊脂糖膠的點(diǎn)樣孔處依次加入3μldna的te溶解液與5μl溴酚藍(lán)的混合樣品。點(diǎn)樣完成后打開電泳儀調(diào)制130v電泳3分鐘后將電泳調(diào)制100v持續(xù)電泳,以肉眼可見得藍(lán)色條帶跑至膠的下半部分時(shí)停止電泳。將電泳好的凝膠置于紫外下成像檢測(cè)是否合格。不合格的樣品重新提取,直至合格。將合格的凝膠照相并將圖片標(biāo)號(hào)保存,同時(shí)檢測(cè)合格的dna樣品放入-20℃冰箱保存待用。

1.2.4pcr反應(yīng)體系

pcr擴(kuò)增體系(20μl):10×pcrbuffer(mg2++plus)3μl,10mmol/ldntpmix1.5μl,5u/μltaqdnapolymerase0.25μl,模板dna1μl,上下游引物各1μl,ddh2o12.25μl。

1.2.5pcr反應(yīng)程序

95℃預(yù)變性5min,95℃30s,退火30s,72℃30s,30個(gè)循環(huán),72℃10min,4℃保存。退火溫度根據(jù)具體的引物序列的擴(kuò)增條件而定。

1.2.6pcr產(chǎn)物檢測(cè)

(1)用0.5×tbe電泳緩沖液配置1.2%的瓊脂糖凝膠(含0.5μg/mleb);

(2)取pcr產(chǎn)物5μl,混合2μl溴酚藍(lán)上樣,以dnamarker進(jìn)行分子量對(duì)照;

(3)以0.5×tbe電泳緩沖液,電泳90v(5v/cm)30min;

(4)將瓊脂糖凝膠置于凝膠成像系統(tǒng),拍照保存。

1.2.7非變性聚丙烯酰胺凝膠配制

根據(jù)pcr產(chǎn)物大小的不同選擇不同濃度的非變性聚丙烯酰胺凝膠。本實(shí)驗(yàn)選用膠濃度為:200bp以內(nèi)的目的條帶選用8%的凝膠;小于或等于300bp選用10%的凝膠;小于或等于400bp的目的條帶選用12%的凝膠。凝膠制作方法參考分子克隆指南第三版。

表2非變性聚丙烯酰胺凝膠配制

1.2.8sscp實(shí)驗(yàn)方法

(1)page封底膠的制備,用0.5×tbe電泳緩沖液制備濃度為2%瓊脂糖膠封底。

(2)將玻璃板清洗干凈,并用蒸餾水沖洗后放入干燥箱中烘干。將烘干的玻璃板取出放入封底膠槽內(nèi),用夾子的固定在膠架上,將制好的封底膠倒入封底槽中。待封底膠凝固后,再進(jìn)行下一步操作。

(3)依據(jù)所跑片段的大小選擇合適濃度的聚丙烯酰胺凝膠。在兩玻璃板內(nèi)注入配好的聚丙烯酰胺凝膠。將配置好的膠緩慢倒入傾斜的玻板之間,以免所制備的膠中有氣泡生成,插入所需孔數(shù)的梳子等待凝固。

(4)pcr目的片段的變性,取pcr產(chǎn)物3ul于一新的pcr管中,與8ul的變性劑混勻離心,在pcr儀器上設(shè)置98℃10min的條件進(jìn)行變性,10min后迅速取出置于提前制好的冰盒上冷卻以防復(fù)性。

(5)在凝固好的聚丙烯酰胺凝膠膠架上,用手術(shù)刀片整齊的割除多余的封底膠,取下梳子,放置于電泳槽上,迅速加入1×tbe的電泳液,將梳孔中的殘留的氣泡趕出后,向點(diǎn)樣孔中依次加入10ul變性產(chǎn)物。

(6)打開電泳儀,先在300v電壓條件下電泳5分鐘將條帶跑出膠孔,后改為100v電壓過夜進(jìn)行電泳。

(7)關(guān)閉電泳儀,取下夾子并將玻璃板從電泳槽中取出,小心將兩玻璃板分開后,用刀片將膠切出并放入漂洗槽中,先用蒸餾水沖洗兩次后,倒入可以完全浸沒凝膠的固定液于搖床上,固定10分鐘。

(8)回收固定液,用蒸餾水漂洗膠兩次,倒入染色液,置于搖床上染色20分鐘。

(9)回收染色液,用蒸餾水漂洗膠,加入顯影液,置于搖床上進(jìn)行顯影反映,直至顯影完成。

(10)回收顯影液,用蒸餾水漂洗膠,根據(jù)顯影情況選擇是否需要再次固定。

(11)將膠放置與凝膠成像分析儀上進(jìn)行觀察、照相。

1.2.9pcr產(chǎn)物的純化回收

按普通瓊脂糖凝膠dna回收試劑盒的說明書要求進(jìn)行操作。首先柱平衡,向吸附柱ca2中(吸附柱放入收集管中)加入500μl平衡液bl,12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱重新放回收集管中。將切下的單一目的條帶放入滅菌ep管中,加入3倍體積溶膠液pn,50℃水浴放置10min,并溫和翻轉(zhuǎn)離心管,使膠塊充分溶解。將降至室溫的混合溶液加入平衡過的ca2中,室溫放置2min,12000rpm離心50s,棄廢液;向ca2中加入700μl漂洗液pw,12000rpm離心50s,棄廢液。再向ca2中加入500μl漂洗液pw,12000rpm離心50s,棄廢液。將ca2放回收集管中,12000rpm離心2min,以除盡漂洗液。將ca2于室溫放置10min,徹底晾干。最后將ca2放到新的ep管中,向吸附膜中央位置懸空滴加40μl緩沖液eb,室溫放置2min。12000rpm離心2min,回收液即為目的dna溶液。

在t4dna連接酶作用下,經(jīng)16℃連接pmd19-tvector載體16h,將5μl連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞,吸取上清液加入8μliptg和40μlx-gal,再吸取轉(zhuǎn)化產(chǎn)物到lb培養(yǎng)基板,涂板后在37℃倒置平板培養(yǎng)過夜,用取菌環(huán)在過夜培養(yǎng)的平皿中挑取單克隆,將挑出的單克隆放在lb液體培養(yǎng)基中再培養(yǎng)6-8h,加入40%的滅菌甘油,送華大基因測(cè)序。

1.3數(shù)據(jù)處理及分析

1.3.1統(tǒng)計(jì)基因頻率和基因型頻率

基因頻率可以作為反映遺傳結(jié)構(gòu)和群體特征的指標(biāo),用來(lái)進(jìn)行同一地區(qū)不同品種家畜群體遺傳結(jié)構(gòu)的比較。

pi=[2(ii)+(ij1)+(ij2)+……+(ijn)]/2n

pi:第i個(gè)等位基因的頻率;ⅰ:純合復(fù)等位基因;

j1,j2……jn:與i共顯性的第1到第n個(gè)等位基因。

基因型頻率=基因型個(gè)體數(shù)/測(cè)定群體所有基因型的總數(shù)。

1.3.2群體中基因頻率和基因型頻率的差異顯著性檢驗(yàn)(χ2獨(dú)立性檢驗(yàn))

χ2值的計(jì)算是以計(jì)算基因型的理論值為前提的,各種基因型頻率的理論值要根據(jù)所統(tǒng)計(jì)的群體的基因頻率來(lái)計(jì)算。

基因位點(diǎn)的hardy-weinberg平衡性檢測(cè)采用χ2統(tǒng)計(jì)量,其計(jì)算公式為:

其中:m為某一遺傳位點(diǎn)基因型應(yīng)有個(gè)數(shù);fi代表第i個(gè)基因型的實(shí)際個(gè)體數(shù)量;i為基因型序號(hào);n為樣本數(shù)量;pi代表第i個(gè)基因型的理論頻率。

若自由度為df=2,且某些基因型的理論值小于5時(shí),可采用校正公式:

其中:ei為理論值,oi為實(shí)際觀察值,n為基因型數(shù)。

1.3.3群體遺傳雜合度和遺傳純合度

平均雜合度是衡量群體內(nèi)遺傳變異的有效指標(biāo)。平均雜合度和遺傳變異程度呈正相關(guān)的關(guān)系。一個(gè)群體的基因變異,通??捎盟鄳B(tài)性位點(diǎn)的百分比和每個(gè)位點(diǎn)的平均雜合度來(lái)衡量。

群體內(nèi)某一基因位點(diǎn)純合度的公式為:

平均雜合度公式為:

其中:h為某一位點(diǎn)的雜合度,pi為某一位點(diǎn)上第i個(gè)等位基因的基因頻率,n為某一位點(diǎn)的等位基因的數(shù)目。

1.3.4多態(tài)信息含量

pic(polymorphicinformationcontent),多態(tài)信息含量,是dna變異程度的衡量指標(biāo)。用于對(duì)標(biāo)記基因多態(tài)性的估測(cè)。一般規(guī)定,pic>0.5時(shí),該多態(tài)位點(diǎn)為高度多態(tài),0.25<pic<0.5時(shí),該多態(tài)位點(diǎn)為中度多態(tài),pic<0.25時(shí),該多態(tài)位點(diǎn)為低度多態(tài)。

pic值是根據(jù)各個(gè)等位基因的基因頻率來(lái)計(jì)算的。其公式為:

其中:n為某位點(diǎn)的等位基因數(shù)目,pi和pj分別為第i和第j個(gè)等位基因在該群體中的基因頻率。

1.3.5有效等位基因數(shù)(effectivenumberofalleles,ne)

有效等位基因數(shù)等于基因純合度的倒數(shù),是衡量群體遺傳變異的一個(gè)指標(biāo)。等位基因在群體中分布得越均勻,有效等位基因數(shù)越接近實(shí)際檢測(cè)到的等位基因的個(gè)數(shù)。

1.4數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計(jì)分析

試驗(yàn)群體遺傳背景一致,飼養(yǎng)管理相同,故構(gòu)建一般線性模型:

yij=μ+gi+fj+eij,式中,yij表示各個(gè)體性狀測(cè)定值;μ為群體均值;gi為基因型效應(yīng);fj表示家系效應(yīng)(公雞效應(yīng));eij表示隨機(jī)誤差。采用sas8.1統(tǒng)計(jì)軟件分析,結(jié)果用“最小二乘均值±標(biāo)準(zhǔn)誤”表示。

2結(jié)果與分析

2.1基因組dna提取及檢測(cè)

提取樣本基因組dna,經(jīng)1.2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),基因組dna條帶明亮單一,完整性好,無(wú)拖尾現(xiàn)象,結(jié)果見圖2。

2.2ocx36外顯子區(qū)pcr產(chǎn)物擴(kuò)增片段的檢測(cè)

經(jīng)檢測(cè)基因ocx36根據(jù)外顯子5、7設(shè)計(jì)的2對(duì)pcr引物均符合要求。瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)條帶單一清晰,條帶位置與makerⅰ標(biāo)記位置一致,具有百分之百的擴(kuò)增效率,可用于后續(xù)的sscp分析,結(jié)果見圖3、4。

2.3ocx36基因多態(tài)性的檢測(cè)

2.3.1ocx36第五外顯子sscp檢測(cè)結(jié)果

圖5為第五外顯子引物sscp電泳帶型圖,分別取aa、ag、gg帶型所對(duì)應(yīng)dna樣本測(cè)序,測(cè)序結(jié)果見圖7,依次為aa、ag、gg帶型的測(cè)序結(jié)果。與genbank上的ocx36已知序列進(jìn)行同源性比較,突變位點(diǎn)位于ocx36序列第2472bp位置(即突變位點(diǎn)位于序列表seqidno.1中第144bp位置),發(fā)生了a/g的突變,即由a突變?yōu)間。見圖5。aa帶型所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第2472bp的位置為a,gg帶型所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第2472bp的位置為g,ag帶型所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第2472bp的位置由a突變?yōu)間。

引物p5擴(kuò)增的核苷酸序列為:

上述序列中,第144bp處的r為等位基因a/g。

2.3.2ocx36第七外顯子sscp檢測(cè)結(jié)果

圖6為第七外顯子引物sscp電泳帶型圖,分別取aa、ab、bb、ac、ad帶型所對(duì)應(yīng)dna樣本測(cè)序,測(cè)序結(jié)果見圖8和圖9,圖8依次為aa、ab、bb帶型的測(cè)序結(jié)果,圖9依次為ac、ad帶型的測(cè)序結(jié)果。與genbank上的ocx36已知序列進(jìn)行同源性比較,第一突變位點(diǎn)位于ocx36序列第3287bp位置,發(fā)生了g/a的突變?nèi)鐖D4,第二突變位點(diǎn)位于ocx36序列第3339bp位置,發(fā)生了g/a的突變(即第一突變位點(diǎn)位于序列表seqidno.3中第169bp位置,第二突變位點(diǎn)位于序列表seqidno.3中第221bp位置,均由g突變?yōu)閍),見圖6。

其中,

aa所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第3287bp的位置為a(該位點(diǎn)發(fā)生突變,由g突變?yōu)閍),ocx36序列第3339bp的位置為g;

ab所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第3287bp的位置為g,ocx36序列第3339bp的位置為g;

bb所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第3287bp的位置為a,ocx36序列第3339bp的位置為g;

ac所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第3287bp的位置為g,ocx36序列第3339bp的位置為a(該位點(diǎn)發(fā)生突變,由g突變?yōu)閍);

ad所對(duì)應(yīng)的ocx36序列第3287bp的位置為g,ocx36序列第3339bp的位置為g。

引物p7擴(kuò)增的核苷酸序列為:

上述序列中,第169bp處的r為等位基因g/a,第221bp處的m為等位基因g/a。

2.4ocx36多態(tài)性與蛋品質(zhì)性狀的關(guān)聯(lián)分析

蛋雞ocx36基因第五顯子中的aa基因型在蛋重、蛋白重、蛋黃重和蛋殼重性狀較其余基因型分別高出9.56g、9.31g、6.17g、1.66g,且均達(dá)到極顯著影響(p<0.01),aa基因型可作為調(diào)控蛋重、蛋白重、蛋黃重和蛋殼重的標(biāo)記基因型,見表1。

表1ocx36第五顯子多態(tài)性與蛋品質(zhì)性狀的關(guān)聯(lián)分析(最小二乘均值±標(biāo)準(zhǔn)誤)

由表1可知,當(dāng)ocx36序列第2472bp位置為a時(shí),蛋重、蛋白重、蛋黃重和蛋殼重性狀高。

蛋雞ocx36基因第七顯子的aa型在調(diào)控哈氏單位、蛋白高度較其他基因型極顯著(p<0.01)高出34.02、2.56mm;aa型可作為調(diào)控哈氏單位和蛋白高度的標(biāo)記基因型,見表2。

表2ocx36第七顯子多態(tài)性與蛋品質(zhì)性狀的關(guān)聯(lián)分析(最小二乘均值±標(biāo)準(zhǔn)誤)

注:肩標(biāo)字母相同表示差異不顯著(p>0.05),不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05),不同大寫字母表示差異極顯著(p<0.01)。

由表2可知,當(dāng)ocx36序列第3287bp位置由g突變?yōu)閍,且第3339bp位置仍為g時(shí),雞蛋哈氏單位、蛋白高度高。

實(shí)施例2

蛋雞蛋品質(zhì)性狀檢測(cè)試劑盒,包括:

1、引物對(duì)

p5:

f:gtgtggacagtgggggt;

r:gggcagatttcaggctt;

p7:

f:gagatgtgggtgctcggtg;

r:gtgatggggttggaggttg。

2、pcr檢測(cè)試劑

以20μl計(jì)為:10×pcrbuffer(mg2++plus)3μl,10mmol/ldntpmix1.5μl,5u/μltaqdnapolymerase0.25μl,模板dna1μl,上下游引物各1μl,ddh2o12.25μl。

3陽(yáng)性對(duì)照

以單鏈的序列表seqidno.1中的核苷酸序列作為陽(yáng)性對(duì)照一,以單鏈的序列表seqidno.2中的核苷酸序列作為陽(yáng)性對(duì)照二,以單鏈的序列表seqidno.3中的核苷酸序列作為陽(yáng)性對(duì)照三,以單鏈的序列表seqidno.4中的核苷酸序列作為陽(yáng)性對(duì)照四,以單鏈的序列表seqidno.5中的核苷酸序列作為陽(yáng)性對(duì)照五。

該試劑盒的使用方法參照實(shí)施例1。

將待測(cè)樣本的sscp電泳帶型圖與陽(yáng)性對(duì)照進(jìn)行對(duì)比,對(duì)待測(cè)樣本的蛋雞蛋品質(zhì)性狀進(jìn)行判斷。

最后應(yīng)說明的是:以上所述僅為本發(fā)明的優(yōu)選實(shí)施例而已,并不用于限制本發(fā)明,盡管參照前述實(shí)施例對(duì)本發(fā)明進(jìn)行了詳細(xì)的說明,對(duì)于本領(lǐng)域的技術(shù)人員來(lái)說,其依然可以對(duì)前述各實(shí)施例所記載的技術(shù)方案進(jìn)行修改,或者對(duì)其中部分技術(shù)特征進(jìn)行等同替換。凡在本發(fā)明的精神和原則之內(nèi),所作的任何修改、等同替換、改進(jìn)等,均應(yīng)包含在本發(fā)明的保護(hù)范圍之內(nèi)。

序列表

<110>石河子大學(xué)

<120>與蛋雞蛋品質(zhì)性狀相關(guān)的遺傳標(biāo)記及其應(yīng)用

<170>patentinversion3.5

<210>1

<211>181

<212>dna

<213>ocx36第五外顯子等位基因

<400>1

gtgtggacagtgggggtcttctgctctgctgcagtgcccgggagctgttggtttttggcc60

ctcatacattcccttttgttttcttccctcctttccagcttactgtccctgtcagtgcat120

gacatggtgttcagccacctgacagcaactctgcctggtttggtaagcctgaaatctgcc180

c181

<210>2

<211>181

<212>dna

<213>ocx36第五外顯子等位基因

<400>2

gtgtggacagtgggggtcttctgctctgctgcagtgcccgggagctgttggtttttggcc60

ctcatacattcccttttgttttcttccctcctttccagcttactgtccctgtcagtgcat120

gacatggtgttcagccacctgacggcaactctgcctggtttggtaagcctgaaatctgcc180

c181

<210>3

<211>329

<212>dna

<213>ocx36第七外顯子等位基因

<400>3

gagatgtgggtgctcggtgcgtgctgctccctctgctggaacctggggcaggaggagctc60

tgtgttccctgaccatcaccaatggctttcccatgcagtggtgatgccagtcggcttgaa120

ggggatggttcactaccacctggtcggcccaccattcacctccggttcatccctgatgat180

ggatttagatgtaagtgaaccctggctatcagtaccatgcgcaccccgggcttctttcag240

cacaaccaaacagaagggctgtgctgatgagctgttctggggctgccagctaaacgtgcc300

agcccctgtccaacctccaaccccatcac329

<210>4

<211>329

<212>dna

<213>ocx36第七外顯子等位基因

<400>4

gagatgtgggtgctcggtgcgtgctgctccctctgctggaacctggggcaggaggagctc60

tgtgttccctgaccatcaccaatggctttcccatgcagtggtgatgccagtcggcttgaa120

ggggatggttcactaccacctggtcggcccaccattcacctccggttcgtccctgatgat180

ggatttagatgtaagtgaaccctggctatcagtaccatgcgcaccccgggcttctttcag240

cacaaccaaacagaagggctgtgctgatgagctgttctggggctgccagctaaacgtgcc300

agcccctgtccaacctccaaccccatcac329

<210>5

<211>329

<212>dna

<213>ocx36第七外顯子等位基因

<400>5

gagatgtgggtgctcggtgcgtgctgctccctctgctggaacctggggcaggaggagctc60

tgtgttccctgaccatcaccaatggctttcccatgcagtggtgatgccagtcggcttgaa120

ggggatggttcactaccacctggtcggcccaccattcacctccggttcgtccctgatgat180

ggatttagatgtaagtgaaccctggctatcagtaccatgcacaccccgggcttctttcag240

cacaaccaaacagaagggctgtgctgatgagctgttctggggctgccagctaaacgtgcc300

agcccctgtccaacctccaaccccatcac329

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