專利名稱：一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法
技術領域：
本發(fā)明屬于細菌纖維素的制備領域，特別涉及一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法。
背景技術：
細菌纖維素(Bacterial Cellulose，簡稱BC)作為一種天然高分子材料，具有較好的生物相容性、生物可降解性、較強的持水能力和較高的力學性能等特性。鑒于細菌纖維素的優(yōu)良特性，細菌纖維素具有廣泛而特殊的用途。在醫(yī)用材料領域，細菌纖維素可以用于合成人造皮膚、人造血管、外科敷料、緩釋藥物的載體等；在食品工業(yè)領域，細菌纖維素本身就可以作為一種食品食用，如俗稱椰果或者椰纖果，另外，BC還可以作為食品工業(yè)中的增稠劑、成型劑、添加劑等；在造紙工業(yè)方面，細菌纖維素的添加可以提高紙張抗張強度和耐破度，降低透氣度，提高撕裂度等；在音響領域可以用作生產(chǎn)超性能的聲音振動膜；在材料領域，BC納米纖維與其他高分子、有機或無機分子的復合摻雜，可獲得各種新的功能復合材料。目前大規(guī)模利用細菌纖維素的主要障礙是其產(chǎn)量低、成本高、價格不敵普通纖維素，因此研究的重點集中在找尋新碳源上，尋找廉價合適的原料，既降低生產(chǎn)成本又能提高
纖維素的產(chǎn)量。^^ (Jerusalem artichoke),(Helianthus tuberosus), ( H^ 屬，多年生草本植物。具有耐貧瘠、耐寒、耐旱、種植簡易、產(chǎn)量極高等特點，在我國分布廣泛且價格低廉。菊糖(Inulin)又稱菊粉是菊芋的主要成份，是一種由呋喃構(gòu)型的D-果糖經(jīng)β (2-1)糖苷鍵脫水聚合而成果聚糖的混合物，聚合度為2-60，一般平均為10，其終端以 α (1-2)糖苷鍵連接一個葡萄糖單位，呈線型結(jié)構(gòu)。鮮菊芋塊莖中含碳水化合物16.6%，其中78%的碳水化合物為菊糖。菊糖微溶于冷水，在熱水中易溶，通過熱水浸提菊芋汁可以生成含菊糖的多糖混合溶液。果糖是生產(chǎn)細菌纖維素的優(yōu)質(zhì)碳源，因此直接以價廉的富含果糖聚合物的菊芋為原料，在降低原料成本上具有非常大的優(yōu)勢。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明所要解決的技術問題是提供一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，該方法具有原料來源廣泛，成本低，可操作性強等優(yōu)點；且使用經(jīng)過浸提除雜的菊芋汁生產(chǎn)的細菌纖維素產(chǎn)量高于其他碳源生產(chǎn)的細菌纖維素，在細菌纖維素的生產(chǎn)領域具有良好的應用前景。本發(fā)明的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，包括(1)將清洗干凈的菊芋直接加水勻漿或于80-120°C蒸煮15-60min再加水勻漿，菊芋與水的質(zhì)量體積比為Ig 1 10ml，勻漿后于60-100°C水浴浸提0.5-2. ;浸提結(jié)束后過濾得濾渣和濾液，將濾液離心得菊芋汁；(2)在上述濾渣中加入酸至濃度0. 5-3wt% (混合后酸濃度為0. 5-3wt% )，或者每g濾渣中加入1-500U酶，于20-110°C水解10-180min得水解液； 在上述菊芋汁中加入酸至濃度0. 5-3wt% (混合后酸濃度為0. 5-3wt% )，或者每
ml菊芋汁中加入1-50U酶，于20-110°C水解10_180min得水解液； 當水解溫度為100 110°C時將水解液進行脫毒；(3)將步驟(1)中的菊芋汁或步驟( 中的水解液作為培養(yǎng)基碳源，加氮源配制成發(fā)酵培養(yǎng)基，PH調(diào)至4. 0 6. 0，將細菌纖維素生產(chǎn)菌株的種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基，在20 30°C下靜止培養(yǎng)或者以5 500rpm轉(zhuǎn)速下動態(tài)培養(yǎng)，經(jīng)過3 23天制得細菌纖維素。所述步驟(1)中的蒸煮溫度為80-110°C，蒸煮時間為20-40min，菊芋與水的質(zhì)量體積比為Ig 1 8ml，浸提溫度為80-100°C，浸提時間為1. 0-2. Oh。所述步驟(1)中的蒸煮溫度為105°C，蒸煮時間為30min，菊芋與水的質(zhì)量體積比為 Ig 8 10ml。所述步驟O)中的酸為硫酸、磷酸、鹽酸或硝酸。所述步驟O)中的酶為菊粉酶、果聚糖酶、葡聚糖酶、纖維素酶、果膠酶、糖化酶、 糊精酶或淀粉酶中的一種或幾種。所述步驟(3)中的氮源為0.1 Iwt %的酵母浸膏和0.1 0.5wt%的胰蛋白胨； 或者為0. l-2wt%的硫酸銨、玉米漿或麥芽汁。所述步驟(3)中的細菌纖維素生產(chǎn)菌株為醋酸菌屬(AcetcAacter sp.)、葡萄糖酸桿菌屬(GluconcAacter sp.)、葡糖酸醋桿菌屬(GluconacetcAacter sp.)、葡萄糖氧化桿菌(Gluconobacter oxydans)、根瘤菌屬(Rhizobium sp·)、八疊球菌屬(Sarcina sp.)、假單胞菌屬(Pseudomounas sp.)、無色桿菌屬(Achromobacter sp.)、產(chǎn)堿菌屬(Alcaligenes sp.)、氣桿菌屬(Aerobacter sp.)、固氮菌屬(Azotobacter sp.)、 土壤桿菌屬(Agrobacterium sp.)、洋蔥假單胞菌(Seudomonas c印acia)、空腸彎曲菌 (Campylobacter jejuni)、木葡糖酸醋桿菌(Gluconacetobacter xylinus)或紅茶菌 (kombucha)。所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株為木葡糖酸醋桿菌(GluconacetcAacter xylinus)或紅茶菌(kombucha)。所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株中除紅茶菌以外的菌種按2 3接種環(huán)的接種量接入液體種子培養(yǎng)基制備種子液，然后按體積百分比3-15%的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基；細菌纖維素生產(chǎn)菌株為紅茶菌時按接入1 3片直徑Icm圓片菌膜的接種量接入液體種子培養(yǎng)基，然后按1 3片直徑Icm圓片菌膜的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基。所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株為紅茶菌時液體種子培養(yǎng)基和發(fā)酵培養(yǎng)基的組成均為 每IL水中，綠茶或者紅茶1 10g，含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液，蛋白胨或者胰蛋白胨3g，酵母浸膏5g，pH3. O 7. 5，巴氏滅菌30min ；或含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液、綠茶或紅茶以及水，其中糖、茶、水的質(zhì)量比為5 0.1 0.4 100 200，pH3. O 7. 5，巴氏滅菌30min ；或每IL水中，含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液，蛋白胨或胰蛋白胨3g， 酵母浸膏 5g, ρΗ3· O 7. 5，121°C滅菌 20min。所述步驟O)中的水解溫度為100 110°C時獲得的水解液脫毒具體方法有(1)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，過濾沉淀，并重新微調(diào)pH到4. 5-5. 5 ；
(2)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到4. 5-5. 5 ；(3)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到9. 5-11，加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新調(diào)節(jié)PH值到4. 5-5. 5 ；(4)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到9. 5_11，于25_60°C溫水浴條件下反應12h_Mh， 過濾并重新調(diào)PH值到4. 5-5. 5 ；(5)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到9. 5_11，于25_60°C溫水浴條件下反應12h_Mh， 過濾并重新調(diào)PH值到4. 5-5. 5，然后加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)pH 值到 4. 5-5. 5 ；(6)采用NaOH將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，加IOwt %的酶活為2. 75U/mL的漆酶于25-60°C溫水浴條件下反應12h-Mh，過濾掉沉淀物并重新微調(diào)pH值到4. 5-5. 5 ； (7)采用Ca (OH) 2將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，過濾沉淀，并微調(diào)到pH4. 5-5. 5 ；(8)采用Ca(OH)2將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到4. 5-5. 5 ；(9)采用Ca(OH)2將水解液pH值調(diào)到9. 5_11，加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新調(diào)節(jié)PH值到4. 5-5. 5 ；(10)采用Ca(OH)Jf水解液pH值調(diào)到9. 5-11，于25_60°C溫水浴條件下反應 12h-24h,過濾并重新調(diào)pH值到4. 5-5. 5 ；(11)采用Ca(OH)Jf水解液pH值調(diào)到9. 5-11，于25_60°C溫水浴條件下反應 12h-24h,過濾并重新調(diào)pH值到4. 5-5. 5，然后加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到4. 5-5. 5 ；(12)采用Ca (OH) 2將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，加IOwt %的酶活為2. 75U/mL的漆酶于25-60°C溫水浴條件下反應12h-Mh，過濾掉沉淀物并重新微調(diào)pH值到4. 5-5. 5 ；(13)采用25% -30%氨水將水解液pH值調(diào)到9. 5_11，于25_60°C溫水浴條件下反應12h-Mh，過濾并重新調(diào)pH值到4. 5-5. 5，然后加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到4. 5-5. 5 ；(14)采用25% -30%氨水將水解液pH值調(diào)到4. 5-5. 5，加10%的酶活為2. 75U/mL 的漆酶于25-60°C溫水浴條件下反應12h-Mh，過濾掉沉淀物并重新微調(diào)pH值到4. 5-5. 5。本發(fā)明利用菊芋這一在我國資源豐富，種植廣泛，存儲方便且價格低廉的原料進行。實驗數(shù)據(jù)表明，在同等條件下，使用菊芋汁、汁水解液生產(chǎn)的細菌纖維素產(chǎn)量高于其他碳源生產(chǎn)的細菌纖維素，如蔗糖，葡萄糖，果糖。甘露醇等碳源。因此證實本發(fā)明所生產(chǎn)的廉價碳源是一種培養(yǎng)細菌纖維素的優(yōu)質(zhì)碳源。有益效果本發(fā)明以菊芋為原料，不需精加工成精粉，可以大大降低BC的生產(chǎn)原料成本；菊芋中還含有少量的蛋白質(zhì)，維生素，礦物質(zhì)等元素，可以促進BC的合成；該生產(chǎn)工藝具有原料來源廣泛，成本低，可操作性強等優(yōu)點；且經(jīng)處理的菊芋汁生產(chǎn)的細菌纖維素產(chǎn)量高于其他碳源生產(chǎn)的細菌纖維素，在細菌纖維素的生產(chǎn)領域具有良好的應用前景。


圖1為固液比為1 1和80°C浸提條件下不同浸提時間對還原糖得率的影響；圖2為不同浸提溫度對還原糖得率的影響；圖3為不同固液比對總糖得率的影響；圖4為不同稀釋度的菊芋汁和不同碳源生產(chǎn)的細菌纖維素的結(jié)果。
具體實施例方式下面結(jié)合具體實施例，進一步闡述本發(fā)明。應理解，這些實施例僅用于說明本發(fā)明而不用于限制本發(fā)明的范圍。此外應理解，在閱讀了本發(fā)明講授的內(nèi)容之后，本領域技術人員可以對本發(fā)明作各種改動或修改，這些等價形式同樣落于本申請所附權(quán)利要求書所限定的范圍。實施例1菊芋先用水清洗干凈，稱重分裝，在120°C溫度下蒸煮20min，用打汁機勻漿，菊芋與水的比例(g/ml)是1 1，將菊芋漿在80°C的水浴中浸提lh。用兩層紗布過濾除去濾渣，得到較為澄清的菊芋汁，于6000r/min離心20min，4°C冰箱冷藏備用。實驗結(jié)果見圖1， 以苯酚硫酸法測總糖，以總糖濃度乘以浸提液體積再除以鮮菊芋質(zhì)量記為得率。在過濾渣中加入硫酸至濃度0. 5wt%，在110°C水解30min，采用Ca(OH)2將水解液PH值調(diào)到9. 5，加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新調(diào)節(jié)pH值到4. 5 ；或者在過濾渣中加入纖維素酶和菊粉酶至lU/m L，采用NaOH將水解液pH值調(diào)到4. 5，于50°C水解 ISOmin,過濾沉淀，并重新微調(diào)pH到4. 5，收集水解液備用。在菊芋汁中加入硫酸至濃度0. 5wt%，在110°C水解lOmin，采用NaOH將水解液pH 值調(diào)到11，于25°c溫水浴條件下反應12h，過濾并重新調(diào)PH值到5. 5，然后加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到5. 5 ；或者在菊芋汁中加入菊粉酶至lU/mL，采用NaOH將水解液pH值調(diào)到6. 0，于50°C水解60min，過濾沉淀，并重新微調(diào)pH到4. 5，收集水解液備用。澄清的菊芋汁或者其水解液經(jīng)測糖，作為培養(yǎng)基碳源，碳源濃度99. 8wt%，再在其中補加0. 的酵母浸膏和0. 的胰蛋白胨配成菊芋汁培養(yǎng)基用于微生物的培養(yǎng)。實施例2菊芋先用水清洗干凈，稱重分裝，在80°C溫度下蒸煮30min，用打汁機勻漿，菊芋與水的比例(g/mi)是1 1，將菊芋漿在80°C的水浴中浸提2. 5h。用兩層紗布過濾除去濾渣，得到較為澄清的菊芋汁，于8000r/min離心20min，4°C冰箱冷藏備用。實驗結(jié)果見圖2。在過濾渣中加入鹽酸至濃度3wt%或者加入果聚糖酶、果膠酶、淀粉酶和纖維素酶至500U/mL，在20°C水解60min，收集水解液備用。在菊芋汁中加入鹽酸至濃度3wt%或者加入淀粉酶至50U/mL，在20°C水解60min， 收集水解液備用。澄清的菊芋汁或者水解液經(jīng)測糖，作為培養(yǎng)基碳源，碳源濃度98wt%，再在其中補加的酵母浸膏和的胰蛋白胨配成菊芋汁培養(yǎng)基用于微生物的培養(yǎng)。實施例3將新鮮菊芋清洗干凈，直接加水勻漿，菊芋與水的料液比(g/ml)為1 8，勻漿后于1001下水浴浸提2.01!。用兩層紗布過濾除去濾渣，得到較為澄清的菊芋汁，于SOOOr/min離心20min，4°C冰箱冷藏備用。實驗結(jié)果見.3，以苯酚硫酸法測總糖，以總糖濃度乘以浸提液體積再除以鮮菊芋質(zhì)量記為得率。在過濾渣中加入硫酸至濃度1襯％，在100°C水解40min，采用Ca(OH)2將水解液pH 值調(diào)到11，過濾并重新調(diào)PH值到5. 5，然后加入活性炭吸附，反應后過濾掉活性炭并重新微調(diào)PH值到5. 5 ；或者在過濾渣中加入糖化酶至500U/mL，于60°C溫水浴條件下反應120min， 收集水解液備用。在菊芋汁中加入硫酸至濃度lwt%或者加入糊精酶至25U/mL(pH6. 0)，于60°C溫水浴條件下反應12h，反應后重新微調(diào)pH值到5. 0，收集水解液備用。澄清的菊芋汁或者水解液經(jīng)測糖，作為培養(yǎng)基碳源，碳源濃度98wt%，再在其中補加2wt%的硫酸銨配成菊芋汁培養(yǎng)基用于微生物的培養(yǎng)。實施例4使用上述方法處理菊芋，浸提得到菊芋汁糖濃度為76g/L。將IL水煮沸，加入綠茶或者紅茶I-IOg (茶葉5g時最優(yōu))，浸泡20min后濾去茶葉渣得到茶湯，然后加入菊芋原汁或水解液配成38g/L、19g/L和12. 7g/L的菊芋汁培養(yǎng)基，補加蛋白胨或者胰蛋白胨3g、酵母浸膏5g, ρΗ5· 0，巴氏滅菌30min。紅茶菌(kombucha)按片直徑0. 5cm圓片菌膜的接種量接入菊芋汁培養(yǎng)基，于 300C、160r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)或者靜置培養(yǎng)1 后；再按1片直徑0. 5cm圓片含菌BC膜的接種量轉(zhuǎn)接至新的菊芋汁培養(yǎng)基，于30°C、160r/min條件下動態(tài)培養(yǎng)或者靜置培養(yǎng)2天。 含糖38g/L的菊芋汁培養(yǎng)基獲得的細菌纖維素產(chǎn)量達27g/L，是25g/L甘露醇培養(yǎng)基產(chǎn)量的 6倍。實施例5使用上述方法處理菊芋，浸提得到菊芋汁糖濃度為76g/L，以去離子水進行稀釋， 稀釋四倍菊芋汁的糖濃約為19g/L，略低于作為對照的甘露醇(25g/L)培養(yǎng)基。在菊芋原汁，稀釋2、4、6倍的菊芋汁以及甘露醇溶液中再補加0. 的酵母浸膏和0. 的胰蛋白胨分別配成IOOmL的不同濃度菊芋汁培養(yǎng)基和甘露醇培養(yǎng)基。將醋酸桿菌或葡萄糖氧化桿菌等細菌以15vol %的接種量接入，于^TC培養(yǎng)箱內(nèi)靜止培養(yǎng)14天(8-23天都可)，可得到比較理想的細菌纖維產(chǎn)品或者比較豐厚的細菌纖維素膜，于105°C烘干并測量其絕干重， 實驗結(jié)果見圖4，并將以甘露醇和菊芋汁為碳源的BC膜拉力進行比較，結(jié)果見表1。圖4顯示菊芋原汁配置的培養(yǎng)基生產(chǎn)的細菌纖維素產(chǎn)量是最高(32. 6g/L)，稀釋四倍的菊芋汁的產(chǎn)量(10. 7g/L)略高于甘露醇(6. 5g/L)。表1顯示以菊芋汁培養(yǎng)的BC膜具有較高的抗張強度。表1以菊芋汁和甘露醇為碳源的BC膜的拉力
權(quán)利要求
1.一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，包括(1)將清洗干凈的菊芋直接加水勻漿或于80-120°C蒸煮15-60min再加水勻漿，菊芋與水的質(zhì)量體積比為Ig 1 10ml，勻漿后于60-100°C水浴浸提0.5-2.5h;浸提結(jié)束后過濾得濾渣和濾液，將濾液離心得菊芋汁；(2)在上述濾渣中加入酸至濃度0.5-3wt%,或者每g濾渣中加入1-500U酶，于 20-110°C水解10-180min得水解液；在上述菊芋汁中加入酸至濃度0. 5-3wt%,或者每ml菊芋汁中加入1-50U酶，于 20-110°C水解10-180min得水解液；當水解溫度為100 110°C時將水解液進行脫毒；(3)將步驟(1)中的菊芋汁或步驟(2)中的水解液作為培養(yǎng)基碳源，加氮源配制成發(fā)酵培養(yǎng)基，PH調(diào)至4. 0 6. 0，將細菌纖維素生產(chǎn)菌株的種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基，在20 30°C 下靜止培養(yǎng)或者以5 500rpm轉(zhuǎn)速下動態(tài)培養(yǎng)，經(jīng)過3 23天制得細菌纖維素。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述步驟(1)中的蒸煮溫度為80-110°C，蒸煮時間為20-40min，菊芋與水的質(zhì)量體積比為 Ig 1 8ml，浸提溫度為80-100°C，浸提時間為1.0-2. Oh。
3.根據(jù)權(quán)利要求2所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述步驟(1)中的蒸煮溫度為105°C，蒸煮時間為30min，菊芋與水的質(zhì)量體積比為Ig 8 10ml。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述步驟(2)中的酸為硫酸、磷酸、鹽酸或硝酸。
5.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述步驟(2)中的酶為菊粉酶、果聚糖酶、葡聚糖酶、纖維素酶、果膠酶、糖化酶、糊精酶或淀粉酶中的一種或幾種。
6.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于 所述步驟(3)中的氮源為0. 1 Iwt %的酵母浸膏和0. 1 0. 5wt%的胰蛋白胨；或者為 0. 1_2襯％的硫酸銨、玉米漿或麥芽汁。
7.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于 所述步驟(3)中的細菌纖維素生產(chǎn)菌株為醋酸菌屬(Acetobacter sp.)、葡萄糖酸桿菌屬(Gluconobacter sp·)、葡糖酸醋桿菌屬(Gluconacetobacter sp·)、葡萄糖氧化桿菌 (Gluconobacter oxydans)、根瘤菌屬(Rhizobium sp·)、八疊球菌屬(Sarcina sp.)、假單胞菌屬(Pseudomounas sp.)、無色桿菌屬(Achromobacter sp·)、產(chǎn)喊菌屬(Alcaligenes sp.)、氣桿菌屬(Aerobacter sp.)、固氮菌屬(Azotobacter sp. )、土壤桿菌屬 (Agrobacterium sp.)、洋蔥假單胞菌(Seudomonas cepacia)、空腸彎曲菌(Campylobacter jejuni)、木葡糖酸醋桿菌(Gluconacetobacter xylinus)或紅茶菌(kombucha)。
8.根據(jù)權(quán)利要求7所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于 所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株為木葡糖酸醋桿菌(Gluconacetobacter xylinus)或紅茶菌 (kombucha)0
9.根據(jù)權(quán)利要求7所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株中除紅茶菌以外的菌種按2 3接種環(huán)的接種量接入液體種子培養(yǎng)基制備種子液，然后按體積百分比3-15%的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基；細菌纖維素生產(chǎn)菌株為紅茶菌時按接入1 3片直徑Icm圓片菌膜的接種量接入液體種子培養(yǎng)基，然后按1 3片直徑Icm圓片菌膜的接種量轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基。
10.根據(jù)權(quán)利要求9所述的一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，其特征在于所述細菌纖維素生產(chǎn)菌株為紅茶菌時液體種子培養(yǎng)基和發(fā)酵培養(yǎng)基的組成均為每IL水中，綠茶或者紅茶1 10g，含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液，蛋白胨或者胰蛋白胨3g，酵母浸膏5g，pH3. 0 7. 5，巴氏滅菌30min ；或含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液、綠茶或紅茶以及水，其中糖、茶、水的質(zhì)量比為5 0.1 04 100 200，pH3. 0 7. 5，巴氏滅菌30min ；或每IL水中，含糖為10 200g的菊芋汁或菊芋汁水解液，蛋白胨或胰蛋白胨3g，酵母浸膏 5g, ρΗ3· 0 7. 5，121°C滅菌 20min。
全文摘要
本發(fā)明涉及一種以菊芋為碳源制備細菌纖維素的方法，包括(1)將清洗干凈的菊芋直接加水勻漿或于80-120℃蒸煮15-60min再加水勻漿，勻漿后浸提；浸提結(jié)束后過濾得濾渣和濾液，將濾液離心得菊芋汁；(2)將濾渣和濾液分別水解得水解液；(3)將上述水解液作為培養(yǎng)基碳源，加氮源配制成發(fā)酵培養(yǎng)基，將細菌纖維素生產(chǎn)菌株的種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基，經(jīng)過3～23天制得細菌纖維素。本發(fā)明的生產(chǎn)工藝具有原料來源廣泛，成本低，可操作性強等優(yōu)點；且經(jīng)處理的菊芋汁生產(chǎn)的細菌纖維素產(chǎn)量高于其他碳源生產(chǎn)的細菌纖維素，在細菌纖維素的生產(chǎn)領域具有良好的應用前景。
文檔編號C12R1/05GK102250983SQ20111017649
公開日2011年11月23日 申請日期2011年6月28日 優(yōu)先權(quán)日2011年6月28日
發(fā)明者洪楓, 韓筱 申請人:東華大學