專利名稱:一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式pcr檢測(cè)方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明涉及分子生物學(xué)領(lǐng)域,特別是涉及一種利用巢式PCR技術(shù)針對(duì)轉(zhuǎn)基因作物中花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子的檢測(cè)方法。
背景技術(shù):
目前,全球轉(zhuǎn)基因作物商品化生產(chǎn)迅猛發(fā)展。自1996年首次商業(yè)性種植以來(lái),轉(zhuǎn)基因作物以其大大減少田間勞作、降低生產(chǎn)成本、緩解環(huán)境惡化等優(yōu)越性,迅速被廣大農(nóng)民接受,種植面積不斷擴(kuò)大。轉(zhuǎn)基因作物給人們帶來(lái)巨大經(jīng)濟(jì)效益的同時(shí),其潛在的生態(tài)安全和食品安全問(wèn)題,也日益受到人們的關(guān)注?,F(xiàn)在轉(zhuǎn)基因技術(shù)仍處于發(fā)展過(guò)程中,國(guó)際上生物安全方面的評(píng)估體系尚不成熟,現(xiàn)有的知識(shí)不足以評(píng)估轉(zhuǎn)基因作物的利益與風(fēng)險(xiǎn)。鑒于此, 國(guó)際上大多數(shù)國(guó)家制定了相應(yīng)的法律法規(guī),對(duì)轉(zhuǎn)基因作物及產(chǎn)品進(jìn)行監(jiān)管,如歐盟各國(guó)、日本、韓國(guó)等均制定了強(qiáng)制性標(biāo)識(shí)制度;我國(guó)于2001年、2002年先后頒布了《農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物安全管理?xiàng)l例》、《農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物標(biāo)識(shí)管理辦法》,啟動(dòng)了農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物的監(jiān)管機(jī)制。我國(guó)政府規(guī)定了凡是列入標(biāo)識(shí)管理目錄并用于銷售的農(nóng)作物轉(zhuǎn)基因作物,應(yīng)當(dāng)加以標(biāo)識(shí)。因此,必須對(duì)轉(zhuǎn)基因作物及產(chǎn)品進(jìn)行有效的檢測(cè)。
轉(zhuǎn)基因作物及產(chǎn)品檢測(cè)主要采用蛋白檢測(cè)方法和DNA檢測(cè)方法。DNA檢測(cè)方法中,主要采用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR),該技術(shù)又分為定性PCR檢測(cè)和定量PCR檢測(cè)。而巢式PCR檢測(cè)屬于定性PCR檢測(cè),是在普通PCR基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的一種新技術(shù),其原理是設(shè)計(jì)兩對(duì)引物, 其中一對(duì)引物在另一對(duì)引物擴(kuò)增產(chǎn)物的片段上,通過(guò)二次PCR反應(yīng)對(duì)某個(gè)基因進(jìn)行檢測(cè)。 巢氏PCR以其特異性和靈敏性已廣泛應(yīng)用于許多檢測(cè)領(lǐng)域,一般來(lái)說(shuō),巢式PCR具有高度的特異性,其結(jié)果一般不需再用其他方法來(lái)驗(yàn)證。在利用基因工程技術(shù)將一個(gè)外源基因整合進(jìn)入植物基因組中時(shí),外源基因必須配備一個(gè)啟動(dòng)子?;ㄒ嘶ò卟《綜aMV35S啟動(dòng)子是轉(zhuǎn)基因作物中一種廣譜性的外源啟動(dòng)子,如玉米、棉花、大豆、番茄等大約有85-90%的轉(zhuǎn)基因作物使用了該啟動(dòng)子。CaMV35S啟動(dòng)子其保守序列相當(dāng)穩(wěn)定,是轉(zhuǎn)基因檢測(cè)的最佳靶點(diǎn)。通過(guò)巢式PCR檢測(cè)CaMV35S啟動(dòng)子可高效、靈敏、準(zhǔn)確地檢測(cè)農(nóng)作物及產(chǎn)品中是否具有轉(zhuǎn)基因成分。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于提供一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,用以檢測(cè)轉(zhuǎn)基因作物中花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,本檢測(cè)方法具有高效、靈敏、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),可避免出現(xiàn)“假陰性”結(jié)果,能切實(shí)解決轉(zhuǎn)基因作物的檢測(cè)技術(shù)難題。本發(fā)明的目的是通過(guò)以下技術(shù)方案實(shí)現(xiàn)的
一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,該方法包括利用ft~imer Premier V5. 0軟件進(jìn)行巢式PCR的引物設(shè)計(jì),用Oligo V6. 22軟件篩選出相互干擾最小的引物;
擴(kuò)增所用的引物及擴(kuò)增片段大小為第一輪PCR所用引物
引物名稱:35S EF 序列(5’ — 3,) ATTCCATTGCCCAGCTATCTGTCA
35S ER 序列(5’ — 3,) TGTGGTGTTTGTGGCTCTGTCCTAA 擴(kuò)增片段大小4Mbp 第二輪PCR所用引物
引物名稱35S IF 序列(5’ 一 3,)GCTCCTACAAATGCCATCATTGC
35S IR 序列(5’ — 3,)GATAGTGGGATTGTGCGTCATCCC 擴(kuò)增片段大小195bp ;
第一輪PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)程序?yàn)樵赑CR反應(yīng)體系中,加DNA模板2μ L (50ng);反應(yīng)程序?yàn)?4 V預(yù)變性IOmin、94 V變性40s、58 °C退火40s、72 °C延伸45s,35個(gè)循環(huán);72 °C延伸5 min,4°C保存;
第二輪PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)程序?yàn)樵诘诙哖CR反應(yīng)體系中,加第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物 2uL ;反應(yīng)程序?yàn)?4°C預(yù)變性10min、94°C變性40s、56°C退火40s、72°C延伸45s,35個(gè)循環(huán); 72°C延伸5 min,4°C保存待測(cè);
兩輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),并樣品分析,即可。所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,所述的瓊脂糖凝膠濃度為2%,膠中溴化乙錠濃度為0. 5μ g/mL,電泳條件以lOV/cm電壓,電泳時(shí)間lh。所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,樣品分析為第二輪PCR擴(kuò)增片段大小與預(yù)期片段大小一致,表明樣品中檢測(cè)出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,即呈陽(yáng)性;反之,則未檢出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,即呈陰性。所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,第一輪PCR產(chǎn)物是否能觀察到與預(yù)期片段大小一致的DNA片段,均不作為判斷結(jié)果;而僅以第二輪PCR產(chǎn)物的觀察結(jié)果作為最后判斷結(jié)果。本發(fā)明的優(yōu)點(diǎn)與效果是
1.本發(fā)明的檢測(cè)方法具有高效、靈敏、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),可避免出現(xiàn)“假陰性”結(jié)果,能切實(shí)解決轉(zhuǎn)基因作物的檢測(cè)技術(shù)難題。2.本發(fā)明根據(jù)花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子的保守序列,設(shè)計(jì)兩個(gè)特異性外引物,和引用農(nóng)業(yè)部953號(hào)公告-6-2007公布的CaMV35S啟動(dòng)子檢測(cè)引物作為內(nèi)引物,該組引物可檢測(cè)出不同轉(zhuǎn)基因作物中的花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,具有廣譜性。3.本發(fā)明與農(nóng)業(yè)部953號(hào)公告-6-2007公布的CaMV35S啟動(dòng)子檢測(cè)引物相結(jié)合, 使該發(fā)明更具有規(guī)范性和權(quán)威性。4.本發(fā)明可直接為農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物安全管理提供技術(shù)支持,可以在農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物研究、生產(chǎn)應(yīng)用和監(jiān)測(cè)中得到廣泛應(yīng)用。該發(fā)明可對(duì)轉(zhuǎn)基因農(nóng)作物產(chǎn)品的研究、生產(chǎn)、 銷售進(jìn)行有效監(jiān)管,對(duì)保障人民健康、環(huán)境安全和生物多樣性具有重要意義。
圖1為本發(fā)明的第一輪PCR擴(kuò)增結(jié)果圖; 圖2為本發(fā)明的第二輪PCR擴(kuò)增結(jié)果圖。
具體實(shí)施例方式下面對(duì)本發(fā)明進(jìn)行詳細(xì)說(shuō)明。本發(fā)明的檢測(cè)方法為
(1) DNA提取稱取0. 1 g樣品,采用CTAB法進(jìn)行DNA提取。(2)PCR 擴(kuò)增第一輪 PCR 擴(kuò)增,20μ1 反應(yīng)體系包括10mmol/L iTris-HCl, 50mmol/L KCl, 1. 5mmol/L MgC12,0· 15 μ mol/L dNTP, 0. 5 μ mol/L35S EF 和!35S ER 引物,1 單位Taq DNA聚合酶,50ng DNA模板;反應(yīng)程序如下94°C預(yù)變性lOmin,94°C變性40s,58°C 退火40s,72°C延伸45s,;35個(gè)循環(huán);72°C延伸5 min,4°C保存。在第二輪PCR反應(yīng)體系中,加入第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物2 μ L為模板,反應(yīng)程序?yàn)?94°C預(yù)變性 10min,94°C變性 40s,56°C退火 40s,72°C延伸 45s,;35 個(gè)循環(huán);72°C延伸 5 min, 4°C保存待測(cè)。(3)電泳檢測(cè)兩輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)瓊脂糖凝膠濃度為m, 溴化乙錠濃度為0. 5 μ g/mL,電泳條件以lOV/cm電壓,電泳時(shí)間lh。(4)結(jié)果分析第一輪PCR擴(kuò)增結(jié)果見附圖1,在454 bp附近觀察不到有DNA條帶,不能進(jìn)行判斷;第二輪PCR擴(kuò)增結(jié)果見附圖2,在195 bp附近觀察到有DNA條帶,與預(yù)期片段大小一致,表明樣品中檢測(cè)出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,呈陽(yáng)性。實(shí)施例1
本實(shí)施例中用巢式PCR檢測(cè)方法檢測(cè)大豆樣品A是否含有轉(zhuǎn)基因成分花椰菜花斑病毒 CaMV35S啟動(dòng)子。操作流程如下
(I)DNA提取將大豆樣品A稱取0. Ig,采用CTAB法進(jìn)行DNA提取。(2)PCR 擴(kuò)增第一輪 PCR 擴(kuò)增,20μ1 反應(yīng)體系包括10mmol/L iTris-HCl, 50mmol/L KCl, 1. 5mmol/L MgC12,0· 15 μ mol/L dNTP, 0. 5 μ mol/L35S EF 和!35S ER 引物,1 單位Taq DNA聚合酶,50ng DNA模板;反應(yīng)程序如下94°C預(yù)變性lOmin,94°C變性40s,58°C 退火40s,72°C延伸45s,;35個(gè)循環(huán);72°C延伸5 min,4°C保存。在第二輪PCR反應(yīng)體系中,加入第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物2 μ L為模板,反應(yīng)程序?yàn)?94°C預(yù)變性 10min,94°C變性 40s,56°C退火 40s,72°C延伸 45s,;35 個(gè)循環(huán);72°C延伸 5 min, 4°C保存待測(cè)。(3)電泳檢測(cè)兩輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)瓊脂糖凝膠濃度為I 溴化乙錠濃度為0. 5 μ g/mL,電泳條件以lOV/cm電壓,電泳時(shí)間lh。(4)結(jié)果分析第一輪PCR擴(kuò)增結(jié)果在454 bp附近未觀察到有DNA條帶,不能進(jìn)行判斷;第二輪PCR擴(kuò)增結(jié)果在195 bp附近也未觀察到DNA條帶,表明大豆樣品A中未檢測(cè)出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,呈陰性。實(shí)施例2
本實(shí)施例中用巢式PCR檢測(cè)方法檢測(cè)玉米樣品B是否含有轉(zhuǎn)基因成分花椰菜花斑病毒 CaMV35S啟動(dòng)子。操作流程如下
(I)DNA提取將玉米樣品B稱取0. Ig,采用CTAB法進(jìn)行DNA提取。(2)PCR 擴(kuò)增第一輪 PCR 擴(kuò)增,20μ1 反應(yīng)體系包括10mmol/L iTris-HCl, 50mmol/L KCl, 1. 5mmol/L MgC12,0· 15 μ mol/L dNTP, 0. 5 μ mol/L35S EF 和!35S ER 引物,1 單位Taq DNA聚合酶,50ng DNA模板;反應(yīng)程序如下94°C預(yù)變性lOmin,94°C變性40s,58°C退火40s,72°C延伸45s,;35個(gè)循環(huán);72°C延伸5 min,4°C保存。在第二輪PCR反應(yīng)體系中,加入第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物2 μ L為模板,反應(yīng)程序?yàn)?94°C預(yù)變性 10min,94°C變性 40s,56°C退火 40s,72°C延伸 45s,;35 個(gè)循環(huán);72°C延伸 5 min, 4°C保存待測(cè)。(3)電泳檢測(cè)兩輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)瓊脂糖凝膠濃度為I 溴化乙錠濃度為0. 5 μ g/mL,電泳條件以lOV/cm電壓,電泳時(shí)間lh。(4)結(jié)果分析第一輪PCR擴(kuò)增結(jié)果在454 bp附近未觀察到DNA條帶,不能進(jìn)行判斷;第二輪PCR擴(kuò)增結(jié)果在195 bp附近觀察到有DNA條帶,與預(yù)期片段大小一致,表明玉米樣品B中檢測(cè)出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,呈陽(yáng)性。
權(quán)利要求
1.一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,其特征在于,該方法包括利用I^rimer Premier V5. 0軟件進(jìn)行巢式PCR的引物設(shè)計(jì),用Oligo V6. 22軟件篩選出相互干擾最小的引物;擴(kuò)增所用的引物及擴(kuò)增片段大小為第一輪PCR所用引物引物名稱35S EF 序列(5’ 一 3,) ATTCCATTGCCCAGCTATCTGTCA 35S ER 序列(5,— 3,)TGTGGTGTTTGTGGCTCTGTCCTAA擴(kuò)增片段大小4Mbp ;第二輪PCR所用引物引物名稱35S IF 序列(5’ 一 3,)GCTCCTACAAATGCCATCATTGC 35S IR 序列(5’ — 3,)GATAGTGGGATTGTGCGTCATCCC擴(kuò)增片段大小195bp ;第一輪PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)程序?yàn)樵赑CR反應(yīng)體系中,加DNA模板2μ L (50ng);反應(yīng)程序?yàn)?4°C預(yù)變性10min、94°C變性40s、58°C退火40s、72°C延伸45s,35個(gè)循環(huán);72°C延伸5 min,4°C保存;第二輪PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)程序?yàn)樵诘诙哖CR反應(yīng)體系中,加第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物 2uL ;反應(yīng)程序?yàn)?4°C預(yù)變性10min、94°C變性40s、56°C退火40s、72°C延伸45s,35個(gè)循環(huán); 72°C延伸5 min,4°C保存待測(cè);兩輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),并樣品分析,即可。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,其特征在于,所述的瓊脂糖凝膠濃度為2%,膠中溴化乙錠濃度為0. 5μ g/mL,電泳條件以lOV/cm 電壓,電泳時(shí)間Ih。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,其特征在于,樣品分析為第二輪PCR擴(kuò)增片段大小與預(yù)期片段大小一致,表明樣品中檢測(cè)出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,即呈陽(yáng)性;反之,則未檢出花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子, 即呈陰性。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,其特征在于,第一輪PCR產(chǎn)物是否能觀察到與預(yù)期片段大小一致的DNA片段,均不作為判斷結(jié)果;而僅以第二輪PCR產(chǎn)物的觀察結(jié)果作為最后判斷結(jié)果。
全文摘要
一種轉(zhuǎn)基因作物花椰菜花斑病毒的巢式PCR檢測(cè)方法,涉及分子生物學(xué)領(lǐng)域,該方法根據(jù)花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子的保守序列,設(shè)計(jì)兩個(gè)特異性外引物和引用農(nóng)業(yè)部953號(hào)公告-6-2007公布的CaMV35S啟動(dòng)子檢測(cè)引物作為內(nèi)引物,該組引物可檢測(cè)出不同轉(zhuǎn)基因作物中的花椰菜花斑病毒CaMV35S啟動(dòng)子,具有廣譜性。本發(fā)明的檢測(cè)方法具有高效、靈敏、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),可避免出現(xiàn)“假陰性”結(jié)果,能切實(shí)解決轉(zhuǎn)基因作物的檢測(cè)技術(shù)難題。本發(fā)明可直接為農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物安全管理提供技術(shù)支持,可對(duì)轉(zhuǎn)基因農(nóng)作物產(chǎn)品的研究、生產(chǎn)、銷售進(jìn)行有效監(jiān)管,對(duì)保障人民健康、環(huán)境安全和生物多樣性具有重要意義。
文檔編號(hào)C12Q1/68GK102534046SQ20111029514
公開日2012年7月4日 申請(qǐng)日期2011年9月28日 優(yōu)先權(quán)日2011年9月28日
發(fā)明者岳靜, 朱志成, 邵雙 申請(qǐng)人:沈陽(yáng)化工大學(xué)